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Etude biochimique et nutritionnelle de l'effet immunomodulateur des ...

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vortexé avant d'être coulé. Après polymérisation, on prépare un gel <strong>de</strong> concentration en<br />

mélangeant dans un tube 2,5ml d'urée, 0,9ml d’eau, 0,83ml d'un mélange d'acrylami<strong>de</strong> à 30%,<br />

0,63ml <strong>de</strong> Tris 1M pH6,8, 0,05ml <strong>de</strong> SDS 10%, 0,05ml d'ammonium persulfate 10% <strong>et</strong><br />

0,005ml <strong>de</strong> TEMED. Le gel <strong>de</strong> concentration est coulé au-<strong>de</strong>ssus du gel <strong>de</strong> séparation. Après<br />

polymérisation, les gels sont placés dans la cuve <strong>de</strong> migration du système. Les échantillons<br />

préparés comme décrit précé<strong>de</strong>mment sont déposés. La migration électrophorétique s’effectue<br />

à 120V, à voltage constant. La migration peut être suivie grâce au dépôt <strong>de</strong> marqueurs<br />

moléculaires précolorés dans un puits <strong>de</strong> référence. Les masses moléculaires <strong>de</strong>s protéines<br />

étudiées sont déterminées en référence à ces marqueurs moléculaires. L’électrotransfert sur<br />

membrane Immobilon Millipore est ensuite réalisé dans un appareil <strong>de</strong> transfert semi-sec<br />

Semi-Phor (Hoeffer Scientific Instruments). Le transfert se fait dans un système <strong>de</strong> «<br />

sandwich » imbibé <strong>de</strong> tampon <strong>de</strong> transfert (25mM <strong>de</strong> TrisHCl, pH=8,3, 0,19 M <strong>de</strong> glycine,<br />

20% <strong>de</strong> méthanol) par un courant électrique <strong>de</strong> 40 mA pendant 1h30. Le transfert effectué, les<br />

marqueurs <strong>de</strong> masse moléculaire sont également transférés <strong>et</strong> peuvent servir <strong>de</strong> contrôle. La<br />

membrane est rincée par un tampon salin TBS-T puis saturée avec du lait écrémé à 10%<br />

pendant 2 heures à température ambiante. La membrane est ensuite rincée trois fois par du<br />

TBS-T durant 10 min, puis incubée à 4°C pendant toute la nuit avec l'anticorps primaire anti-<br />

PLD1 ou anti-PLD2 (dilution 1/2000). L’anticorps anti-PLD1 est dirigé contre les résidus 1-<br />

16, 144-162, 967-981, <strong>et</strong> 1027-1040 <strong>de</strong> la protéine tandis que l’anticorps anti-PLD2 est dirigé<br />

contre une séquence d’aci<strong>de</strong>s aminés située en N-terminal (résidus 13-33). La membrane est<br />

rincée 7 fois par du TBS-T puis incubée avec un anticorps secondaire anti-IgG <strong>de</strong> lapin,<br />

couplé à la peroxydase (dilution 1/5000). La membrane est soumise à une <strong>de</strong>rnière série <strong>de</strong><br />

lavages avant révélation spécifique <strong>de</strong>s protéines par chimiluminescence (kit ECL<br />

Amersham). Pour la normalisation, les membranes ont été strippées (décapées <strong>de</strong> leurs<br />

anticorps) <strong>et</strong> ré-incubées avec l’anticorps monoclonal anti-tubiline-α dilué au 1/2000 dans du<br />

TBS-T ; BSA 0,01% puis avec l’anticorps secondaire anti-IgG <strong>de</strong> souris dilué au 1/10000.<br />

III-2-10 Transcription inverse <strong>et</strong> Réaction en chaîne <strong>de</strong> la polymérase<br />

III-2-10-1 Préparation <strong>de</strong>s ARN<br />

Les ARN totaux <strong>de</strong>s thymocytes sont extraits à l'ai<strong>de</strong> du kit d'extraction Tri Reagent<br />

(SIGMA). Les thymocytes (40.10 6 cellules) sont culottés à 500g à 4°C. Le culot est repris<br />

dans 1ml <strong>de</strong> réactif Tri Reagent <strong>et</strong> les cellules sont homogénéisées par passage dans une<br />

seringue. Les homogénats obtenus sont laissés 5 min à température ambiante pour assurer une<br />

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