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Etude biochimique et nutritionnelle de l'effet immunomodulateur des ...

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1h jusqu’à élution complète <strong>de</strong>s dépôts colorés. La <strong>de</strong>nsité optique est lue au<br />

spectrophotomètre à une longueur d’on<strong>de</strong> <strong>de</strong> 630 nm. La quantification est réalisée par<br />

comparaison à une gamme étalon d’albumine sérique bovine traitée dans les mêmes<br />

conditions.<br />

III-2-9 Electrophorèse en SDS-PAGE <strong>et</strong> "Western-blotting" :<br />

III-2-9-1 Préparation <strong>de</strong>s échantillon :<br />

Les thymocytes sont homogénéisés dans un tampon <strong>de</strong> lyse (Tris 25mM, NaCl 50mM, EDTA<br />

5mM) contenant un mélange d’inhibiteurs <strong>de</strong> protéases (Inhibitor coktail) dilué au 1/4. Les<br />

homogénats cellulaires sont ensuite centrifugés (900g pendant 10 min.) <strong>et</strong> le surnageant post<br />

nucléaire est récupéré. Le dosage <strong>de</strong> protéines se fait selon la métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> Bradford (1976)<br />

pour les surnageants post-nucléaires, <strong>et</strong> selon la métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> Schaffner Weissman pour les<br />

fractions <strong>de</strong> gradient<br />

III-2-9-2 Précipitation <strong>de</strong>s protéines par l’acétone à froid :<br />

Dans un bain <strong>de</strong> glace, on ajoute du CaCl 2 afin <strong>de</strong> faire chuter la température a -25°C.<br />

Lorsque la température est stabilisée, on place dans un tube 1,5 volume d'acétone sur lequel<br />

on dépose 1 volume <strong>de</strong> l'homogénat à précipiter. Le tout est immédiatement vortexé<br />

vigoureusement, puis replacé à -25°C dans la glace pendant 30 min. Le mélange est <strong>de</strong><br />

nouveau vortexé puis centrifugé à 15000g durant 15 min à 4°C. Le surnageant est éliminé <strong>et</strong><br />

le culot est séché à l'air pendant 5 min. Il est repris dans un volume minimum <strong>de</strong> tampon<br />

Laemmli (Tris 125mM, pH=6,8, Saccharose 10%, SDS 2%, mercapto<strong>et</strong>hanol 1% <strong>et</strong> bleu <strong>de</strong><br />

bromophénol 0,05%) contenant <strong>de</strong> l'urée 4M <strong>et</strong> <strong>de</strong> l'EDTA 2,5M. Le tout est vortexé<br />

vigoureusement <strong>et</strong> soniqué dans un bain à ultrasons (maximum <strong>de</strong> la puissance <strong>de</strong> l'appareil),<br />

jusqu'à dissolution totale du culot. Les échantillons sont ensuite portés à 100°C pendant 1 min<br />

puis conservés à -20°C avant électrophorèse.<br />

II-2-9-3 Electrophorèse en SDS-PAGE :<br />

L’électrophorèse est réalisée sur un gel à 8% <strong>de</strong> polyacrylami<strong>de</strong> en présence <strong>de</strong> 0,1% <strong>de</strong> SDS<br />

<strong>et</strong> d’urée (environ 4M final) grâce à un appareil pour électrophorèse pour minigels Biorad.<br />

Brièvement, pour <strong>de</strong>ux mini gels, on prépare le gel <strong>de</strong> séparation en mélangeant dans un tube<br />

6.9ml d'urée 8M, 4ml d'un mélange d'acrylami<strong>de</strong> à 30%, 3,8ml <strong>de</strong> Tris 1,5M pH8,8, 0,15ml<br />

<strong>de</strong> SDS 10%, 0,15ml d'ammonium persulfate 10% <strong>et</strong> 0,009ml <strong>de</strong> TEMED. Le mélange est<br />

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