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Etude biochimique et nutritionnelle de l'effet immunomodulateur des ...

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La quantification en nmoles est faite à l’ai<strong>de</strong> d’un standard interne, la diheptadécanoyl<br />

phosphatidylcholine (PC di 17 :0), ajouté dans les échantillons au moment <strong>de</strong> l’extraction<br />

lipidique.<br />

Figure 25 : Schéma récapitulatif d’un chromatographe en phase gazeuse.<br />

III-2-8 <strong>Etu<strong>de</strong></strong> <strong>de</strong>s microdomaines<br />

III-2-8-1 Isolement <strong>de</strong>s microdomaines à partir <strong>de</strong>s thymocytes <strong>de</strong> rat<br />

Ces structures ont été purifiées selon le protocole décrit par Montixi <strong>et</strong> al. (1998), basé sur<br />

leur insolubilité dans les détergents non ioniques à 4°C, <strong>et</strong> leur propriété <strong>de</strong> flottaison sur un<br />

gradient <strong>de</strong> <strong>de</strong>nsité conférée par leur enrichissement en sphingolipi<strong>de</strong>s <strong>et</strong> cholestérol. 1.5 10 7<br />

thymocytes sont homogénéisés dans 1.5ml <strong>de</strong> tampon Tris 25mM, NaCl 150mM, EDTA<br />

5mM, pH 7.5 contenant un mélange d’inhibiteurs <strong>de</strong> protéase (inhibitor cocktail, Sigma), à<br />

l’ai<strong>de</strong> d’un potter verre-téflon (10x20 allers-r<strong>et</strong>ours) puis centrifugés à 900g pendant 10 min à<br />

4°C. Le surnageant post nucléaire (SPN) est incubé avec du triton X100 (1% final) pendant 1h<br />

à 4°C sous agitation douce. Après incubation, le lysat est ajouté à un même volume <strong>de</strong><br />

solution <strong>de</strong> saccharose 2.6M pour avoir une concentration finale <strong>de</strong> 1.3M en saccharose. Le<br />

gradient est réalisé par dépôts successifs (1ml) <strong>de</strong> solutions <strong>de</strong> saccharose <strong>de</strong> concentrations<br />

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