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Etude biochimique et nutritionnelle de l'effet immunomodulateur des ...

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augmentent significativement l’activité PLD <strong>de</strong>s thymocytes <strong>de</strong> rat, le 22:6n-3 ayant l’eff<strong>et</strong> le<br />

plus important aussi bien en absence qu’en présence <strong>de</strong> ConA. Par contre, l’eff<strong>et</strong> activateur du<br />

18:1n-9 reste faible <strong>et</strong> non significatif. Ces résultats diffèrent sensiblement <strong>de</strong> ceux rapportés<br />

par Dai <strong>et</strong> al. (1995) pour la PLD <strong>de</strong> cœur <strong>de</strong> rat. Ces auteurs ont montré que l’aci<strong>de</strong> oléique<br />

induit une augmentation <strong>de</strong> l’activité PLD plus importante que celle induite par l’aci<strong>de</strong><br />

linoléique. Cela peut être probablement expliqué par la faible incorporation <strong>de</strong> l’aci<strong>de</strong> oléique<br />

dans les thymocytes <strong>de</strong> rat dans nos conditions expérimentales. Cependant, Dai <strong>et</strong> al. (1995)<br />

n’ont pas examiné l’eff<strong>et</strong> <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s gras <strong>de</strong> la famille n-3 sur l’activité PLD du cœur <strong>de</strong> rat.<br />

Les résultats obtenus dans notre étu<strong>de</strong> sont en accord avec ceux <strong>de</strong> Bechoua <strong>et</strong> al. (1998)<br />

montrant que le 22:6n-3 stimule l’activité PLD <strong>de</strong>s lymphocytes humains alors que le 20:5n-3<br />

n’a pas d’eff<strong>et</strong>.<br />

Les investigations menées dans la suite <strong>de</strong> notre étu<strong>de</strong> in vitro ont visé à déterminer l’eff<strong>et</strong><br />

d’un enrichissement en aci<strong>de</strong> gras sur les ra<strong>de</strong>aux lipidiques <strong>de</strong>s thymocytes <strong>de</strong> rat. Tout<br />

d’abord, nous avons caractérisé ces structures dans nos cellules. Les DRMs sont connus pour<br />

leur composition lipidique particulière, à savoir leur enrichissement en cholestérol <strong>et</strong><br />

glycosphingolipi<strong>de</strong>s. L’isolement <strong>de</strong> ces structures est basé sur leur insolubilité dans les<br />

détergents non ioniques à 4°C <strong>et</strong> leurs propriétés <strong>de</strong> flottaison sur un gradient <strong>de</strong> <strong>de</strong>nsité<br />

(Montixi <strong>et</strong> al., 1998). Après fractionnement <strong>de</strong>s lysats <strong>de</strong> thymocytes traités au triton X-100,<br />

sur un gradient <strong>de</strong> <strong>de</strong>nsité <strong>de</strong> saccharose, nous avons utilisé plusieurs marqueurs <strong>biochimique</strong>s<br />

perm<strong>et</strong>tant <strong>de</strong> caractériser les complexes enrichis en glycolipi<strong>de</strong>s, flottant au niveau <strong>de</strong>s<br />

fractions <strong>de</strong> faible <strong>de</strong>nsité lors <strong>de</strong> l’ultracentrifugation. Le gangliosi<strong>de</strong> GM1, couramment<br />

utilisé pour caractériser les ra<strong>de</strong>aux lipidiques <strong>de</strong>s cellules hématopoïétiques (Brown <strong>et</strong><br />

London, 1998), nous a permis <strong>de</strong> m<strong>et</strong>tre en évi<strong>de</strong>nce ces structures au niveau <strong>de</strong>s fractions <strong>de</strong><br />

faible <strong>de</strong>nsité. Nous avons également déterminé la localisation du PIP2 à l’ai<strong>de</strong> d’un anticorps<br />

anti-PIP2 spécifique, ce phospholipi<strong>de</strong> étant décrit comme présent dans les structures résistant<br />

aux détergents non ioniques à froid (Pike <strong>et</strong> Miller, 1998 ; Martin, 2001). Les fractions <strong>de</strong><br />

faible <strong>de</strong>nsité isolées par centrifugation entre 15 <strong>et</strong> 20% <strong>de</strong> saccharose ont montré un<br />

enrichissement important en GM1, PIP2 <strong>et</strong> cholestérol, caractéristique <strong>de</strong>s ra<strong>de</strong>aux lipidiques.<br />

Notre équipe avait montré antérieurement que dans les lymphocytes humains, la PLD1<br />

apparaît comme préférentiellement associée aux ra<strong>de</strong>aux lipidiques alors que PLD2 ne l’est<br />

pas. Après enrichissement <strong>de</strong>s membranes lymphocytaires en DHA <strong>et</strong> stimulation par la<br />

ConA, la PLD1 est délocalisée hors <strong>de</strong>s DRMs vers le reste <strong>de</strong>s membranes solubilisées, alors<br />

que PLD2 n’est pas affectée (Diaz <strong>et</strong> al., 2002). C’est pourquoi nous avons recherché si la<br />

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