Innovations agricoles au service du développement durable

Écologie du Maruca vitrata
L’abondance de M. vitrata et ses ennemis naturels ont été déterminés sur neuf parcelles de légumineuses mises en place (dans un
rayon de 50 m) à la Station de recherche des cultures de Réduit. Chaque semaine, les fleurs étaient recueillies de manière aléatoire sur
les parcelles non traitées (40 par culture) de P. vulgaris, Vigna unguiculata, Arachis hypogea et de Pisum sativum (depuis le stade de
la floraison jusqu’au stade de la fructification), et conservés en laboratoire pendant 7 jours. À chaque récolte, 12 plants étaient
sélectionnés de manière aléatoire pour chaque culture (à l’exception du A. hypogea), et les cosses endommagées et non
endommagées ont été enregistrées. Les cosses contenant des larves ont été envoyées en laboratoire. Des fleurs et des cosses (50
chacune) ont été collectées de manière aléatoire dans des sachets en plastique individuels, à partir d’une parcelle non traitée de pois
perdrix (Cajanus cajan) et examinées en laboratoire. Des fleurons issus d’inflorescences (n = 50) ont été collectés de manière
aléatoire sur des parcelles non traitées de Pueraria phaseoloides, de Mucuna pruriens et de Macroptilium atropurpureum. Des cosses
(n = 50) de chacune des parcelles de P. phaseoloides et de M. pruriens ont été recueillies dans des sachets en plastique individuels
et examinées en laboratoire. Cinquante cosses provenant de chacune des 39 variétés de Phaseolus lunatus récemment introduites
(parcelles traitées) ont été examinées et les cosses endommagées ont été envoyées en laboratoire. Les larves collectées ont été
nourries de germes de haricot mungo jusqu’au stade de papillon adulte, pour confirmer l’espèce.
Inventaire des ennemis naturels du Maruca vitrata
Outre les parasitoïdes des larves existants, une enquête a été menée pour détecter l’occurrence possible d’autres ennemis naturels
du M. vitrata.
Parasitoïde des œufs
La méthode d’exposition d’Arodokoun (1996) a été utilisée. Un plant de haricots comportant des œufs fraîchement pondus a été
placé dans la parcelle de pois perdrix pendant 48 heures. Les feuilles contenant des œufs ont été excisées, conservées dans un
bocal de verre et observées de manière quotidienne en laboratoire. Les œufs parasités (n = 32), qui se distinguent par leur
coloration noire, ont été conservés dans des flacons en verre individuels. Le sexe des parasitoïdes émergents a été déterminé sous un
microscope binoculaire. L’exposition des plants a été répétée quatre fois en utilisant, à chaque fois, un nouveau plant de haricots
comportant des œufs.
L’agent pathogène des larves
Les larves de M. vitrata (n = 1906) ont été recueillies sur le P. vulgaris, le A. hypogea, le P. sativum, le C. cajan, le V. unguiculata, le P.
lunatus et le P. phaseoloides. Les larves recueillies ont été individuellement nourries de germes dans des bols en plastique stériles
et examinées quotidiennement. Les larves malades ont été isolées et l’organisme pathogène a été identifié en collaboration avec la
Division des pathologies des plantes d’AREU.
Innovations agricoles au service du développement
Nématode entomopathogène
Cinquante nymphes de M. vitrata ont été placées à une profondeur de 3 cm dans le sol, dans un champ de haricots (selon la
méthode de Bedding et Akhurst, 1975) et emportées au laboratoire après 7 jours. Elles ont été lavées à l’eau pour en retirer les
particules de sol et placées dans des boîtes de Pétri individuelles avec 5 ml d’eau. Chaque lymphe a été macérée et examinée au
microscope binoculaire. Lorsque des nématodes étaient détectés, le contenu macéré était filtré à l’aide d’un tamis en étamine. Une
solution de base a été préparée et utilisée pour effectuer des tests de pouvoir pathogène avec des larves de M. vitrata saines (cinquième
instar) (selon la méthode de Kaya et Stock, 1997). Les larves étaient observées tous les jours au microscope binoculaire.
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