Innovations agricoles au service du développement durable
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Matériels et méthodes<br />
Site de l’étude<br />
La collecte des données a été effectuée dans différentes zones agro-écologiques de l’Ouganda. Celles-ci sont classées sur la base<br />
des types de végétation distincts, des conditions d’élévation et climatiques.<br />
Échantillonnage des parasites des abeilles<br />
La collecte des données relatives <strong>au</strong>x nuisibles des abeilles a été effectuée de février 2007 à juin 2009, dans cinq des 10 zones agroécologiques<br />
<strong>du</strong> pays. Un district a été sélectionné dans chaque zone (Kampala à Lake Victoria Crescent ; Mbale à l’Est ; Hoima à Lake<br />
Albert Crescent ; Lira dans la zone mi-septentrionale ; Kabarole sur les h<strong>au</strong>ts plate<strong>au</strong>x de l’Ouest). La sélection des zones agroécologiques<br />
a été guidée par le nombre de groupes d’apiculteurs et la pro<strong>du</strong>ctivité de miel dans les zones. L’étude a pris la forme d’une<br />
recherche-action participative. La collecte de données <strong>au</strong> sein de chaque zone impliquait le recueil des connaissances indigènes <strong>au</strong>près<br />
des agriculteurs, <strong>au</strong> sujet des différents nuisibles des abeilles et de leurs prévalences, en utilisant des outils d’évaluation participative en<br />
milieu rural (PRA) tels que le classement préférentiel par paire. Dans chaque zone, l’intensité de l’échantillonnage a tenu compte <strong>du</strong><br />
degré de pratique de l’apiculture. Des échantillons d’abeilles collectés à partir des ruches dans différentes zones ont été préservés dans<br />
de l’éthanol à 70 % pour un examen morphologique. Certains échantillons ont été disséqués et examinés <strong>au</strong> microscope, afin de<br />
détecter les parasites et nuisibles. Les échantillons d’éléments infectés et d’<strong>au</strong>tres pro<strong>du</strong>its de la ruche ont également été collés pour<br />
une analyse en laboratoire. Un simple test de faisabilité a été effectué afin d’analyser les matériels et techniques loc<strong>au</strong>x de lutte<br />
antiparasitaire. Les fermiers et les chercheurs ont travaillé en tant que partenaires <strong>du</strong> processus de développement technologique. Les<br />
essais participatifs ont également aidé à confirmer l’évaluation, par les agriculteurs, de la pratique et de leurs idées sur la façon dont<br />
celle-ci peut être modifiée, ainsi qu’à observer leurs innovations.<br />
Sélection moléculaire des abeilles<br />
Dans la première étude <strong>du</strong> genre effectuée en Ouganda, des abeilles mellifères (Apis mellifera) <strong>au</strong> stade larvaire, de nymphes et<br />
d’a<strong>du</strong>ltes ont été collectées (entre février 2007 et mai 2008) sur des sites d’apiculture situés dans neuf des 10 zones agroécologiques<br />
de l’Ouganda – zone Est, Lake Albert Crescent, Lake Victoria Crescent, zone mi-septentrionale, Sud-est, terres arides <strong>du</strong><br />
Sud, h<strong>au</strong>ts plate<strong>au</strong>x <strong>du</strong> Sud, zone Ouest <strong>du</strong> Nil et h<strong>au</strong>ts plate<strong>au</strong>x de l’Ouest. Dans chaque zone, l’intensité de l’échantillonnage<br />
reflétait la densité florale et la façon dont l’apiculture y était appliquée. Au total, 138 colonies ont fait l’objet d’échantillonnage sur<br />
63 sites. Étant donné que les virus infectent tous les stades de développement des abeilles (Chen et al., 2006), des spécimens<br />
larvaires, de nymphes et d’a<strong>du</strong>ltes ont été prélevés sur chaque site. Tous les échantillons ont été conservés dans de l’alcool à 70 %<br />
avant l’extraction de l’ARN.<br />
<strong>Innovations</strong> <strong>agricoles</strong> <strong>au</strong> <strong>service</strong> <strong>du</strong> développement<br />
Tous les diagnostics moléculaires ont été effectués en utilisant un PCR en temps réel (TaqMan) <strong>au</strong> sein de l’Unité technologique<br />
moléculaire de l’Agence de recherche sur les pro<strong>du</strong>its alimentaires et l’environnement, de York, <strong>au</strong> Roy<strong>au</strong>me-Uni. Les échantillons<br />
ont été sélectionnés pour détecter la présence de sept virus infectant les abeilles : le virus de la cellule royale noire (BQCV), le virus<br />
de la paralysie chronique de l’abeille (CBPV), le virus <strong>du</strong> couvain sacciforme (SBV), le virus de l’aile déformée (DWV), le virus de la<br />
paralysie aiguë de l’abeille (ABPV), le virus invertébré iridescent 24 (AIV) et le virus israélien de la paralysie aiguë (IAPV). Un contrôle<br />
interne destiné à détecter le gène rRNA 18S de l’Apis mellifera, a été intégré à l’étude afin de comparer les efficacités d’extraction<br />
entre les échantillons et de faciliter l’interprétation des résultats négatifs (Ward et al., 2007).<br />
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