NIDIFICATION DE LA TORTUE LUTH Dermochelys ... - Seaturtle.org

NIDIFICATION DE LA TORTUE LUTH
Dermochelys coriacea
AU PARC NATIONAL PONGARA
GABON
RAPPORT DE FIN DE SAISON
2005/2006
Auteur : Maite Ikaran
Avril 2006

PROGRAMME KUDU
RESEAU PROTOMAC
IUCN
ECOFAC-
ESPECES PHARE
RAPAC
GABON
ENVIRONNEMENT
RESPONSABLE PROJET :
MAITE IKARAN SOUVILLE
Département de Biologie
Groupe Spécialiste de Tortues Marines
Université de Las Palmas de Gran Canaria
Iles Canaries, Espagne
maite_ikaran@yahoo.com

CORPS DU RAPPORT
INTRODUCTION
OBJECTIFS DE L’ETUDE
I. PRESENTATION GENERALE DU SITE
I.1 Situation Géographique
I.2 Environnement Naturel
I.3 Environnement Humain
I.4 Partition du cordon littoral
II.
HISTORIQUE DU SUIVI DES TORTUES MARINES SUR
LE SITE
II.1 Premiers indice de présence
II.2 Premières activités de suivi scientifique à Pongara
II.3 Actualité et synthèse des résultats de la saison 2004/2005.
III. ORGANISATION DE LA SAISON 2005/2006
III.1 Personnel, camps et activités réalisées
III.2 Formation des écogardes
III.3 Environnement
IV. METHODOLOGIE
IV.1 Suivi des nids naturels
Nomenclature
Marquage temporaire et permanent
Collecte de données
Suivi pendant l´incubation
IV.2 Transplantation en enclos
IV.3 Analyse des nids
IV.4 Suivi de la température d´incubation
IV.5 Taux de fertilisation
V. SYNTHESE PRELIMINAIRE DES RESULTATS
V.1 Suivi scientifique des populations
V.2 Marquage de nids naturels
V.3 Zonage
V.4 Biométrie des adultes et nouveau-nés

V.5 Mesures oologiques
V.6 Écologie du nid
Profondeur du nid
Position du nid
Suivi de la température d´incubation
V.7 Taux de fertilisation
V.8 Transplantation en enclos
V.9 Evaluation de la réussite à l´incubation
V.10 Menaces
V.11 Observations Remarquables
V.12 Écotourisme
VI. INFORMATION COMPLÉMENTAIRE SUR LA
PRÉDATION SOUTERRAINE DES NIDS : OBSERVATIONS
ET HYPOTHESES.
VI.1 Prédation par crabe
VI.2 Prédation par insecte
VII. RECOMMENDATIONS ET PLANIFICATION POUR LA
SAISON 2006/2007.
VII.1 Propositions pour améliorer
VII.2 Planifications d´activités pour la saison 2006/2007
VII.3 Recommendations
CONCLUSION
BIBLIOGRAPHIE
Remerciements
ANNEXES

INDEX DES DOCUMENTS
FIGURES (et tableaux)
Figure 1. Représentation schématique du système de végétation littorale dans la zone d´étude formé
par la fôret littorale sclérophylle (en orange), lagunes côtières (bleu) et savannes herbeuses (jaune).
Figure 2. Calendrier des activités realisées au Parc National Pongara pour étudier la nidification de la
tortue luth Dermochelys coriacea.
Figure 3. Représentation schématique du système de marquage permanent de nids avec les piquets en
bois.
Figure 4. Représentation de la mesure de la profondeur du nid (A) avec le mètre de menuisier et la
5 ème protubérance de l´éperon caudal, signalé avec la flèche rouge.
Figure 5. Vrais nids et fausses montées (faux nids) de Dermochelys coriacea signalés pendant les
comptages de traces sur les 4 zones du Parc National Pongara. Les résultats des saisons de ponte
2004/2005 et 2005/2006 sont comparés. Pour la saison 05/06 les chiffres correspondent au total
jusqu´au mois de janvier inclus pour les zones 3 et 4 et jusqu´au 18 février pour les zones 1 et 2.
Figure 6. Mesures oologiques de D. coriacea collectés pendant la saison de ponte 2005/2006 a
Pongara.
Figure 7. Comparaison de la biométrie des femelles adultes (longueur et largeur courbe de la carapace)
et mesures oologiques des luths a Pongara (Ikaran, 2006) et Mayumba (Billes, 2000) au Gabon et a
Ya :li :ma :po (Fretey, 1980) en Guyanne Francaise.
Figure 8. Variation de la profondeur du nid entre la date de la ponte et la date de l´analyse sur 29 des
75 nids marqués de D. coriacea a Pongara
Figure 9. Possible relation entre la profondeur du nid et la taille de la femelle sur 52 nids de tortue luth
à Pongara.
Figure 10. Dates et heures de pose et retrait des 6 enregistreurs de température (jeu fixe et jeu mobile)
en zone 2.
Figure 11. Information sur le nombre de vrais œufs fertlisés et non fertlisés et le nombre de jours
écoulés entre la ponte et l´apparition du pôle animal dans 4 pontes de tortue luth a Pongara.
Figure 12. Destin des nids de Dermochelys coriacea analysés sur les zones 1 et 2 de Pongara. E=
émergence, I= prédation par insecte, C= prédation par crabe, IND= Indeterminé
Figure 13. Répresentation d´un nid partiellement érodé sous le talus d´érosion.
Figure 14. Type de prédateur dans les 48 nids victimes d´une prédation souterraine.
Figure 15. L´ouverture typique des oeufs prédates par crabe est une fente allongé en forme de demi
lune.
Figure 16. Représentation schématique des types d´ouverture trouvés sur les oeufs prédatés.

ANNEXES
ANNEXE 1. PLAN DE LA ZONE D´ÉTUDE.
ANNEXE 2. LISTE DES NIDS DE D.coriacea MARQUÉS EN ZONE 1 ET 2.
ANNEXE 3. LISTE DES NIDS MARQUES AVEC ENREGISTREUR DE
TEMPERATURE.
ANNEXE 4. NIDS TRANSPLANTES EN ENCLOS.
ANNEXE 5. DEFINITION DES TERMES UTILISES DANS LES ANALYSES DES NIDS.
ANNEXE 6. INSTRUCTIONS POUR LES ECOGARDES.

INTRODUCTION
Le Gabon est l’un des sites les plus importants au monde pour la ponte de la tortue luth
Dermochelys coriacea. Parmi les 7 espèces de tortues marines, la tortue luth se caractérise
par sa taille et sa carapace en cuir. C´est la plus grande, sa carapace pouvant atteindre 180 cm
de longueur. La saison de ponte pour la tortue luth au Gabon dure d’octobre à mars. Les trois
sites principaux pour le suivi de cette espèce sont à Pongara, Gamba et Mayumba.
Cette étude prétend faire des estimations de la réussite a l’incubation des nids de D.
coriacea pour évaluer la productivité des plages du Parc National Pongara et éventuellement
pouvoir les comparer aux autres sites de ponte. L’analyse des nids naturels permet de
déterminer la taille des pontes et la réussite à l’éclosion, deux paramètres essentiels pour
suivre le bon état de santé de la population venant nidifier mais également l’aptitude du site
en tant que système d’incubation des œufs de tortues marines.
Les résultats de cette première saison présentés dans ce rapport sont une synthèse
préliminaire des données qui seront analysés et poursuivis dans les mois prochains et
représentent la première année de recherche en thèse de Maite Ikaran,.
A part son caratère emblématique, les tortues marines sont déjà utilisées dans d´autres
pays comme outils pour la détermination et gestion d´espaces marins et côtiers protéges.
Il est donc important de poursuivre cette étude à long terme sur les côtes du Gabon et
particulièrement dans les espaces menacés par le développement touristique pour arriver à une
entente harmonieuse entre les ressources naturelles et la croissance socio-économique du
pays.
D’une autre part, le suivi des tortues marines permet de générer du travail pour les
Gabonais et en même temps leur assure une formation en conservation de l’environnement
qui peut leur être très utile ultérieurement et dans d’autres pays.
La mission de Maite Ikaran au Gabon ne prétend être que l’appui scientifique au peuple
Gabonais pour leur permettre d’exploiter d’une belle façon son énorme richesse. Elle prétend
aussi leur apporter les connaissances acquises dans d’autres pays renommés pour
l’écotourisme, comme le Costa Rica et consolider la formation des travailleurs Gabonais sur
le terrain.

OBJECTIFS DE L’ETUDE
a. Evaluation de la productivité des plages de Pongara
i. Quel est le nombre d’œufs par saison ?
1. Quel est le nombre de nids/saison ?
2. Quel est le nombre d’œufs par nid ?
a. Existe-t-il une relation entre taille de la ponte et taille de
la femelle/date de la ponte ?
b. Existe-t-il une relation entre taille de la femelle et date
de ponte ?
ii. Quelle est la réussite à l’incubation ?
1. Quelle est la réussite à l’éclosion ?
2. Quelle est la réussite à l’émergence ?
iii. Quelle est la viabilité des nouveau-nés ?
1. Existe-t-il une relation entre taille des nouveau-nés et taille des
œufs ?
2. Existe-t-il une relation entre taille des œufs et taille de la
femelle/taille de ponte/date de ponte ?
b. Influence des facteurs biotiques et abiotiques quant à la réussite à l’incubation
des œufs
i. Facteurs biotiques
1. Quelles sont les espèces en cause ?
2. Quel est l’impact (quantitatif) de chaque espèce ?
3. A quels stades intervient chaque espèce ?
ii. Facteurs abiotiques
1. Existe-t-il une relation entre température et réussite à
l’incubation ?
2. Existe-t-il une relation entre humidité et réussite à l’incubation ?
3. Existe-t-il une relation entre granulométrie et réussite à
l’incubation ?
4. Quel est l’impact de l’érosion sur la réussite à l’incubation ?
c. Intérêts et risques de la transplantation des œufs en enclos
i. Existe-t-il une différence entre la réussite à l’incubation en milieu
naturel et en enclos ?
ii. Existe-t-il une différence entre milieu naturel et enclos concernant
température/humidité/granulométrie ?

I. PRESENTATION GENERALE DU SITE
I.1 SITUATION GEOGRAPHIQUE
Le Gabon, avec une superficie de 267.667 km, est situé dans le Golfe de Guinée en
Afrique Centrale. Il est limité au nord par le Cameroon et la Guinée Equatoriale , au sud et à
l´est avec le Congo et s´ouvre à l´ocean Atlantique vers l´ouest. Il se trouve à cheval sur
l´équateur, entre les latitudes 2º 30´N et 3ª55´S . Le pays est constitué à 75% par le bassin
fluvial de l´Ogooué et 85 % du territoire est recouvert par la grande forêt tropicale.
En août 2002, le Président de la République Omar Bongo Ondimba annonce la
création d´un nouveau réseau de Parcs Nationaux s´étendant sur près de 3 millions d´hectares
et protégeant ainsi 10% du térritoire gabonais. Parmi les 13 Parc Nationaux du Gabon se
trouve la péninsule de Pongara.
Le Parc National Pongara (coordonnés 0° 34’- 0° 35’, 9° 19’ – 9° 21’) est situé au sud
de l´estuaire du Komo dans la Province de l’Estuaire avec une superficie de 89000 ha. Sa
gestion est sous l´autorité du Conseil National des Parcs Nationaux (CNPN).
La zone d’étude (voire carte annexe 1) s’étend entre la Pointe Wingombé et la Pointe
Goumbi formant un cordon de 25 km de plages océaniques interrompu seulement à quelques
endroits par des falaises rocheuses (nottamment a la Pointe Ngonbé et Falaises de Kingeré).
I.2 CLIMAT ET ENVIRONNEMENT NATUREL
Le climat est équatorial de transition, avec des précipitations moyennes de 2800 à
3000 mm/an et une grande saison sèche de juillet a septembre.
Les formations de végétation littorale principales sont les suivantes :
1) Arbustes dominants : Dalbergia ecastaphyllum, Hibiscus tiliaceus et Ximenia
americana (citronnier de mer).
2) Forêt littorale sclérophylle : Manilkara lacera (aboga), Chrysobalanus icaco,
Syzygium guineense et Fegimanra africana.
3) Mangroves et lagunes côtières dominés par Rhizophora et Avicennia.
4) Forêt inondée et marécageuse.
5) Palmeraies de Phoenix reclinata et Raphia.
6) Forêt ombrophylle serpemvirente guineo-congolaise dominé par l´okoumé Aucoumea
klaineana et l´ozouga Sacoglottis gabonensis.
7) Savannes herbeuses de Ctenium et Melinis, Andropogon et Hyparrhenia ou Oryza et
Setaria.
La végétation d’arrière plage est constituée principalement de forêt littorale sclérophylle
formant une étroite bande face à l´océan et entourée par dérrière de savannes herbeuses et
lagunes cotières. La plupart de ces arbres ont des feuilles coriaces et perennes, adaptées a
l´effet déssechant de la brise marine et leurs troncs sont colonisés par un lychen orange qui
leur donne une couleur rouille caractéristique.

Figure 1. Représentation schématique du système de végétation littorale dans la zone d´étude
formé par la fôret littorale sclérophylle (en orange), lagunes côtières (bleu) et savannes
herbeuses (jaune).
La présence nocturne et diurne sur les plages de trois grands mammifères vivant
habituellement dans d´autres milieux est à noter : le buffle de forêt (Syncerus caffer nanus),
l´hippopotame (Hippopotamus amphibius) et l´élephant de fôret (Loxodonta africana
cyclotis). Il est fréquent d´observer des traces d´antilopes (Tragelaphus spekei), civettes,
genettes (famille des Viverridés) et varans du nil (Varanus niloticus) sur le sable des plages et
savannes. Les traces les plus nombreuses sont celles des crabes de la famille Ocypodidae.
I.3 ENVIRONNEMENT HUMAIN
Le principal lieu habité est le village de la Pointe Denis, comptant plus de 200
personnes. C’est un village de pêcheurs originaires de l’Afrique de l’Ouest avec quelques
hôtels. Il y a aussi de nombreux chalets de week-end de gens de Libreville. A part la Pointe
Denis, il n´y a que des petits campements et villages pour pratiquer la pêche, la chasse ou
l´agriculture et qui, au total, ne font pas plus de 100 personnes.
Les principaux « noyaux toursitiques » sont le village de la Pointe Denis, le siège
social de Gabon Environnement et le phare de Ngonbé. La Pointe Denis est un lieu très
fréquenté par les habitants de Libreville, surtout les weekends où on peut même louer des
motos aquatiques. L´ancien Phare de Ngonbé a été occupé par une famille de Francais qui
l´ont transformé en centre de tourisme. L´ancien Hotel Ekwata, à la Pointe Wingonbé, est
maintenant propriété de Mohammed VI, Roi du Maroc. Une quinzaine de gardiens y vivent et
en assurent l ´entretien.
Des terrains à louer sont annoncés sur la plage entre la Pointe Wingonbé et Ngonbé.

I.4 PARTITION DU CORDON LITTORAL
En ce qui concerne le suivi scientifique des tortues marines, la côte est divisée en
plusieurs zones. La plage entre la Pointe Denis et la Pointe Wingonbé (approx 5 km) est
surveillés par l´ONG ASF « Aventures Sans Frontières ». Tout le reste de la côte du Parc
Pongara, 24,5 km, est surveillé par l´ONG Gabon Environnement et divisé pour son étude en
4 zones :
+ Zone 1 (5km) Pointe Wingonbé-embouchure lagune
+ Zone 2 (7km) embouchure lagune-falaises Kengéré
+ Zone 3 (6,5 km)
+ Zone 4 (6 km)
Kingéré- Pointe Goumbi

II. HISTORIQUE DU SUIVI DE TORTUES MARINES SUR LE
SITE
II.1 PREMIERS INDICES DE PRESENCE
La nidification de la tortue luth sur la Pointe Pongara est signalée par Nicole Girardin
en 1984 lors de sorties pédagogiques. Loveridge et Williams (1957), ainsi que Duguy (1983),
citent D. coriacea du Gabon, mais sans préciser si elle nidifie. La fréquentation massive des
côtes gabonaises jusqu´au Congo par la luth est annoncée par Fretey (1984).
Fretey et Girardin (1988) inventorient les plages de nidification de l´espèce au Gabon
en délimitant sept grandes zones, l´une d´elles étant la Pointe Pongara et l´autre la zone
comprise entre Ngnobé-Alounbé.
II.2 PREMIERES ACTIVITÉS DE SUIVI SCIENTIFIQUE A PONGARA
MARQUAGE: Au cours de la saison de ponte 1985/86, treize luths femelles ont été
marquées sur les plages de la Pointe Pongara à l´aide d´agraffes métalliques en titane
Stockbrands Co (GF 20626-20631, GF 21251-21275), à la patte antérieure gauche.
BIOMETRIE: Vingt-et-un Luths femelles adultes ont été mesurées, selon la méthode
courbe. Les résultats sont les suivants:
Moyenne Min. Max.
Longueur dossière (cm) 149,41 137,00 163,00
Largeur dossière (cm) 108,20 105,00 115,00
Dans les années 80, Fretey et Girardin racontent que tous les nids sont
systématiquement ramassés de jour, après avoir été repérés la nuit et signalés par un bâton
planté dans le sable. Cette menace était jugée comme très préoccupante pour la sauvegarde
des tortues marines au Gabon.
III.3 SUIVIS SCIENTIFIQUE ACTUEL
Le suivi des tortues marines à Pongara a été interrompu pendant plusieurs années pour
des raisons diverses et a repris plus tard sous la direction de l´association Aventures Sans
Frontières (ASF).
La saison 2005/2006 représente la deuxième année de suivi des tortues marines sur les
24,5 km de plages du Parc Nacional Pongara organisée par Gabon Environnement. Les
résultats de la campagne 2004/2005 à Pongara sont resumés à continuation.

SYNTHESE DES RESULTATS DE LA SAISON DE PONTE 2004/2005
ZONE 1
IDENTIFICATION
COMPTAGE DE TRACES
48 Dc
1 Lo
1 Cm
Lo
1
VRAI NIDS 163 Dc
1 Lo
5 Ind
FAUX NIDS 39 Dc
PREDATES
21 Dc
3 Ind
ZONE 2
IDENTIFICATION
277 Dc
2 Ei
Lo
COMPTAGE DE TRACES
ZONE 3
1
VRAI NIDS 1267 Dc
2 Ei
1 Lo
6 Ind
FAUX NIDS 279 Dc
1 Cm
3 Ei
1 Ind
PREDATES
183 Dc
1 Ei
IDENTIFICATION
38 Dc
Lo
1
VRAI NIDS
83 Dc
2 Ei
17 Dc PREDATES
COMPTAGE DE TRACES
FAUX NIDS
24 Dc
1 Cm
ZONE 4
IDENTIFICATION
31 Dc
COMPTAGE DE TRACES 1 Lo
VRAI NIDS
240 Dc
1 Cm
3 Ei
225 Dc PREDATES
FAUX NIDS
101 Dc

III. ORGANISATION DE LA SAISON 2005/2006
III.1 PERSONNEL, CAMPS ET ACTIVITÉS RÉALISÉES
L’équipe de travail de Gabon Environnement est composée de 8 écogardes qui
couvrent les 4 zones d’étude. De nuit ils font des patrouilles nocturnes pour identifier les
femelles (pose de bagues et transpondeur, biométrie et photo identification) et de tour ils
effectuent des comptages de traces. Les comptages de traces permettent de complémenter
l´information de la nuit précédente sur le nombre de nids dans la zone, de sauver des femelles
coincées par des billes et de suivre les émergences.
Les activités réalisées au sein de cette étude seront un complément au travail des
écogardes et permettront de mieux comprendre l´importance des plages de Pongara comme
système d’incubation pour les nids de tortues luths.
Il y a trois camps répartis dans la zone d´étude: le camp 1 (la base) à la Pointe
Wingonbé, le camp 2 en zone 2 et le camp 3 entre les zones 3 et 4. Les deux premiers sont des
camps permanents et le troisième est un camp saisonnier. Un bateau à moteur fait le tour des
camps deux fois par semaine pour le ravitaillement.
Les activités se sont déroulées pendant la saison 2005/2006, entre le 4 novembre et le
3 avril et seront poursuivies pendant les 3 saisons prochaines. Le mois de novembre a été
utilisé pour l´acquisition du matériel et la reconnaissance des lieux.
Figure 2. Calendrier des activités réalisées dans le Parc National Pongara pour étudier la
nidification de la tortue luth Dermochelys coriacea.
SAISON 2005/2006
Marquage de nids Zone 1
01-15
Decembre
15 Dec -
01 Janv
01-15
Janvier
15 Janv-
01 Fev Février Mars
Transplantation de nids en enclos
Marquage de nids Zone 2
Profils de température zone 2
Suivi quotidien des nids naturels
Prise de mesures oologiques
Relocalisation de nids sur plage
Analyse des nids
Formation des écogardes

III. 2 FORMATION DES ÉCOGARDES
Grâce aux activités dérivées de cette étude, les écogardes ont reçu sur le terrain une
formation complémentaire concernant le travail scientifique sur les tortues marines:
Approche et comportement face à une espèce en voie d´extinction;
Usage des lumières sur une plage de ponte de tortues marines;
Techniques de collecte des oeufs et transplantation de nids de tortues marines;
Mesure de la profondeur du nid;
Comptage d´oeufs;
Observation du pôle animal sur les oeufs fertilisés;
Analyse de nids;
Remplissage des fiches d´analyse de nids;
Prise de mesures biométriques sur les nouveau-nés;
Prise de mesures oologiques;
Mesure du poids total de la ponte;
Collecte de prélèvements d´invertébrés dans les nids;
Embryologie: reconnaitre embryon pigmenté vs. non pigmenté, jumeaux,
prelèvements d´embryons morts;
Premières approches à l´écotourisme des tortues marines: comment lidérer un groupe
et lui montrer la tortue.
Aide pour étude des nids:
A partir du mois de janvier, un des écogardes a été spécifiquement désigné pour aider
l´étude des nids. Il a été formé pour faire le marquage, suivi et analyse de nids naturels sur
plage. Il a appris la méthodologie d´extraction et classification du contenu du nid, ainsi que le
remplissage des fiches d´analyse de nids. Il est resté en charge des analyses des nids Dc 62(II)
au Dc 78 en zone 2, les nids Dc 17 et Dc 18 en zone 1 et 4 nids à l´enclos. Il doit remplir les
fiches de chaque nid, récuperer les enregistreurs de température et remettre le tout au
coordinateur technique.
III.3 ENVIRONNEMENT
Les ordures ont été triées selon les catégories suivantes:
ORGANIQUE: Un trou pour les déchets organiques a été fait près du camp 2
PLASTIQUE ET MÉTALIQUE: Ce genre de déchets est remporté à Libreville avec le bateau
de ravitaillement.
EMBALLAGES: Tous les sacs en plastique, bocaux etc qui peuvent étre réutilisables.
A BRULER: cartons, papiers et tout ce qui peut se brûler sans produire de fumées toxiques.

IV.A) SUIVI DES NIDS NATURELS
a. Nomenclature des nids
IV. METHODOLOGIE
Les nids sont appellés Dc (pour Dermochelys coriacea) et nommés par ordre chronologique
de ponte. Il était programmé de marquer 21 nids en zone 1 (du 1 au 21) et 80 nids en zone 2
(du 22 au 101). Le nombre de nids marqués fut éventuellement réduit par manque de temps
mais la séparation entre les numéros de la zone 1 et 2 respecté. Les 6 pontes relocalisées sont
nommées du R1 au R6.
Zone 1 : Dc 01- Dc 18. (17 nids ; le nid Dc 15 fut marqué la nuit mais non retrouvé le jour
suivant).
Zone 2 : Dc 22 - Dc 78 (dû à une erreur de communication il y a deux nids Dc 62 qui ont été
nommés Dc 62 (I) et Dc 62 (II) pour les distinguer).
Enclos : E01-E13 13 nids de la zone 1 sont transplantés en enclos; 9 sont transportés en sac
plastique et 4 en panière isotherme.
b. Marquage des nids naturels
! Bague de nid
Une bague de nid est utilisée de manière à garantir une identification optimale du nid
jusqu’à son analyse. Cette bague est constituée d’une plaquette portant un numéro unique
permettant d’identifier chaque nid. Cette plaquette est en matière plastique ou en bois
(enfermée dans un sac plastique hermétique si en bois) et ne doit pas dépasser 25 cm 2 de
surface de manière à ne pas perturber l’émergence des nouveau-nés. Si le nid est identifié
au moment de la ponte de la femelle, la plaquette est déposée à plat sur le sable au-dessus
des œufs, après que la femelle ait recouvert les œufs d’une couche de 2-3 cm de sable.
! Marquage temporaire
Le nid est marqué temporairement pendant la ponte avec un bout de ficelle attaché a deux
bâtons ; le premier bâton et placé pendant le recouvrement du nid, a 20 cm de la surface,
avant que la tortue commence le brouillage actif avec les pattes antérieures (après la pose
de la bague de nid) et le deuxième reste en surface. Ceci donne une sécurité additionnelle
de retrouver le nid le jour suivant et une meilleure précision de la position exacte des
œufs.
! Marquage permanent
Le système de marquage permanent a lieu le jour suivant de la ponte et il est constitué de
4 solides piquets en bois. Deux d’entre eux portent une inscription composée d’un V (pour
végétation), d’un 1 ou d’un 2 (numéro du piquet), et du numéro d’identification du nid
figurant sur la bague de nid. Les deux autres portent une inscription composée d’un P
(pour plage), d’un 1 ou d’un 2 (numéro du piquet), et du numéro d’identification du nid
figurant sur la bague de nid. Les piquets « V » sont placés dans la végétation à l’arrière
plage tandis que les piquets « P » sont placés sur la plage au bord de la végétation
d’arrière plage. V1 et P1 sont placés en premier en alignement avec le nid selon un axe

perpendiculaire à la ligne de haute marée. Les distances de V1 au nid et de P1 au nid sont
mesurées, une extrémité du mètre étant située à l’extrémité supérieure du piquet tandis
que l’autre est située au sol au centre du nid. V2 et P2 sont ensuite mis en place également
en alignement avec le nid mais selon un axe formant un angle oblique avec la ligne de
haute marée. Les distances de V2 au nid et de P2 au nid sont mesurées de la même façon
que pour les piquets V1 et P1.
Figure 3. Représentation schématique du système de marquage permanent de nids avec les
piquets en bois.
c. Collecte des données
! Profondeur du nid
Si la tortue est rencontrée avant le début de la ponte, la profondeur du nid est mesurée.
Juste après le creusement, et avant que la femelle ait commencé à pondre les premiers
œufs, un mètre rigide (par exemple un mètre de ménuisier) est placé au centre de la cavité
du nid. La mesure est lue sur le mètre a l’endroit de son intersection avec la 5eme
protubérance de l’éperon caudal.
Figure 4. Représentation de la mesure de la profondeur du nid (A) avec le mètre de
menuisier et la 5 ème protubérance de l´éperon caudal (signalée par la flèche rouge).

! Comptage des œufs
Les vrais et faux œufs son comptés pendant la ponte au fur et a mesure qu’ils tombent du
cloaque de la femelle. La personne en charge est équipée d’un compteur mécanique qu’il
soutient d’une main. L’autre main est revêtue d’un gant en plastique et disposée sous le
cloaque de la tortue. Seuls les vrais œufs son comptés avec le compteur mécanique, les
faux œufs étant comptes de mémoire.
! Biométrie
La longueur et largeur courbe de la carapace sont mesurées quand la tortue commence a
reboucher le trou. Dans certains cas, la longueur est mesurée selon deux méthodes : A) sur
la carène vertébrale B) à côté de la carène vertébrale. Aussi la largeur courbe de la tête est
mesurée.
! Position du nid
Au moment du marquage du nid, sont mesurées la distance du nid à la végétation (endroit
où la végétation recouvre plus de 50 % de la surface du sol), et la distance du nid à la
dernière ligne de haute marée ;
d. Suivi des nids pendant l’incubation
Lors du suivi des nids, tous les événements particuliers ayant touché chaque nid sont
enregistrés. Pour les nids naturels, il peut s’agir notamment :
" de phénomènes d’érosion ayant affectés le nid,
" du creusement des nids par d’autres tortues marines femelles,
" d’une collecte des œufs par l’homme,
" d’une prédation des œufs par des animaux : si la prédation est totale, le nid est
enregistré comme prédaté. Si elle est partielle, les œufs prédatés et les débris sont
enlevés et le nid est rebouché. Le nid est enregistré comme partiellement prédaté et
les œufs touchés sont si possible comptabilisés (lorsque les œufs sont déterrés par
des prédateurs et dispersés sur la plage, ils devient souvent difficile, voire
impossible, de les compter). A la fin de l’incubation, le nid est analysé comme les
autres,
" d’une inondation par les vagues : la position du nid par rapport à la ligne de marée
haute (LHM) est enregistrée quotidiennement (cf figure ci-dessous).
LHM
(>LHM)
laisses de haute mer
(

IV.B) TRANSPLANTATION DES NIDS EN ENCLOS
! Collecte
" De manière à minimiser la mortalité des embryons due à la manipulation, tous les
œufs doivent être placés dans l’écloserie moins de 2 heures après la ponte (aucune
ponte ne doit rester sans être sortie de terre pendant une période de plus de 5 heures).
" Concernant les pontes qui doivent être transportées en sacs, un sac propre est disposé
dans le nid sous le cloaque en prenant soin de ne pas combler de sable la chambre
d’incubation et évidemment ne pas déranger la tortue (les œufs tombent directement
dans le sac sans avoir été pris à la main ou enduits de sable, ce qui présente un
avantage bactériologique). Le sac d’œufs est enlevé rapidement avant que le nid ne
soit recouvert ;
" Concernant les pontes qui sont transportées en panières isothermes, les œufs sont
récoltés dans le creux de la main à la sortie du cloaque, et placés doucement dans la
panière. Le nid de la luth étant très profond, en fin de creusement ont peu apporter
dans le nid quelques poignées de sable afin de diminuer la profondeur pour avoir les
œufs plus accessibles. Une couche de sable humide est placée au fond de la panière
avant de disposer les premiers œufs et une nouvelle couche de sable humide est
disposée au dessus des derniers œufs.
! Transport
" Les œufs doivent toujours être manipulés avec soin et tous les acteurs doivent avoir
conscience de leur fragilité ;
" La remise en nid doit être faite en moins de 3 heures après leur ponte afin de
minimiser les mouvements pouvant endommager les embryons et les effets négatifs
des variations de température et d’humidité des œufs.
! Enfouissement des œufs en enclos
" Chaque ponte transplantée doit être placée aussi rapidement que possible dans le nid
artificiel creusé à cet effet dans l’enclos ;
" Le remplissage de l’enclos s’est effectue selon le plan figurant ci-dessous et selon les
numéros d’ordre indiqués :
E1 E6 E11
E2 E7 E12
E3 E8 E13
Quadrants pour nids :
75x100 cm
Couloirs pour circuler entre les
nids et sur les bords :
15 cm
E4
E5
E9
E10
En jaune : nids pour suivi
température (tirés au hasard).

" Les nids artificiels sont construits en forme de gourde évasée largement à la base
(chambre d’incubation) et surmontée d’un col droit (puits). Un premier trou
cylindrique est creusé jusqu’à une profondeur égale à celle mesurée dans le nid naturel
plus 10 cm ; la base de ce trou est ensuite élargie par des raclages des parois à la main
jusqu’à obtenir une sphère d’environ 30-35 cm de diamètre.
" Les œufs sont placés dans le nid 2 par 2 et comptés pendant l´enfouissement. Le sable
humide enlevé durant le creusement du nid artificiel doit être employé pour couvrir les
œufs en le tassant fermement (le sable enlevé en dernier lors du creusement doit être
remis en premier au contact des œufs). Il est fortement déconseillé de mettre le sable
sec en contact direct avec les œufs ; celui-ci doit être utilisé uniquement dans le stade
final pour recouvrir le nid.
! Isolement de chaque nid en enclos
" Une protection cylindrique est placée au-dessus de chaque nid à partir du 50 ème jour
d’incubation (afin d’éviter le mélange des nouveau-nés à l’émergence). Cette
protection fait environ 40 cm de haut et forme un cylindre de 60 cm de diamètre. Le
dispositif cylindrique est enterré de 10 cm environ dans le sable.
! Précautions particulières
" La panière isotherme et les sacs sont lavés à l´eau et savon de Marseille et désinfectés
à la Bétadine ND avant chaque utilisation.
" Les faux œufs (œufs infertiles sans jaune) sont placés en dernier dans le nid artificiel.
" L’enclos doit faire l’objet d’une surveillance régulière. Il faut rétirer les graines qui
germent parfois sur le substrat afin d’éviter que des racines ne pénètrent jusqu’aux
œufs et les feuilles mortes tombés des arbres pour éviter la favorisation d´insectes.
! Mesures oologiques
" Le poids et 3 diamètres de 10 vrais œufs choisis au hasard sont notés pour chaque
ponte transplanté en enclos. Le poids est pris avec une balance de précision DENVER
PK-202 (capacité 200g, lisibilité 0,01g). Les diamètres sont mesurés en plaçant l´œuf
sur la paume de la main et en le faisant roter à chaque mesure avec un pied à coulisse.
" Le poids total des pontes est pris à l´aide d´un peson de 0-25 kg, la ponte étant dans un
sac plastique.
IV.C) SUIVI DE LA TEMPERATURE D’INCUBATION
! Pose des enregistreurs de température dans les nids
• 8 enregistreurs sont placés dans 8 nids tirés au hasard parmi les 13 nids de l’enclos.
• 8 enregistreurs sont placés dans 8 nids tirés au hasard parmi les 17 nids naturels
marqués dans la zone 1.
• 14 enregistreurs sont placés dans 13 nids dans la zone 2 ; deux enregistreurs sont
placés dans le même nid, au dessous et au dessus de la ponte (DC 59).

• 2 enregistreurs sont posés à côté des nids, à 80 cm en parellèle à la mer et à la même
profondeur des œufs pour évaluer la chaleur métabolique dégagée par les œufs
pendant l’incubation.
! Pose d’enregistreurs dans le sable pour profils de température
• 6 enregistreurs sont utilisés pour obtenir des profils de température de la plage de la
zone 2 ; 1 jeu de 3 enregistreurs est fixe et placé au camp 2 tandis que 1autre jeu de 3
enregistreurs est mobile et tourne sur les différentes sections de la zone 2 (la zone 2 est
partagée en sections selon l’hydrogéographie et la végétation d’arrière plage et le jeu
d’enregistreurs est changé de section toutes les semaines).
" Les enregistreurs utilisés pour les profil de température fixe, les 8 nids de l’enclos et
les 8 nids de la zone 1 sont paramétrés pour une prise de mesure toutes les 20
minutes ; toutes les articulations du boîtier et les ports de communication sont
étanchés à l’aide d’un mastic au silicone puis l’enregistreur de température est placé
successivement dans 3 sacs thermosoudés par 3 soudures distinctes.
" Les enregistreurs pour le profil de température tournant et les nids de la zone 2 sont
étanches de fabrication et parametrés pour une prise de température toutes les 30
minutes. Ceux qui sont posés dans les nids sont reliés à une ficelle attachés au piquet
P1 pour éviter qu´ils soient emportés par les hautes marées.
" Dans les nids, les enregistreurs sont placés pendant l’oviposition, au milieu de la ponte
(une fois que la femelle a pondu entre 40 et 50 œufs).
" Les 3 enregistreurs (de chaque jeu) utilisés pour les profils de température sont placés
à 30, 50 et 80 cm de profondeur ; les points GPS de la position des enregistreurs sont
relevés ; au cours des rotations, le jeu tournant est toujours placé au même endroit
dans chaque section.
IV.D) ANALYSE DES NIDS
! Moment de l’analyse
" Dans le cas où l’émergence de petites tortues est constatée par une observation directe
des nouveau-nés ou bien indirectement par l’observation des traces laissées sur le
sable par les émergentes, la date d’émergence est connue et l’analyse du nid est
effectué 3 ou 4 jours plus tard de manière à permettre aux éventuelles retardataires
d’émerger par elles-mêmes.
" Dans le cas où l’émergence n’est pas constatée, l´analyse est effectué le jour 75 après
la date de ponte.
! Creusement et extraction du contenu
" La pelle est utilisé pour dégager le sable sur une quarantaine de centimètres ; le
creusement ultérieur se poursuis à la main protégée par des gants caoutchouc, de
manière à éviter tout risque de contamination par le contenu parfois pourri des nids
analysés.

" Si des nouevau nés vivants sont trouvés lors du creusement du puits de ponte, le trou
est rebouché immédiatement avec du sable humide de manière à remettre le site en
état et ensuite d’attendre au moins 72 heures avant de recommencer le creusement.
" Le creusement est effectué verticalement jusqu’à toucher et apercevoir les premières
membranes. La ponte est précautionneusement délimitée et la distance de la surface du
sable aux premiers œufs est mesurée.
" Le contenu est retiré en dégageant chaque élément au maximum avant de l’extraire de
façon à ne pas le léser avant l’analyse. Les éléments sont retirés en les soulevant pardessous
plutôt qu’en les tirant par-dessus.
" Une fois toute la ponte extraite, la distance de la surface du sable au fond du nid
(profondeur du nid) est mesurée.
! Méthode d’analyse du contenu
Quatre catégories principales sont réalisées :
" La première rassemble tous les fragments de membranes d’œufs dont la partie interne
apparaît nette et propre. Les petits morceaux sont éliminés de manière à ne conserver
que les fragments représentant une membrane complète à plus de 50%, chaque
membrane comptant alors pour un œuf ayant éclos.
" La seconde catégorie rassemble les nouveau-nés rencontrés lors du creusement et de
l’extraction du contenu. Elle comprend les nouveau-nés vivants et morts trouvés lors
du creusement du puits de ponte, les nouveau-nés vivants et morts sortis de l’œuf et
trouvés dans la chambre d’incubation ainsi que les nouveau-nés vivants et morts dans
l’œuf éclos mais encore non extraits de la membrane. Concernant ce dernier groupe, il
s’agit de petites tortues à terme ayant déjà percé l’œuf grâce au caroncule corné situé
au bout de leur museau, et ayant déchiré la membrane à l’aide de leurs membres
antérieurs, mais restant encore au repos dans la membrane en attendant que le sac
vitellin soit internalisé.
" La troisième catégorie concerne les faux œufs qui sont répartis eux-même en trois
sous-catégories. La première représente les faux œufs non prédatés et pourris, la
seconde les faux œufs non prédatés et non pourris (le plus souvent déshydratés), et la
troisième les faux œufs prédatés. Concernant ce dernier groupe, le prédateur est, si
cela est possible, identifié. Tous les faux œufs sont ouverts de manière à vérifier qu’ils
rentrent bien dans la catégorie faux œufs (sans jaunes).
" La quatrième catégorie regroupe les œufs non éclos qui sont également classés en trois
sous-catégories : prédatés, non prédatés et non pourris, non prédatés et pourris. La
notion de pourriture n’est pas toujours évidente ; on prendra ici comme critère
principal le brunissement accentué de la membrane, avec dégagement de mauvaise
odeur à l’ouverture. Concernant les œufs prédatés, le prédateur est dans la mesure du
possible identifié et les œufs classés par type de prédateur. Chaque œuf est ensuite
délicatement ouvert afin de déterminer s’il est sans embryon (sans développement
apparent), s’il est doté d’un embryon non pigmenté, d’un embryon pigmenté, d’un
embryon à terme ou bien s’il n’est pas possible de déterminer l’absence ou la présence
de traces d’embryons. Les œufs des deux autres sous-catégories (non prédatés et non
pourris, non prédatés et pourris) sont également ouverts afin de déterminer s’ils sont
sans développement apparent, à embryon non pigmenté, à embryon pigmenté, à
embryon à terme ou bien s’il n’est pas possible de déterminer l’absence ou la présence
de traces d’embryons. Les œufs présentant une ouverture dans la membrane mais ne

correspondant pas à un déchirement de la membrane par les membres de la petite
tortue sont considérés comme des œufs non éclos.
! Prelèvements
" Tout organisme invertébré trouvé lors du creusement du nid ou en ouvrant les œufs est
prélevé pour identification. Ils sont conservés en alcool.
" Des embryons en bon état de conservation sont gardés dans du formol a 10% pour des
propos d’exhibition ou didactiques.
IV.E) ESTIMATION DU TAUX DE FERTILISATION
" 6 pontes condamnés ont été transplantés sur la plage en zone 2. Les œufs ont été
collectés en sac plastique et enfouis dans un nid artificiel creusé à marée haute selon le
protocole expliqué. Les nids sont ouverts après un nº variable de jours pour
l´observation du pôle animal sur les vrai œufs. Le pôle animal est le terme utilisé pour
désigner la zone de fixation de l´embryon à la membrane de l´œuf qui se calcifie
d´avantage. La calcification s´étend progressivement jusqu´à couvrir toute la
membrane de l´œuf.
" Tous les œufs sont sortis du nid et replacés en comptant les œufs fertilisés (pôle
animal visible) et les non fertilisés (pôle animal non visible). Les œufs sont examinés
en les plaçant collés à une source de lumière jaune (torche) et en prenant soin de
respecter la position qu´ils avaient dans le nid.
" Quelques fois le nid est ouvert et après sortir quelques œufs ont constate qu´aucun n´a
le pôle animal formé ; les œufs sont replacés et le nid rebouché pour attendre quelques
jours de plus.
" Les nids ainsi manipulés sont marqués pour évaluer la réussite à l´incubation. Ils ont
été nommés R pour relocalisé.

V. SYNTHESE PRELIMINAIRE DES RESULTATS
V.1 SUIVI SCIENTIFIQUE DES POPULATIONS
Pendant la saison de ponte 2005/2006 un total de 3759 vrais nids et 769 faux nids de
Dermochelys coriacea ont été signalés lors des comptages de traces quotidiens sur les 4
zones.
Figure 5. Vrais nids et fausses montées (faux nids) de Dermochelys coriacea signalés pendant les
comptages de traces sur les 4 zones du Parc National Pongara. Les résultats des saisons de ponte
2004/2005 et 2005/2006 sont comparés. Pour la saison 05/06 les chiffres correspondent au total jusqu´au
mois de janvier inclus pour les zones 3 et 4 et jusqu´au 18 février pour les zones 1 et 2.
VRAIS NIDS
FAUX NIDS
05/06 04/05 05/06 04/05
Zone 1 637 163 140 39
Zone 2 2244 1267 415 279
Zone 3 352 83 82 24
Zone 4 526 240 132 101
TOTAL 3759 1753 769 443
V.2 MARQUAGE DE NIDS NATURELS
Un total de 75 nids ont été marqués sur les zones 1 et 2 : 17 en zone 1 et 58 en zone 2.
Les nids marqués s´étendent sur une zone de 5 km, entre les coordonnées 9º 18,709 E - 0º
19, 188 N et 9º 18, 521 E – 0º 16,182 N. Le marquage de nids a été concentré entre le 15
décembre 2005 et le 15 janvier 2006. Les nids marqués en dehors de cette période (Dc 17 et
Dc 18 en zone 1 et du Dc 62 II au Dc 78 en zone 2) ont fait l´objet de l ´analyse pendant le
mois d´avril et donc ne sont pas comptabilisés pour la synthèse des résultats présentés dans ce
rapport.
Anormalités dans la numération des nids: Le nid DC 15 fut marqué mais pas retrouvé
le jour suivant pour le marquage permanent. Dû à une erreur de communication, il y a 2 nids
Dc 62, ils ont été nommés par ordre cronologique dans la ponte Dc 62 (I) et Dc 62 (II).
La sélection des nids n´a pas été 100% aléatoire avec une préference pour les nids à
marée haute

V.3 ZONAGE
A part les zones délimitées pour le suivi des tortues marines, différentes sub-zones ont
été signalées en fonction de la végetation d´arrière plage et de la morphologie de la plage.
Zone 1 :
A. Pointe d´Ekwata - Pointe Ngonbé : Plage en arc de 2,4 km à forte pente (surnommée
plage du Phare jusqu´à trouver son nom s´il y en a). Une embouchure fermée vers la
pointe Ekwata et plusieurs petites embouchures qui s´ouvrent et se referment selon les
pluies. L´extrémité du phare est une zone de haut risque pour les nids car inondable
par les ruisselements des mangroves et les hautes marées. Aussi, il existe une sortie à
la plage de la route provenant de la Pointe Denis par la forêt. C´est aussi une zone à
haute fréquentation humaine surtout les weekends. La forme en baie de cette plage
permet l´amarrage d´embarcations qui sont de plus en plus nombreuses les weekends.
La végétation d´arrière plage est forêt sclerophylle tout le long de la plage, devenant
un peu plus humide vers le phare, probablement dûe a la présence de zones inondées
par les mangroves.
B. Pointe Ngonbé- embouchure mangrove : plage ouverte océanique avec forêt littorale
sclérophylle par derrière.
Zone 2 :
C. Embouchure mangrove : Bande de sable de 5m de largeur dépourvue de végétation qui
s´ouvre normalement en saison de pluie.
D. Embouchure mangrove – Camp 2: Zone d´écoulement de la mangrove : couche de
sable de 1 m d´épaisseur; par dessous coulent les eaux de ruissellement de la lagune; la
plupart des nids sont inondés des la ponte. Un banc de sable de approx 3 m de de
largeur entre la ligne de haute marée et la lagune. Végétation inondable sur les bords
de la lagune, qui sert de jardin pour l´hippopotame et comme perchoir pour les hérons.
E. Plage ouverte : plage océanique à pente moins forte que la plage en arc avec système
de savannes et mangroves bordés de végétation littorale sclérophylle sur la partie
océanique (voire figure 1). La forêt devient de plus en plus humide vers les falaises de
Kingéré. Pour les profils de température cette section se divise en E (face au camp 2),
F (entre camp 2 et camp Moustache) et G (camp Moustache).
V.4 BIOMETRIE
ADULTES
Pour l´ensemble des femelles des nids marqués, la moyenne de la longueur courbe de
la dossière est de 154,03 cm (n= 74, dvst= 5,57) avec une longueur minimale observée de 141
cm et une longueur maximale de 168 cm. La moyenne de la largeur courbe de la carapace est
de 108,42 cm (n=74, dvst= 4,79) avec une largeur minimale de 100 cm et une largeur
maximale de 118 cm.
Sur les plages de Mayumba, Billes (2000) signale une moyenne pour la longueur
courbe de la dossière de 150.87 cm (n=902, écart type= 7.27) et de 108.43 cm (n=902, écart
type= 4.48) pour la largeur courbe. A Yalimapo en Guyanne francaise, Fretey (1978 signale
une moyenne pour la longueur courbe de la dossière de 154,6 cm (n= 1341, écart type= 8,98,
étendue= 135-192) et de 87,3 cm (n= 1341, écart type= 6,21, étendue= 70-120) pour la
largeur courbe.

La longueur courbe de la dossière a été mesurée selon deux méthodes sur 19 femelles
adultes : à còté de la carêne vertebrale (méthode utilisée dans la plupart des projets en
Amerique) et sur la carêne vertebrale. La moyenne de la différence entre les deux méthodes
est de 2,5 cm.
NOUVEAU-NES
Des données biométriques ont été collectées sur 13 nouveau-nés prélevés sur 2 nids.
Ces mesures ont été réalisées à l´aide d´un pied à coulisse : la longueur rectiligne de la
dossière est mesurée depuis l´encoche nucale jusqu´à l´éperon supracaudal et la largeur
rectiligne à l´endroit de la dossière le plus large. Le poids des nouveau-nés est également
enregistré à l´aide d´une balance de précision.
La moyenne de la longueur rectiligne de la dossière est de 55,7 mm (n=13, étendue
52,0 – 58,4, dvst= 2,43) et la moyenne de la largeur rectiligne est de 39,3mm (n= 13, étendue
35,7 – 41,9, dvst= 1,92). Le poids moyen est de 43,32 g (n=13, étendue 41,80 – 49,15, dvst=
2,43).
V.5 MESURES OOLOGIQUES
Des comptages effectués sur 36 pontes, nous donnent pour le nombre total d´œufs une
moyenne de 104 oeufs. Sur les 36 pontes, la moyenne pour le nombre d´œufs normaux est de
71 oeufs et la moyenne pour le nombre de faux œufs 34. Les faux œufs représentent en
moyenne 32% de la ponte. Parmis les 36 pontes, 13 sont des nids transplantés en enclos le
comptage ayant été effectué à la main en relocalisant les œufs dans le nid artificiel et 23 sont
des nids naturels marqués et laissés in situ sur la plage ou le comptage a été effectué à l´aide
d´un compteur a main.
Les œufs normaux ont un poids moyen de 80,199 g (n= 130, étendue 51,87-95,03,
dvst= 6,834) pour un diamètre moyen de 50,07 mm (n= 130, étendue 40,13-58,2, dvst=
1,96). Ces valeurs correspondent à 13 nids transplantés en enclos ou le poids et les 3
diamètres de 10 vrai oeufs pris au hasard ont été mesurés à l´aide de la balance à précision et
le pied à coulisse. Pour chaque œuf, la moyenne du diamètre est calculée à partir des 3
diamètres mesurés.
Le poids total d´une ponte est de 6,32 kg (n= 11, dvst= 1,25) avec un poids maximal
de 8,32 kg et minimal de 4,30 kg. L´ensemble de la ponte est dans un sac en plastique et pesé
à l´aide d´un peson de 0-25 kg ; 7 pontes sont des nids transplantés en enclos et 4 sont des
nids transplantés sur plage pour estimer le taux de fertilisation.
A Mayumba , Billes (2000) trouve une moyenne de 109,86 œufs par ponte, 77,78 œufs
normaux et 31,30 faux œufs representant 28,7 % du total de la ponte. Le poids moyen des
vrais œufs à Mayumba est de 80,091 g. A Ya :li :ma :po en Guyanne francaise, le nombre
total d´œufs par ponte est de 114,52 ± 21,47 avec 84,30 ± 15,62 vrai œufs et 30,22 ± 15,14
faux œufs qui représentent 25,34 % de la ponte et le poids moyen d´un vrai œuf est de 87,88 g
± 8,19 (Fretey, 1980).

Figure 6. Mesures oologiques de D. coriacea collectés pendant la saison de ponte 2005/2006 a
Pongara.
MESURES
OOLOGIQUES
COLLECTÉES
N
VALEUR
MOYENNE
± dev.st.
VALEURS
EXTREMES
MESURÉES
Nombre total d´œufs
par ponte
Nombre de vrais œufs
par ponte
Nombre de faux œufs
par ponte
% faux œufs par ponte
Diamètre des vrais œufs
(mm)
Poids d´un vrai oeuf (g)
Poids total d´une ponte
(kg)
36
pontes
130
oeufs
104 ± 23 38 - 149
71 ± 19 26 - 105
34 ± 18 0 - 77
32 % 0 – 67 %
50,07 ± 1,53 40,19 - 53,80
80,199 ± 5,425 51,87 – 95,03
11 pontes 6,32 ± 1,19 4,30 - 7,90
Figure 7. Comparaison de la biométrie des femelles adultes (longueur et largeur courbe de la
carapace) et mesures oologiques des luths a Pongara (Ikaran, 2006) et Mayumba (Billes, 2000)
au Gabon et a Ya :li :ma :po (Fretey, 1980) en Guyanne Francaise.
Pongara Mayumba Ya:li:ma:po
LCC femelle adulte
(cm)
lCC femelle adulte
(cm)
154,03 150,87 154,6
108,42 108,43 87,3
N total oeufs/ponte 104 109,86 114,52
N vrais oeufs/ponte 71 77,78 84,30
N faux oeufs/ponte 34 31,30 30,22
% faux oeufs 32% 28,7% 25,34%
Poids moyen oeuf
(g)
80,199 80,091 87,88

V.6 ECOLOGIE DU NID
V.6.i PROFONDEUR DU NID
La profondeur moyenne des nids est de 69.6 cm (n=52, dvst= 5,89) avec une
profondeur minimale de 40 cm et une profondeur maximale de 80 cm. Il est a noter que le nid
de 40 cm est un cas excepcionel, le reste des nids étant au moins profonds de 60 cm.
Les phénomènes d´érosion et accumulation de sable dans les plages produisent des
variations dans la profondeur du nid pendant la période d´incubation. Sur 29 nids ou la
profondeur du nid a été mesuré à la date de la ponte et à la date de l´analyse il y a eu
accumulation de sable sur 26 nids avec une moyenne de 13 cm (écart 28-2 cm). Les autres 3
nids avaient eu une réduction de la profondeur de 17 cm en moyenne (6, 34 et 11 cm). Il est
évident aussi que la mesure de la profondeur du nid pendant la ponte de la tortue n´est pas
aussi précise que la mesure prise lors de l´analyse du nid.
Figure 8. Variation de la profondeur du nid entre la date de la ponte et la date de l´analyse sur
29 des 75 nids marqués de D. coriacea a Pongara.

Figure 9. Possible relation entre la profondeur du nid et la taille de la femelle sur 52 nids de
tortue luth à Pongara.
V.6.ii POSITION DU NID SUR LA PLAGE
Les distances à la ligne de haute marée et végétation ont été prises pour tous les nids
marqués pour pouvoir les classifier en : « nids à marée haute » et « nids à marée basse ». Les
plages de Pongara sont si étroites qu´on doit mettre en cause l´utilité de la catégorie de « nids
à mi-marée ».
Les critères pour désigner les nids à marée haute et marée basse ainsi que les possibles
corrélations de la position du nid avec la réussite à l´incubation et le destin du nid seront
analysés dans les prochains mois.
V.6.iii SUIVI DE LA TEMPERATURE
Des enregistreurs de température ont été placés dans 20 nids (8 en zone 1 et 14 en zone
2) (voire annexe 3). Les enregistreurs sont posés au milieu de la ponte, typiquement après les
40 premiers vrais œufs (mode pose I). Dans un nid (Dc 59) 2 enregistreurs ont été posés : un
en dessous de la ponte et un autre au dessus de la ponte pour estimer la variation de
température dans un même nid (mode pose II et III). Pour deux des nids (Dc 52 et Dc 75), un
enregistreur a été posé dans le sable à la même profondeur mais éloigné 80 cm du nid pour
estimer la chaleur métabolique dégagé pendant l´incubation des œufs (mode pose IV). Le nid
Dc 52 ayant d´importants épisodes d´inondation par les marées, ce dernier enregistreur fut
retiré et replacé à côté du nid Dc 31.
6 enregistreurs de température ont servi à prendre la température du sable à différentes
profondeurs (30,50 et 80 cm) et à différentes sub-zones (plage ouverte, embouchure et zone
d´écoulement de mangrove). Un jeu de 3 est fixe en face du camp 2 ; un autre jeu est mobile
et reste 1 semaine à différents endroits.Ces profils de température pourront permettre
d´estimer la proportion de sexes des nouveau-nés produits sur les plages de Pongara. Le jeu

mobile à été posé aux différentes sub-zones décrites dans la section V.3 pour estimer une
possible variation de température selon l´hydrogéographie de la zone littorale.
L´analyse des données de température se déroulera dans les prochains mois et les
résultats seront ajoutés à ce rapport dès que possible.
Figure 10. Dates et heures de pose et retrait des 6 enregistreurs de température (jeu fixe et jeu
mobile) en zone 2.
SUB ZONE DATE POSE HEURE POSE DATE RETRAIT HEURE RETRAIT
E 29/12/05 13.00 5/1/06 17.00
C 5/1/06 17.30 12/1/06 17.20
D 12/1/06 17.40 20/1/06 17.00
F 20/1/06 17.30 28/1/06 17.00
G 29/1/06 13.30 4/2/06 18:30
C 4/2/06 19:30 14/2/06 16:30
D 14/2/06 17:00 23/2/06 18:00
E 23/2/06 18:20 4/3/06 16:00
F 4/3/06 16:30 13/3/06 10:00
C 13/3/06 15:00 21/3/06 07:00
D 22/3/06 07:00 29/3/06 12.00
E 29/3/06 12.10 3/4/06 9.00
jeu fixe E 15/12/05 11.30 29/3/06 8.00
V.7 TAUX DE FERTLISATION
Quelques jours après la ponte, l´embryon se fixe à la partie supérieure de l´œuf. La
partie de la membrane où la fixation a lieu commence à se calcifier d´avantage et devient
nettement visible ; c´est ce qu´ont appelle le pôle animal et c´est l´évidence que l´œuf a été
fertilisé. Les nids sont ouverts la nuit pour l´observation du pôle animal à l´aide d´une lumière
jaune. Sur 4 pontes transplantées en plage, la moyenne des vrais œufs fertilisés est de 53 %
(étendue 78 - 26%). L´apparition du pôle animal a lieu entre 4 et 10 jours après la ponte.
Calculer la fertilité à partir des œufs sans développement apparent trouvés lors de
l´analyse des nids n´est pas possible dans la majorité des nids prédatés par insecte car le
contenu des œufs est encore indeterminé (voire classification des œufs prédatés selon le
contenu).
Figure 11. Information sur le nombre de vrais œufs fertlisés et non fertlisés et le nombre de jours
écoulés entre la ponte et l´apparition du pôle animal dans 4 pontes de tortue luth a Pongara.
Date Ponte
N jours
apparition
pôle animal
Nº total vrai
oeufs
Nº œufs
fertilisés
Nº œufs non
fetilisés
% œufs
fertlisés
28/01/06 4 70 45 25 64
29/01/06 6 64 50 14 78
17/02/06 10 77 20 57 26
23/02/06 10 67 30 37 45

V.8 TRANSPLANTATION EN ENCLOS
13 nids ont été transplantés en enclos entre le 3 décembre 2005 et le 7 février 2006 ; 4
pontes ont été transportées en glacière, les œufs ayant été récoltés du nid ou en tombant du
cloaque et transferrés dans la glacière avec l´aide d´une deuxième personne et 9 pontes ont
été transportés avec sac en plastique, le sac étant placé sous le cloaque pour que les œufs
tombent directement dedans. Tous les oeufs ont été recoltés pendant la ponte et le délai entre
la ponte et la transplantation en enclos n´a jamais excedé 2h 15 minutes.
Sur chaque ponte transplantée, 10 vrais œufs ont été sélectionnés au hasard pour
prendre le poids avec la balance de précision et 3 diamètres avec le pied à coulisse. Pour les 7
dernières pontes, le poids total a été pris à l´aide d´un peson de 0-25 kg. Aussi, tous les vrais
et faux œufs sont comptés lors du placement dans le nid artificiel.
V.9 EVALUATION DE LA REUSSITE A L´INCUBATION
V.8i NIDS EN MILIEU NATUREL
L´analyse de 56 nids naturels a été réalisée 5 jours après la date prévue de l´émergence
des nouveau-nés, donc le jour 75 à partir de la date de ponte. Le pourcentage moyen de
réussite à l´éclosion est de 47 % (n=49, étendue 3-98). L´observation de nouveau-nés morts
ou vivants dans le puits de ponte ou la chambre d´incubation a seulement eu lieu dans 3 nids
(nouveau-nés morts pourris probablement prédatés au nombre de 1,1 et 3). Ces chiffres n´ont
pas été tenus en compte pour cet analyse préliminaire des résultats et la réussite à l´éclosion
peu se considérer comme égal à la réussite à l´emergence pour tous les nids sauf ces trois.
En moyenne, 47 % des nids analysés (n=26) ont eu des émergences. Il a été consideré
comme évidence d´émergence : a) observation directe des nouveau-nés b) observation de
traces de nouveau-nés en provenance du nid c) observation de membranes d´œufs propres à +
de 50% lors de l´analyse du nid. 43% (n=24) des nids analysés n´ont eu aucune évidence
d´émergence (0% de réussite à l´incubation), 5% (n=3) ont été emportés par l´érosion de la
mer et 5% (n=3) n´ont pas été retrouvé. 2 des 3 nids non retrouvés ont probablement été
complètement prédatés par les crabes. Des nids complètement disparus par l´action des crabes
ont déjà été observés au Cap Vert.
86 % des nids analysés ont été victimes d´une prédation souterraine (n=48) dont la
majorité 68% (n=32) a été exercé par des insectes. 18% des nids (n=9) ont été prédatés par
les crabes ocypodes et dans 13 % (n=6) des nids l´évidence des deux types de prédateurs a été
retrouvée. Les œufs prédatés par les crabes présentent une ouverture en forme de demi lune.
Le reste des œufs prédatés presentant differents types de trous, nettement différents des fentes
pratiquées par les crabes a été catalogué comme prédaté par insecte (voire description de la
prédation par insecte). Des larves ont été observés dans plusieurs nids ainsi que d´autres
invertebrés (voire liste complète d´invertébrés observés dans les nids).
Aucun des nids marqués n´a fait l´objet d´une prédation non-souterraine. Cependant
des varans (Varanus niloticus) en train de prédater d´autres nids ont été observés à plusieurs
reprises. Les varans sont facilement effrayés par la présence humaine. Dans ces cas, l´utilité
des faux œufs comme protection en cas de prédation pourrait être confirmée.

Figure 12. Destin des nids de Dermochelys coriacea analysés sur les zones 1 et 2 de Pongara. E=
émergence, I= prédation par insecte, C= prédation par crabe, IND= Indeterminé
DESTIN DU NID Nº DE NIDS % DU TOTAL
AVEC EMERGENCES
Non prédatés
E +C
E + I
E + C + I
26
2
7
13
4
47 %
SANS EMERGENCES
I
C
I + C
IND
24
20
1
2
1
43 %
ERODES 3 5 %
NON RETROUVES 3 5 %
Nº TOTAL NIDS 56 100%
Destin du nid :
NIDS AVEC EMERGENCE
Des nouveau-nés ont été observés directement dans 3 nids. Des traces de nouevau-nés
ont été observés dans 3 nids. Dans le reste des nids, l´évidence d´émergence correspond à des
membranes à + de 50 % retrouvées pendant l´analyse.
Non prédatés : Aucun œuf non éclos prédaté a été retrouvé lors de l´analyse du nid.
E+C : Nid avec émergences et œufs prédatés par crabes.
E+I : Nid avec émergences et prédation par insecte.
E+C+I : Nid avec émergences et prédation par crabes et insecte.
NIDS SANS ÉMERGENCES
Aucune trace d´émergence a été observée. Tous sont victimes d´une prédation
souterraine le plus souvent exercé par insecte (n=20). Il est rare de trouver des nids prédatés
par crabe sans aucune émergence (n=1).

NIDS ÉRODES
Ces nids ont été complètement emportés par la marée lors d´épisodes d´érosion des
plages (effet de la dérive littorale). Quelques nids ont été retrouvés sous le talus d´érosion et
ont pu être analysés. Ont trouve aussi des nids partiellement érodés: aprés l´épisode d´érosion,
le nid commence a se recouvrir de sable a nouveau par l´effet des marées et se retrouve à
nouveau à une certaine profondeur
Figure 13.
Répresentation d´un nid
partiellement érodé sous
le talus d´érosion.
NIDS NON RETROUVÉS
A la date prévue pour l´analyse, aucun nid n´a été retrouvé à l´emplacement
correspondant au mesures des quatre piquets enfoncés lors du marquage du nid. Un trou de
plus de 1 m de diamètre et au moins 1 m de profondeur a été creusé pour bien vérifier que le
nid n´était pas un peu déplacé par rapport au mesures.
Un enregistreur de température avait été posé dans un de ces nids non retrouvés.
L´enregistreur fut retrouvé à l´emplacement du nid mais aucun oeuf, ce qui suggère que le nid
a été completement prédaté et le contenu dispersé par les crabes. Des observations semblables
de nids completement disparu par l´action des crabes ont été observés au Cap Vert avec la
tortue caouanne.
Figure 14. Type de prédateur dans les 48 nids victimes d´une prédation souterraine.
TYPE PREDATEUR Nº NIDS TOUCHÉS % DU TOTAL
I
C
I + C
IND
TOTAL
32
8
7
1
48
67 %
17 %
14 %
2 %
100 %

ENCLOS DE TRANSPLANTATION
13 nids de tortue luth de la zone 1 ont été transplantés en enclos dans des nids
artificiels. 9 ont été transportés en sac plastique et 4 en glacière.
Le pourcentage moyen de réussite à l´éclosion et à l´émergence est de 0% ; aucun des
nids transplantés a eu des émergences. Les 13 nids ont été victime d´une prédation
souterraine par insecte. Le % d´œufs prédatés par nids est de 49,8 % pour les faux œufs en
moyenne et de 90,1 % pour les vrai œufs, les œufs presentant les mêmes formes de trous que
les nids sur la plage.
Des fourmis, trous de fourmis et de crabes ont été observés dans l´enclos pendant
l´incubation des nids.
V.10 MENACES SUR LES NIDS
PREDATION
La prédation souterraine est l´une des principales menaces pesant sur les nids de D.
coriacea à Pongara. Une étude approffondi sur les responsables de cette prédation sera
poursuivie pendant les saisons prochaines.
EROSION
Les plages de Pongara sont très dynamiques, très étroites et souffrent des épisodes
d´érosion quasiment tous les mois. Le % de nids emportés par l´érosion est probablement
sous-estimé, car étant l´une des principales menaces aux nids, avec la prédation.
LE SABLE COMME SYSTEME D´INCUBATION
Le sable semble avoir des traces d´humus en profondeur ce qui suggère un contenu
élevé en matière organique . Il es aussi frequent de trouver des racines dans l ´environnement
du nid. Il existe des zones inondés en permanence comme les zones d´écoulement des
mangroves. Des échantillons pour granulométrie, humidité et pH du sables seront collectés
sur les 4 zones pendant la saison prochaine.
BRACONNAGE DES OEUFS
Aucun évennement de pillage d´oeufs a été signalé sur les plages de Pongara. Dans
les années 80, Fretey et Girardin racontent que tous les nids sont systématiquement ramassés
de jour, après avoir été repérés la nuit et signalés par un bâton planté dans le sable. Cette
menace était jugé comme très préocupante pour la sauvegarde des tortues marines au Gabon.
BILLES D´OUKOUME
Les plages de la peninsule Pongara présentent des encombrements dangereux pour les
tortues venant pondre à cause de l´échouage de billes de bois liberées de trains flottants. Les
tortues n´arrivent pas toujours à se libérer de ces obstacles et il est fréquent de trouver des
luths bloqués par ces billes d´oukoumé. Les tortues coincées sont normalement trouvés lors
de comptages de traces du matin et l´opération de sauvetage, qui s´avère difficile, due au
poids de la tortue est effectué par les écogardes. Si la tortue n´étai pas découverte le même

matin, elle mourrai d´épuisement et désechement. Aussi, beaucoup de billes ont des fers
incrustés qui provoquent des blessures sur les tortues.
Les billes sont une menace surtout au niveau des femelles, mais aussi pour les nids et
les nouveau-nés.
V.11 OBSERVATIONS REMARQUABLES
# Plusieurs femelles présentaient aux pattes posterieures un trou en boutonnière
correspondant certainement a un marquage antérieur.
# Les faux oeufs sont pour la plupart pondus en dernier. Quelques-uns tombent parfois
encore lorsque la femelle rebouche le nids. Cependant il y a eu plusieurs observations
de « pontes fractionnés » ou les faux œufs sont pondus tout le long de la ponte, entre
les vrai œufs.
# La présence humaine peut réduire considérablement la prédation des nids par les
varans.
# Il est très fréquent de voir une femelle de luth en train de creuser son nid et
desenterrant les œufs d´un autre nid déjà pondu (surcreusement)
# Le champignon pathogène Fusarium oxysporum, déjà observé colonisant les
membranes des oeufs de tortue caouanne au Cap Vert, a été observé aussi sur les vrais
et faux oeufs de tortue luth à Pongara.
# Les femelles paraissent sortir ensemble, par groupes, selon les marées et l´intensité
lumineuse.
# La zone d´écoulement de la mangrove en zone 2 et les embouchures de mangrove sont
des zones à haute fréquentation.
# Des jumeaux d´embryons non pigmentés ont été observés et photographiés lors d´un
analyse de nid.
# Des embryons pigmentés et non pigmentés ont été préservés dans du formol à 10%
pour exhibition.
# Plusieurs nids pondus à marée basse présentaient un % élevé d´oeufs non éclos avec
embryon pigmenté; il reste à confirmer que les nids à marée basse sont des nids
vraiment condamnés!
# La strategie de conservation utilisée dans tellement de projets basée sur la
transplantation des nids dans des zones plus sures a marée haute pourrai se réveler
inutile dans le cas des plages de Pongara si la prédation par insecte se confirme plus
fréquente dans les nids près de la végétation.
V.12 ECOTOURISME
Les premiers groupes de touristes sont venu au camp 2 pendant le mois de février. Les
écogardes ont recu des recommendations sur la facon de lidérer un groupe de touristes sur
une plage de ponte et le comportement à adopter face a la rencontre avec une tortue.
NOTE IMPORTANTE
Tous les nids transplantés en enclos et sur plage sont des “nids condamnés”; c´est a dire, des
nids pondu dans les zones de haut risque (marée basse ou zones d´écoulement de mangroves
ou le sable est inondé).

VI. OBSERVATIONS CONCERNANT LA PRÉDATION
SOUTERRAINE DES NIDS
VI.1) PREDATION PAR CRABE
(a) Observations
1. Nids prédatés
On observe des trous sur le sable autour du nid et des membranes d´oeufs vides. Parfois, des
plaquettes de nids ont été retrouvées à la sortie de ces trous. Le contenu du nid est dispersé sur
plusieurs étages de la profondeur du nid (on retrouve des membranes). Parfois, le nid a
complètement disparu. Il est rare de trouver des nids prédatés à 100% par les crabes,
normalement il y a toujours un % variable d´émergences.
2. Trous
Figure 15. L´ouverture typique des
oeufs prédates par crabe est une
fente allongé en forme de demi lune.
3. Opportunisme
Les nids mis à jour par des phénomènes d´érosion ou lors d´évènements de surcreusement par
les tortues sont attaqués par les crabes.
4. Crabes dans les nids
Il est fréquent de trouver des crabes dans les nids lors du creusement pour l´analyse.
5. Nouveau-nés
Les trous des crabes sont des véritables pièges pour les nouveau-nés qui vont vers la mer.
(b) Hypothèses
Les crabes sont plûtot des prédateurs opportunistes des oeufs et jouent un rôle plus important
au niveau de la prédation des nouveau-nés.
VI.2) PREDATION PAR INSECTE
(c) Observations
1. Trous

i) Trou circulaire de la taille de la tête d´une épingle.
ii) Trou aux bords dentelés arrondis.
iii) Trou aux bords dentelés arrondis de la largeur du diamètre de l´oeuf.
i) ii) iii)
Figure 12. Représentation schématique des types d´ouverture trouvés sur les oeufs prédatés.
2. Contenu des oeufs prédatés
Les oeufs vrais et faux sont attaqués. Les faux oeufs sont normalement vides ou remplis de
sable. Les vrais oeufs prédatés ont pu se regrouper en plusieurs catégories selon le contenu de
l´oeuf. Le nombre d´oeufs de chaque catégorie a été pris dans chaque nid prédaté; les %
seront obtenus prochainement.
Classification des oeufs prédatés selon le contenu:
I) SABLE: La membrane est complètement remplie de sable sans aucun reste de
matière organique. Typiquement on trouve des cadavres de fourmis en grand
nombre.
II) SABLE GRIS: sable mélangé à des restes de matière organique de couleur
grisâtre. Typiquement, on trouve des gros asticots blancs.
III) RESTES D´OEUF: Restes de matière organique de couleur gris-vert argenté.
IV) CONTENU SEC: Substance de couleur marron; l´aspect est de terre ou humus
Typiquement associé à des acariens
V) EMBRYON PIGMENTÉ POURRI: Ont distingue nettement des restes d´écailles
et os ainsi que du sang.
VI)
VII)
VIDES: Seule apparait la membrane de l´oeuf avec l´ouverture caractéristique.
S.D.A. (Sans Développemnt Apparent): Les restes d´oeuf sont de couleur jauneblanc
et non pourris. Pas très fréquents.
Il existe aussi des stades intermediaires (l´oeuf étant rempli à 50% par chaque stade):
SABLE-SABLE GRIS
SABLE GRIS-RESTE D´OEUF
RESTES D´OEUF-CONTENU SEC

3. Matière grise
Dès le début, le pourquoi de la couleur grisâtre du sable a été mise en question: Est ce
simplement la couleur de la pourriture ou est ce l´indice d´un embryon non pigmenté??
Il a été intéressant de découvrir dans ces “restes d´oeuf argentés” des tout petit bouts d´os. Ce
qui nous amena à penser que les “restes d´oeufs” sont le stade suivant de “l´embryon
pigmenté pourri”.
4. Invertébrés dans les oeufs et l´environnement du nid
FOURMIS: mortes dans l´intérieur des oeufs prédatés (notament les oeufs remplis de sable et
restes d´oeuf) et vivantes dans la chambre d´incubation. Il n´y a pas eu d´observation de
fourmis en surface sauf dans l´enclos ou des “trous” de fourmis en forme de crater volcanique
TERMITES: vivants dans et autour des oeufs. Il a été prouvé qu´ils mordent. Les termites
paraissent être associés à un aspect “rouillé” des oeufs et à un stade plus avancé; voir , vieux
de l´oeuf .
ACARIENS: sont surtout trouvés dans les oeufs avec le contenu sec mais on peut les trouver
aussi à d´autres stades.
VERS DE TERRE ROUGE: sont trouvés surtout dans les nids inondés, notamment ceux de
la zone d´écoulement de la mangrove, mais aussi dans les nids de zone de plage. Observés
dans et autour des oeufs.
INSECTE A QUEUE DE FOURCHETTE: dans la chambre d´incubation du nid, en dehors
des oeufs.
ASTICOTS BLANCS de différentes tailles dans les oeufs prédatés.
PUPE: a été retrouvée à deux reprises, dans l´intérieur des oeufs prédatés et entre les cadavres
de fourmis.
LARVE DE SCARABÉE: trouvée une seule fois.
5. Cas du nid R6
Nid ouvert 10 jours après la ponte pour estimer le taux de fertilisation:
On trouve 11 vrais oeufs avec les trous caractéristiques de prédation par insecte. Apres
ouverture des oeufs le contenu se révèle le suivant:
Des fourmis noyés dans le jaune de l´oeuf. Le jaune de l´oeuf présente aussi des
“coagules” de sable.
D´autres oeufs prédatés étaient déjà remplis de sable et de termites vivants. La
membrane de l´oeuf presente un aspect rouillé.
La zone òu le trou est fait pourrait coïncider avec la zone de fixation de l´embryon à la
membrane (pole animal).

Implications de cette observation:
Les fourmis attaquent des oeufs dans le premières phases du développement
L´oeuf commence à se remplir de sable dès le début
Les termites interviennent aux premiers stades de la prédation.
6. Oeufs non prédatés et non éclos
Les oeufs non prédatés sont souvent des oeufs sans développement apparent.
7. Position des nids:
Les nids typiquement prédatés par fourmis a 100% (sans émergences) sont des nids près de la
végetation mais il y a eu aussi des observations de prédation dans des nids à marée basse.
(d) Information complémentaires
1. Identification des invertebrés
Des prélèvements de tous les invertébrés ont été pris.
Les fourmis ont été identifiées comme Dorylus spininodis Emery par Yves Braet.
La véritable identité des “termites” reste à confirmer.
La pupe pourrait appartenir à une mouche de la famille des Sarcophagidés.
La larve ressemble à celles des scarabées Elateridés.
Les petits asticots fins et blancs pourraient appartenir aux mouches de la famille des
Cypselidae observées en grand nombre sur le sable de la plage.
2. Dorylus spininodis Emery.
Les fourmis appartiennent à la famille Dorylinidae, connues comme fourmis légionnaires
(army ants) ou manians. C´est une espèce pan-africaine (Braet, pers. comm) et donc,
l´hypothèse d´une espèce introduite est éliminée. Il se peut que ce soit la première fois qu´on
la cite au Gabon. Une des principales caractéristiques est leur comportement hypogé
(souterrain). Ceci entraîne une évidente difficulté pour les étudier , leur biologie restant
encore pratiquement inconnue.
3. Régime et comportement alimentaire de D. spininodis
Deux caractéristiques de leur comportement alimentaire (Berghoff, 2002) son très
interessantes vis à vis de leur interaction avec les oeufs des tortues:
i. Capables d´exploiter des sources de nourriture encombrantes pendant plusieurs
semaines, voire des mois (exemple nids de termites ou appâts).
ii. Régime formé d´aliments naturellement riches en lipides: des expériences avec
appâts démontrent que les fourmis Dorylus mangent de la banane, du thon, pâte
d´arachide, riz et sont particulieremnt attirés par l´huile de palme. D´ailleurs, la
méthode la plus efficace trouvé pour l étude de ces fourmis est à base d´appâts
contenant de l´huile de palme.

4. Autres cas de prédation par fourmis
La prédation par Dorylus spp. est signalée en Afrique du sud sur des nids de Caretta
caretta: les fourmis attaquent les nouveau-nés quand ils vont vers la mer et les embryons dans
les oeufs. On ne trouve pas de corrélation avec la position du nid (Maxwell, 1988).
(e) Hypothèses
1. Relation entre le stade de l´oeuf prédaté et le colonisateur
Les différents invertébrés (asticots, acariens, termites..) colonnisent les oeufs à differents
stades, ou même ont une préference pour un stade en particulier?
Les fourmis attaquent préférablement les œufs avec développement embryonnaire.
2. Succession dans le contenu de l´oeuf prédaté
Embryon pigmenté pourri
! restes d´oeuf argentés ! sable gris
Les “restes d´oeuf” de couleur argenté sont le stade suivant à l´embryon pigmenté attaqué par
les fourmis qui finit par se liquéfier complètement. Après, l´oeuf commence à se remplir de
sable (ce qui devient le “sable gris”). Dans ce cas, les fourmis attaquent des oeufs à un stade
avancé du developpement embryonnaire.
Les “sable” ou “sable-sable gris” seraient des oeufs qui ont été attaqués plus tôt dans la
période d´incubation (encore sans embryon, comme le cas du R6 ou avec embryon non
pigmenté).
3. Interaction entre les fourmis et les nids de tortues marines:
Les nids de tortues constituent une source d´alimentation fiable, durable et riche en
lipides sur laquelle les fourmis ont pu développer une certaine spécificité.
Les nids de tortues peuvent fonctionner comme appâts pour l´étude de la biologie de ces
fourmis.
Nids de tortues: des
pièges à fourmis?

VII. RECOMMENDATIONS ET PLANIFICATION POUR LA
SAISON 20056/2007
VII. 1 PROPOSITIONS POUR AMELIORER
! Redistribution des zones
Zone 1 : Camp 1- phare de Ngonbé
Les patrouilles de la zone 1 s´arrêtent au Phare. Deux écogardes basés au camp 1 font les
patrouilles nocturnes et comptages de traces. Ceci permettra d´avoir une meilleure
surveillance sur cette plage.
Zone 2 : Phare Ngonbé- Falaises de Kengeré
4 écogardes basés au camp 2 font deux groupes de patrouilles nocturnes et comptages de
traces. La zone pourrait être subdivisée en deux pour chaque groupe.
! Missions spécifiques des écogardes
- Le comptage de traces sur la zone 2 devient une mission spécifique (la personne en charge
ne fait pas de patrouille de nuit et enregistre les points GPS des nids).
- Une personne pour aider l´étude de marquage et suivi des nids naturels.
! Fiches de terrain
Fiche d´identification pour les patrouilles de nuit (voire modéle annexe) :
Les écogardes emportent en patrouille des fiches en papier imperméable : Ils ont seulement
besoin de remplir l´information dans les espaces en blanc sur la fiche. Cela permet d´agiliser
le travail (diminuer le temps passé avec chaque femelle) et d´augmenter le nº de tortues
travaillées dans la nuit.
Les écogardes peuvent continuer à porter le carnet, pour noter des informations extraordinaires
(ex. rencontre avec une tortue d´une autre espèce que D.c.)
Fiche de suivi de nids marqués :
Une fiche à tenir par la personne en charge du suivi quotidien des nids marqués. La fiche a un
espace pour chaque nid marqué où la personne qui fait le suivi va noter toute information
importante. Chaque jour, le responsable du projet enregistre l´information de chaque nid sur
les fiches de suivi des nids naturels.
! Materiel pour écogardes
Torches frontales à double lumière rouge et blanche
Sacs à dos
Papier imperméable (distributeur www.riteintherain.com)
Sacs ziploc toutes tailles
Montres résistantes a l’eau
Montres réveil

! Matériel pour étude des nids
Mètre menuisier pour la profondeur du nid.
Compteur à main pour compter le nº oeufs pondus.
Pieds à coulisse pour mesures oologiques et nouveau-nés
Décamètre.
Mètre couturière de 2 m pour la longueur courbe de la dossière.
GPS avec software pour ordinateur.
Balance de précision pour mesures oologiques.
Colonnes de tamisage pour échantillons de granulométrie.
Petits pesons de 0-100 g pour peser les nouveau-nés (sont plus facile à porter que la balance
de précision).
Tubes eppendorf avec alcohol pour prélevements d´invertebrés sur les nids.
Alcool 70º pour permettre l´analyse de DNA sur les prélèvements.
Pour bien faire, le petit matériel devrait être en double (un jeu dans chaque camp).
! Protocole de travail
RELECTURES : En cas de relecture, seulement sont enregistrés le nº de bagues ou
transpondeur pour agiliser le travail.
PRISE DE LA MESURE LCC : Standariser la méthode pour qu´elle soit comparable aux
mesures prises dans d´autres projets.
ORDRE DES ACTIONS : Continuer les efforts pour bien définir le protocole d´actuation en
cas de rencontre avec les femelles en prenant soin de suivre l´ordre des manoeuvres qui
perturbe le moins la femelle.
USAGE DE LUMIERE :
Réduire au minimum l´usage des lumières sur la plage.
! Formation des écogardes
Approfondir sur la partie concernant le marquage de nids, la transplantation et le suivi des
émergences.
Recommendations sur l´approche des touristes sur des plages de ponte et dans un parc
national.
Logistique :
- Régulariser le système de ravitaillement des camps : courses et transport de la nourriture
jusqu´aux camps ; création d´un nouveau poste de travail « le ravitailleur ».
- Système de communication entre les camps : création d´un nouveau poste de travail « le
méssager » ou bien acquisition de radios.
- Accueil des chercheurs : maison pour chercheurs au camp 2 avec dortoir, petit laboratoire
et magasin pour stocker le matériel de recherche (prélevements, fiches, matériel
patrouille,etc).
- Achat de filtres pour purifier l´eau.

VI. 2. PLANIFICATION D’ACTIVITES POUR SAISON 2006/2007
! Pour avoir un échantillonnage de nids représentatif de la zone :
Marquage de nids 100% aléatoire.
Agrandir l´étendue spatiale et temporale du marquage de nids
! Etude de la plage comme système d´incubation :
Granulométrie du sable ;
Humidité du sable ;
pH du sable ;
Cartografie de la couverture végétale e inventaire des écosystèmes côtiers.
! Etude approfondie de la predation souterraine des nids :
Identification des espèces d´invertébrés retrouvés dans les nids
Incubation des asticots pour identification
Continuer les prélèvements
Transplantation de nids condamnés pour ouverture à différents moments de
l´incubation.
Enterrement d´œufs prédatés de différents stades pour suivre l´évolution.
! Suivi des émergences :
Pose de grillage sur les nids marqués le jour 60 pour assurer la récuperation des
nouveau-nés et pouvoir avoir les temps d´incubation
! Manipulations :
Relocalisation de nids érodés a terme : étudier la possibilité de sauver des nids érodés,
la transplantation de nids dans les derniers phases du developpemnt embryonaire peut
s´avérer inoffensive.
Suivi de nids inondés : marquer des nids inondés (ex. dans les zones d´écoulement de
mangrove) pour les ouvrir à differents moments de l´incubation.
! Etudes specifiques :
ETUDE DE CORRELATION ENTRE LES MAREES, L´INTENSITÉ LUMINEUSE
ET LES SORTIES EN GROUPES DE TORTUE LUTHS DANS LA PLAGE ENTRE
EKWATA ET LE PHARE.
ETUDE SPATIALE DE LA DISTRIBUTION DES NIDS SUR LES PLAGES DE
PONGARA ; DEFINIR LES ZONES DE HAUTE ET BASSE FRÉQUENTATION,
LES VARIATIONS INTERANNUELLES DE CES ZONES ET LES POSSIBLES
CAUSES
Enregistrer les points GPS des nids pendant les comptages de traces.
! Outils de travail : SYSTÈME D´INFORMATION GEOGRAPHIQUE pour
cartographie de la zone littorale et distribution spatiale des nids.

! Genetique :
Collaboration entre les différents groupes qui travaillent sur la génetique de la luth
dans l´Atlantique pour l´analyse des prélèvements provenant de Pongara.
! Sensibilisation :
Soirées colloques sur tortues marines aux centres touristiques proches.
Renforcer les liens avec la communauté de la Pointe Denis.
Visites des écoles de Libreville sur le site.
VI.3 RECOMMENDATIONS
# Aire Marine Protégée
# Etude approfondie (suivi des montées de tortues marines, activités humaines et
cartographie de la zone littorale) sur la plage entre la Pointe Ngonbé et Ekwata car
étant la plus menacés par l´avance du tourisme.
# Plan d´aménagement de l´aire littorale du PN Pongara
# Réglementer les activités humaines et la construction sur la zone littorale.
# Renforcer les liens avec les communautés locales.

CONCLUSIONS
# Les plages de Pongara, et particulièrement la zone comprise entre le phare de Ngonbé
et les falaises de Kingeré, avec près de 4000 nids pour la saison 2005/2006 est
probablement l’une des zones les plus importantes au monde pour la ponte de la tortue
luth, Dermochelys coriacea.
# La conservation du site face au développement touristique doit étre assurée.
# Les principales menaces au nids sont la predation souterraine et l’érosion.
# Le braconnage des nids, consideré un des menaces principales dans les années 80, a
été significativement réduit a 0% sur les plages de Pongara.
# Il est essentiel de continuer les efforts pour standariser et régulariser le protocole de
travail des écogardes sur le terrain vis a vis de l´étique scientifique et l´acceuil de
l´écotourisme.
# La fourmi Dorylus spininodis Emery appartenant au groupe des fourmis légionnaires
ou manians est retrouvé en grandes quantités morte dans les oeufs prédatés et vivante
dans les nids de D.coriacea
# Une étude approfondie sur la prédation souterraine s´avère necessaire pour confirmer
l´identité du prédateur.

BIBLIOGRAPHIE
1. BERGHOFF, S. 2002 “Sociobiology of the hypogaeic army ant Dorylus (Dichtadia)
laevigatus Fr. Smith” PhD dissertation.
2. BILLES, 2000. CAMPAGNE NYAMU- RAPPORT FIN DE SAISON 1999/2000
3. DONLAN E.M. 2004 “Predation of Caretta caretta (Testudines: Cheloniidae) Eggs by
larvae of Lanelater sallei (Coleoptera: Elateridae) on Key Biscayne, Florida”.
Caribbean Journal of Science, Vol 40, Nº 3, 415-420.
4. FRETEY, 2001. “Biogéographie et conservation des tortues marines de la côte
atlantique de l´Afrique”.CMS Technical Series Publication Nº 6.
5. FRETEY, 1980. “Les pontes de la tortue luth D. Coriacea en Guyanne Francaise”.
Rev. Ecolo. (Terre Vie) vol 34.
6. FRETEY & GIRARDIN, 1989. “Données préliminaires sur les tortues marines au
Gabon”. C.R. Soc. Biogéogr. 65 (1): 39-57.
7. MAXWELL, J.A. et al. 1988. “A microenvironmental study of the effect of
temperatura on the sex ratios of the loggerhead turtle, Caretta caretta, from
Tongaland, Natal”. S.-Afr. Tydskr. Dierk, 23 (4).
8. VANDE WEGHE Jean Pierre, 1980. Les Parcs Nationaux du Gabon: AKANDA ET
PONGARA Plages et Mangroves.
Remerciements:
Yves Braet pour toute l´info sur les fourmis et les références sur la prédation des nids ;
Toutes les autorités administratives de Libreville et Pongara (CNPN) ;
ECOFAC-Espèces Phare
Ecogardes (Joel, José, Moise, John, Didier, Bonvin, Bona) et employés de Gabon
Environnement et Gabon Découvertes;
Alexis Billes Jacques Fretey, Dominique Roumet Sandrine Riçois, ,Sabrina ;
Justine Dossa, Blaise, Julie, Cathy, Geoffrey;
Les habitants de la Pointe Denis ;
Leontine , Stéphane, Alexandre et Mamadou ;
Et surtout… à ma bien aimée petite famille laissée en arrière au Pays Basque qui se demande
quelle mouche m’a piqué pour me faire venir au Gabon.

ANNEXE 1: PLAN DES PLAGES ET CAMPEMENTS DE GABON ENVIRONNEMNT AU PARC
NATIONAL DE PONGARA
Parc National de Pongara Saison tortues marines. 2005/2006
Km 0
Camp 1. Siége social Gabon
Environnement. Ecotourisme
Zone 1
Km
4,8
Km
6,3
Sortie de mangrove
Camp 2. Camp
écotourisme Kingéré
Zone 2
Km
13
Pointe Kingéré
Zone 3
Km
18,5
Camp 3. Camp
provisoire tentes
Zone 4
Km
24,5
Falaises de Goumbi

ANNEXE 2: LISTE DES NIDS DE D.c. MARQUES EN ZONE 1 ET ZONE 2
CODE NID ZONE
DATE
PONTE BAGUE G BAGUE D PIT
DC 01 1 22/11/05 KUD 03088 KUD 03531 0006746660
DC 02 1 4/12/05 KUD 03576 KUD 03586 0006746731
DC 03 1 8/12/05 KUD 03100 KUD 02817 00067488A2
DC 04 1 14/12/05 KUD 07006 KUD 07005
DC 05 1 18/12/05
DC 06 1 23/12/05 KUD 03008 KUD 03007 0006748CC8
DC 07 1 23/12/05 KUD 03195 KUD 03831 000674864E
DC 08 1 23/12/05 KUD 03636 * KUD 03050 0006745A43
DC 09 1 29/12/05 KUD 07007 KUD 07008
DC 10 1 29/12/05 KUD 04637 * KUD 04646 *
DC 11 1 29/12/05 KUD 07009 KUD 07010
DC 12 1 2/1/06 KUD 07028 KUD 07029
DC 13 1 2/1/06 KUD 07030 KUD 07031
DC 14 1 10/1/06 KUD 03058* KUD 03862* 0006748D8D
DC 16 1 15/1/06 KUD 05978 KUD 05977
DC 17 1 22/2/06 KUD 07086 KUD 07087
DC 18 1 1/2/06 KUD 03729 KUD 03860
DC 22 2 9/12/05 KUD 03704 KUD 03705 0006746C2A
DC 23 2 13/12/05 KUD 03361 KUD 03037
DC 24 2 14/12/05 KUD 03729 KUD 03860 0006749191
DC 25 2 15/12/05 KUD 03208 KUD 03873 0006747899
DC 26 2 15/12/05 KUD 03728 KUD 03069
DC 27 2 16/12/05 KUD 03070 KUD 03866
DC 28 2 17/12/05 KUD 03484 KUD 03004
DC 29 2 18/12/05 KUD 03828 KUD 03441 0006745FC
DC 30 2 20/12/05
DC 31 2 20/12/05 KUD 07163 KUD 07172
DC 32 2 21/12/05 KUD 07161 KUD 07157
DC 33 2 22/12/05 KUD 07003 KUD 07004
DC 34 2 26/12/05 KUD 03859* KUD 03053*
DC 35 2 27/12/05 KUD 03212* KUD 03783*
DC 36 2 27/12/05 KUD 03826 * KUD 03459 *
DC 37 2 28/12/05 KUD 04657 KUD 04697
DC 38 2 27/12/05 KUD 03460 KUD 03480
DC 39 2 27/12/05 KUD 04693 KUD 03485
DC 40 2 28/12/05 KUD 04683 KUD 04678
DC 41 2 2/1/06 KUD 03418 KUD 04616 00067493C4
DC 42 2 2/1/06 KUD 03797 KUD 04603 0006746777
DC 43 2 2/1/06 KUD 04699 KUD 0602 0006745A3D
DC 44 2 4/1/06 KUD 07146 KUD 07143
DC 45 2 4/1/06 KUD 03673 KUD 03674
DC 46 2 6/1/06 KUD 07027 KUD 07026
DC 47 2 7/1/06 KUD 04582 KUD 07137 0006746B27
DC 48 2 7/1/06 KUD 07032 KUD 07033
DC 49 2 7/1/06 KUD 04583 KUD 07106 00067461C0
DC 50 2 7/1/06 KUD 07105 KUD 07117 000674871C
DC 51 2 8/1/06 KUD 04529 KUD 04535
DC 52 2 8/1/06 KUD 03205* KUD 03043*
DC 53 2 8/1/06 KUD 04684 KUD 04601
DC 54 2 8/1/06 KUD 04698* KUD 04674*
DC 55 2 8/1/06
DC 56 2 8/1/06 KUD 07034 KUD 07035
DC 57 2 11/1/06 KUD 04544 KUD 07115 0006748334

DC 58 2 11/1/06 KUD 03111 KUD 03730 000674633E
DC 59 2 12/1/06
DC 60 2 15/1/06 KUD 07148* KUD 07147* 000674606D
DC 61 2 15/1/06 KUD 05753 KUD 05771 0006746173
DC 62 (I) 2 15/1/06 KUD 05759 KUD 05760 00067476BF
DC 62 (II) 2 20/1/06 KUD 07028 KUD 07029 0006746798
DC 63 2 21/1/06 KUD 03500 KUD 03042 0006748967
DC 64 2 21/1/06
DC 65 2 21/1/06 KUD 03603 KUD 03621 0006746067
DC 66 2 22/1/06 KUD 07153 KUD 07166 00067480CE
DC 67 2 24/1/06 KUD05735 KUD 05816 00067469EB
DC 68 2 25/1/06 KUD 05802 KUD 05823 0006748AF2
DC 69 2 25/1/06 KUD 05810 KUD 04518 0006745C76
DC 70 2 27/1/06 KUD 05877 KUD 05839 0006745A83
DC 71 2 26/1/06 KUD 05728 KUD 05821 0006745FE5
DC 72 2 26/1/06 KUD 03078 KUD 03079 0006747FB9
DC 73 2 26/1/06 KUD 04591 KUD 04598 0006748525
DC 74 2 30/1/06 KUD 05844 KUD 05856 0006746177
DC 75 2 31/1/06 KUD 05826 KUD 05876 0006746965
DC 76 2 31/1/06 KUD 03653* ASF 02581*
DC 77 2 1/2/06 KUD 05895 KUD 05862
DC 78 2 2/2/06 KUD 05898 KUD 05840 0006747655
• RELECTURES
ANNEXE 3: LISTE DES NIDS MARQUÉS AVEC ENREGISTREURS DE
TEMPERATURE, DATES DE POSE ET RETRAIT ET MODE DE POSE.
LOGGER
Nº
CODE
NID ZONE
SUB-
ZONE
DATE
POSE
HEURE
POSE
MODE
POSE
DATE
RETRAIT
HEURE
RETRAIT
860441/3/5 DC 22 2 G 9/12/05 02:10 I 24/2/06 07:00
848107/1/5 DC 23 2 F 13/12/05 00:40 I 28/2/06 07:00
848130/1/5 DC 25 2 D 15/12/05 01:45 I 26/2/06 17:00
848129/1/5 DC 28 2 F 17/12/05 01:14 I 2/3/06 07:30
848111/1/5 DC 29 2 F 18/12/05 03:17 I 2/3/06 07:00
848112/1/5 DC 31 2 E 20/12/05 23:30 I 4/3/06 17:15
818427/1/5 DC 31 2 E 29/1/06 12:20 IV 4/3/06 17:15
860442/3/5 DC 32 2 E 21/12/05 00:30 I 5/3/06 17:00
848105/1/5 DC 33 2 E 21/12/05 02:40 I 5/3/06 18:00
848121/1/5 DC 36 2 C 27/12/05 03:00 I 11/3/06 06:30
860448/3/5 DC 43 2 D 2/1/06 01:40 I 16/3/06 08:07
848128/1/5 DC 45 2 H 4/1/06 02:30 I 18/3/06 07:30
860439/3/5 DC 52 2 E 8/1/06 03:00 I 20/3/06 07:00
848127/1/5 DC 52 2 E 12/1/06 18:00 IV 29/1/06 12:00
860450/3/5 DC 59 2 E 12/1/06 21:50 II 24/3/06 12:00
848116/1/5 DC 59 2 E 12/1/06 22:05 III 24/3/06 12:00
848104/1/5 DC 75 2 F 31/1/06 02:45 I 18/3/06 08:30
848124/1/5 DC 75 2 F 1/2/06 16:00 IV 18/3/06 08:30
660339 DC 02 1 B 4/12/05 1:30 I 17/2/06 17:30
660326 DC 06 1 B 23/12/05 2:15 I 8/3/06 17:00
660327 DC 07 1 B 23/12/05 2:47 I 8/3/06 18:00
660310 DC 08 1 B 23/12/05 4:30 I 9/3/06 06:30
660315 DC 13 1 A 2/1/06 03:45 I 17/3/06 16:15
660338 DC 16 1 B 15/1/06 3:06 I 24/3/06 17:36
660333 DC 17 1 A 22/2/06 2:35 I
660302 DC 18 1 A 1/2/06 3:36 I

ANNEXE 4: LISTE DES NIDS TRANSPLANTES EN ENCLOS
N°
FICHE
DATE
PONTE
HEURE
PONTE
HEURE
TRANSPL
PROF
NAT
PROF
ENCLOS BAGUE G BAGUE D PIT LCC TRANSPORT
E01 3/12/05 2:23 4:30 72 72 KUD 03591 KUD 03695
0006746F
30 143
SAC
PLASTIQUE
E02 4/12/05 3:12 4:30 59 60 KUD 03517 KUD 03595
00067473
19 142
SAC
PLASTIQUE
E03 8/12/05 3:00 4:30 74 74 KUD 03519 KUD 03478
0006746B
2 156 GLACIERE
E04 11/12/05 0:05 2:05 60 60 KUD 07001 KUD 07002
PAS
POSE 155
SAC
PLASTIQUE
E05 29/12/05 2:15 3:45 59 60
KUD 03094
*
KUD 03064
*
PAS
LECTEUR 144/143
SAC
PLASTIQUE
E 06 21/1/06 23:45 1:15 70 70 NON NON NON 160/163
SAC
PLASTIQUE
E 07 23/1/06 1:15 2:30 72 73 NON NON NON 149/153
SAC
PLASTIQUE
E 08 24/1/06 2:45 3:30 77 74 NON NON NON 149/151
SAC
PLASTIQUE
E 09 27/1/06 1:30 3:45 75 75 KUD 03104 KUD 03103 NON 165/169
SAC
PLASTIQUE
E 10 27/1/06 2:35 3:45 65 65 NON NON NON 142/144 GLACIERE
E 11 2/2/06 0:45 1:45 70 72 NON NON NON 146 GLACIERE
SAC
E 12 7/2/06 2:00 3:45 69 70 135 PLASTIQUE
E 13 7/2/06 22:00 22:45 72 75 NON NON NON 154 GLACIERE
ANNEXE 5: DEFINITION DES TERMES UTILISES DANS LES ANALYSES DE NIDS
NB :
Qu’est-ce qu’un œuf sans développement apparent ?
Un œuf sans développement apparent est un œuf où la présence d’un embryon ne peut pas
être mise en évidence. Cette catégorie regroupe à la fois des œufs infertiles (généralement
assez faciles à identifier car encore turgescents et à membrane blanche) ainsi que des œufs
victimes d’une mortalité embryonnaire précoce où les fragments de disque embryonnaire sont
très discrets et ne peuvent pas être mis en évidence sans un examen spécialisé.
Qu’est-ce qu’un « œuf à embryon non pigmenté » ?
Il s’agit d’un œuf dont le stade de développement se situe avant le stade d’apparition d’une
pigmentation éparse sur le corps de l’embryon. L’embryon est formé et a l’aspect du
nouveau-né (les membres, la carapace, la tête, munie d’yeux déjà pigmentés, sont formés),
mais il présente une couleur blanc-rose légèrement translucide. Dans des œufs pourris, la
présence de traces de sang est parfois le seul indice d’un développement embryonnaire.
Qu’est-ce qu’un « œuf à embryon pigmenté » ?
Cette catégorie regroupe les œufs dont le stade de développement de l’embryon se situe après
l’apparition d’une pigmentation sombre éparse sur le corps de l’embryon, et s’étend jusqu’au
stade de l’embryon à terme. Les écailles commencent à se former en même temps ou juste
après l’apparition de la première pigmentation et continuent à se former jusqu’à ce que

l’embryon soit à terme. Dans des œufs pourris, la présence de petits os et d’écailles
pigmentées sont parfois les seuls indices restant à disposition.
Qu’est-ce qu’un « œuf à embryon à terme » ?
Cette catégorie regroupe les œufs où la petite tortue est prête à éclore. La pigmentation est
achevée, l’écaillure complètement formée, une partie du jaune a pénétré dans la cavité
abdominale tandis que le reste est recouvert d’une membrane pigmentée.
Que regroupe-t-on sous le terme « œuf prédaté » ?
Il s’agit d’œufs munis d’une ouverture pouvant être attribuée à l’action d’animaux variés. Les
ouvertures peuvent parfois être importantes et laisser une membrane complète à plus de 50%,
présentant donc l’aspect d’un œuf ayant éclos. Cependant, l’aspect intérieur de la membrane
est différent. Lorsque l’œuf a éclos, l’intérieur est net et propre. Au contraire, si l’œuf a été
victime d’une prédation, il reste sur la membrane des résidus du contenu. La membrane des
œufs prédatés présente habituellement des trous et/ou des parties déchirées, des lambeaux
arrachés.
Les prédateurs pouvant attaquer les œufs sont variés. Il peut s’agir à la fois d’invertébrés et
de vertébrés. Les traces laissées par les prédateurs sont souvent difficiles à identifier, et seule
l’expérience acquise au fil des analyses permet d’attribuer une trace à un type de prédateur.
Néanmoins, certaines ouvertures laissées par des prédateurs sur la membrane de l’œuf sont
assez caractéristiques. Les crabes pratiquent dans la membrane des œufs des ouvertures
présentant un aspect ciselé.
Lorsqu’une trace caractéristique est observée mais ne peut pas être attribuée à tel ou tel
prédateur, il convient de réaliser une photo de l’ouverture en dessinant à côté sur la
membrane un trait d’1 cm de longueur permettant de donner l’échelle.
Des prédateurs (invertébrés) sont parfois rencontrés au milieu des œufs ou dans les œufs. Ces
prédateurs doivent alors être prélevés pour être conserver pour identification dans du formol
à 10%. Le prélèvement doit être identifié par la date de prélèvement, le numéro du nid et son
emplacement, la localisation du prélèvement dans le nid.
Que faut-il faire avec les embryons morts ?
Chaque embryon mort doit être minutieusement observé afin de détecter toute anomalie
morphologique. Tout embryon malformé est mis en collection dans du formol à 10% avec la
date de prélèvement, le numéro du nid et son emplacement, la localisation de l’embryon dans
le nid au moment du prélèvement.

ANNEXE 6: INSTRUCTIONS POUR LES ÉCOGARDES
INSTRUCTIONS POUR LE JOUR 50
QU’EST-CE QUE LE JOUR 50 D’UN NID?
C’EST LE 50 eme JOUR APRES LE JOUR DE LA PONTE
QU’EST-CE QU’ONT FAIT LE JOUR 50 ?
LE JOUR 50 ONT VA RENDRE VISITE AU NID POUR SE PREPARER A L’
EMERGENCE DES NOUVEAU-NES :
1. ONT REPERE L’ENDROIT EXACT DU NID AVEC LES MESURES DES
PIQUETS P1, P2, V1, V2.
2. ONT DEGAGE AUTOUR DU NID (ENLEVER DEBRIS ET AUTRES) ET
PREPARE LE « CHEMIN » DES NOUVEAU-NES VERS LA MER (EX. ONT PEU
ESSAYER D’ENLEVER DES BILLES OU AUTRES OBSTACLES).
3. ONT MARQUE LE NID AVEC UN BATON SITUE A DEUX PALMES DU NID
VERS LA VEGETATION (ONT NE PEU PAS PLANTER LE BATON JUSTE AU
DESSUS DU NID CAR ONT RISQUERAI DE PERTURBER L’ EMERGENCE).
4. ONT MARQUE LES PIQUETS AVEC LE RUBAN DE CONSTRUCTION POUR
SIGNALER AUX PATROUILLEURS ET COMPTEUR DE TRACES QUE :
A PARTIR DU JOUR 50 IL FAUT GUETTER L’APPARITION DES NOUVEAU-NES
LE JOUR ET/OU LA NUIT !!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!

QUE FAIRE EN CAS D’ EMERGENCES ?
A) LA NUIT
INSTRUCTIONS POUR ENCLOS
PRENDRE MESURES DE 10 NOUVEAUX NEES ET RELACHER
B) LE JOUR
LES NOUVEAUX NEES DOIVENT RESTER DANS L’ OBSCURITE ET AU FRAIS
POUR LES RELACHER LA NUIT.
1. PLACER UNE COUCHE DE SABLE MOUILLE AU FOND DE LA CUVETTE
2. RAMASSER LES NOUVEAU NEES ET LES PLACER DANS LA CUVETTE
3. RECOUVRIR AVEC SAC A ORDURES
4. PLACER LA CUVETTE A UN ENDROIT FRAIS ET OMBRAGE (EX . SOUS LE
LABO)
RELACHER DE NOUVEAUX NEES
TOUJOURS ENTRE 20 .00 H ET 5 H
ONT DOIT LES POSER SUR LE SABLE SEC POUR LEUR DONNER LE TEMPS DE
MARCHER UNE CERTAINE DISTANCE SUR LE SABLE AVANT D’ ATTEINDRE
L’EAU .
SURVEILLER LES CRABES ET AUTRES PREDATEURS
NE PAS LE RELACHER DIRECTEMENT A L’ EAU (ONT DOIT LEUR DONNER LE
TEMPS DE SE REVEILLER ET RETROUVER LEUR ESPRIT !!)
PRISE DE MESURES DE NOUVEAU NEES
AVEC LE PIEDS A COULISSE :
LONGEUR DROITE DE LA CARAPACE
LARGEUR DROITE DE LA CARAPACE
NOTER AUSSI TOUTE CHOSE ANORMALE (ABERRATIONS ET AUTRES , IL PEU
AVOIR DES NOUVEAUX NEES A DEUX TETES OU ALBINS !)