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Etude biochimique et nutritionnelle de l'effet immunomodulateur des ...

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phosphatidylinositol-4-monophosphate inactif (Chung <strong>et</strong> al., 1997). La fodrine, une protéine<br />

<strong>de</strong> cytosquel<strong>et</strong>te, agit indirectement sur l’activité PLD en inhibant la synthèse <strong>de</strong>s<br />

phosphoinositi<strong>de</strong>s <strong>et</strong> en séquestrant le PIP2 déjà présent dans les membranes (Lukowski <strong>et</strong> al.,<br />

1996 <strong>et</strong> 1998). Une protéine synapse-spécifique, impliquée dans l’assemblage <strong>de</strong>s vésicules à<br />

clathrine appelée AP3, inhibe la PLD1 par une interaction directe protéine/protéine (Lee <strong>et</strong> al.,<br />

1997a). La gelsoline, une protéine fixatrice <strong>de</strong> l’actine, inhibe l’activation <strong>de</strong> la PLD par la<br />

bradykinine dans les fibroblastes NIH3T3 (Banno <strong>et</strong> al., 1999). Les amphiphysines I <strong>et</strong> II ont<br />

aussi été décrites comme inhibitrices <strong>de</strong>s PLD (Lee <strong>et</strong> al., 2000). La PLD2 peut aussi être<br />

inhibée sélectivement par certaines protéines. Jenco <strong>et</strong> ses collaborateurs (1998) ont montré<br />

que les synucléines α <strong>et</strong> β sont capables d’inhiber sélectivement l’activité PLD2. L’inhibition<br />

par les synucléines ne peut pas être levée par les phosphoinositi<strong>de</strong>s, ni par les protéines<br />

activatrices <strong>de</strong> la PLD <strong>et</strong> elle n’est pas compétitive par rapport au substrat.<br />

Des facteurs non protéiques pourraient réguler physiologiquement la PLD. Ainsi, <strong>de</strong><br />

nombreuses étu<strong>de</strong>s ont montré une inhibition <strong>de</strong> la PLD par les cérami<strong>de</strong>s, qui sont <strong>de</strong>s lipi<strong>de</strong>s<br />

appartenant au groupe <strong>de</strong>s sphingolipi<strong>de</strong>s (Gomez-Munoz <strong>et</strong> al., 1994 ; Venable <strong>et</strong> al., 1996).<br />

En eff<strong>et</strong>, les cérami<strong>de</strong>s exogènes à courte chaîne (C2-cérami<strong>de</strong> ; C6-cerami<strong>de</strong>) capables <strong>de</strong><br />

traverser la membrane plasmique, inhibent la PLD <strong>de</strong> certains types cellulaires tels que les<br />

fibroblastes (Jones <strong>et</strong> Murray, 1995), les basophiles leucémiques RBL-2H3 (Nakamura <strong>et</strong> al.,<br />

1996), les neutrophiles (Nakamura <strong>et</strong> al., 1994). Le C2-cerami<strong>de</strong> diminue également la<br />

translocation à la membrane <strong>de</strong>s PKC, <strong>de</strong> ARF <strong>et</strong> <strong>de</strong> Rho. Dans <strong>de</strong>s cellules HL60 stimulées<br />

par le FMLP, c<strong>et</strong>te diminution s’accompagne d’une inhibition <strong>de</strong> l’activité PLD (Abousalham<br />

<strong>et</strong> al., 1997).<br />

II-2-7 Localisation <strong>de</strong>s PLD<br />

II-2-7-1 Localisation tissulaire<br />

Une activité PLD a été trouvée dans pratiquement tous les tissus <strong>de</strong>s mammifères étudiés<br />

(Meier <strong>et</strong> al., 1999). La PLD1 a une expression restreinte à certains tissus comme la moelle<br />

épinière, le cerveau, le cœur, le placenta, la rate <strong>et</strong> le pancréas. Son expression est faible dans<br />

les poumons, le thymus, la trachée, les ganglions lymphatiques <strong>et</strong> les leucocytes (Steed <strong>et</strong> al.,<br />

1998). Des étu<strong>de</strong>s menées chez le rat <strong>et</strong> l’Homme ont montré une différence <strong>de</strong> distribution<br />

<strong>de</strong>s <strong>de</strong>ux variants PLD1a <strong>et</strong> PLD1b selon les tissus (Katayama <strong>et</strong> al., 1998 ; Steed <strong>et</strong> al.,<br />

1998). La PLD2 semble avoir une distribution plus large que la PLD1. La hPLD2 est<br />

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