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Etude biochimique et nutritionnelle de l'effet immunomodulateur des ...

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II-2-3 Mesure <strong>de</strong> l’activité PLD<br />

Les métho<strong>de</strong>s <strong>de</strong> dosage <strong>de</strong> l’activité PLD peuvent être distinguées en fonction <strong>de</strong> la<br />

méthodologie utilisée pour isoler <strong>et</strong> quantifier le produit <strong>de</strong> catalyse. L’activité PLD peut être<br />

déterminée par la mesure du produit lipidique (PA ou phosphatidylalcool) ou du produit<br />

soluble (choline) formé.<br />

L’activité PLD peut être mesurée par dosage <strong>de</strong> la choline libérée lors <strong>de</strong> l’activation <strong>de</strong><br />

l’enzyme. C<strong>et</strong>te métho<strong>de</strong> consiste à marquer la tête polaire <strong>de</strong> la PC avec <strong>de</strong> la choline tritiée.<br />

La PLD libère alors la choline tritiée qui peut être dosée dans le milieu réactionnel.<br />

Cependant, dans les cellules intactes, la choline formée est très rapi<strong>de</strong>ment phosphorylée en<br />

phosphocholine qui peut provenir aussi d’une activité PLC (Besterman <strong>et</strong> al., 1986 ; Purkiss <strong>et</strong><br />

al., 1991). Inversement, la phosphocholine générée par la PLC peut aussi être métabolisée en<br />

choline sous l’action d’une phosphatase. C<strong>et</strong>te métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> dosage n’est donc utilisable<br />

qu’avec <strong>de</strong>s cellules perméabilisées ou <strong>de</strong>s membranes isolées dans lesquelles la choline<br />

libérée dans le milieu réactionnel n’est pas accessible aux kinases intracellulaires. La phase<br />

aqueuse contenant la choline marquée peut être séparée <strong>de</strong> la phase lipidique selon la métho<strong>de</strong><br />

<strong>de</strong> Bligh <strong>et</strong> Dyer (1959). La choline radioactive est alors quantifiée<br />

L’activité PLD peut être déterminée aussi par la mesure du produit lipidique. Pour cela, un<br />

aci<strong>de</strong> gras marqué peut être incorporé dans les phospholipi<strong>de</strong>s. Différents aci<strong>de</strong>s gras sont<br />

couramment utilisés pour marquer les phospholipi<strong>de</strong>s : aci<strong>de</strong>s oléique, myristique,<br />

arachidonique ou palmitique (Morris <strong>et</strong> al., 1997a). L’activité PLD est alors déterminée par la<br />

mesure du PA radioactif formé. Cependant, ce type <strong>de</strong> mesure ne reflète pas toujours <strong>de</strong> façon<br />

certaine une activité PLD. Le PA peut aussi être produit par phosphorylation du DAG par une<br />

DAG kinase ou résulter <strong>de</strong> la voie <strong>de</strong> la biosynthèse <strong>de</strong>s phospholipi<strong>de</strong>s. D’autre part, il est<br />

très rapi<strong>de</strong>ment métabolisé dans les cellules (Figure 7). La métho<strong>de</strong> la plus fiable <strong>et</strong> la plus<br />

utilisée est celle qui consiste à mesurer le phosphatidylalcool marqué produit lors <strong>de</strong> la<br />

réaction <strong>de</strong> transphosphatidylation caractéristique <strong>de</strong> la PLD, comme décrit dans le<br />

paragraphe II-2-2 (Randall <strong>et</strong> al., 1990 ; Cook <strong>et</strong> Wakelam, 1992). Il est extrait dans la phase<br />

organique <strong>et</strong> séparé <strong>de</strong>s autres phospholipi<strong>de</strong>s par chromatographie sur couche mince ou par<br />

HPLC.<br />

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