maenas (intertidal zone) and Segonzacia mesatlantica - Station ...
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4.3. MATÉRIELS ET MÉTHODES COMMUNS 139<br />
186). Briévement, les chromatographies sont réalisées dans un tampon 500 mM NaCl, 10 mM KCl,<br />
30 mM MgSO4, 20 mM CaCl2, 50 mM Tris, pH 7,8 sur une colonne Superose 6 10/300 (Amersham)<br />
à un débit de 0,25 à 0,5 ml/min. 50 µl d’échantillon natif dilué au 1/40 sont injectés pour les analyses<br />
et environ 3 à 5 mg de protéine sont injectés pour les purifications.<br />
La diffusion de lumière multi-angulaire (Multi-Angular Laser Light Scattering, MALLS) a été<br />
utilisée pour déterminer la masse des complexes analysés à l’aide d’un appareil Dawn EOS (Wyatt<br />
Technology Corp.,Santa Barbara) et du logiciel Astra 4.90.08.<br />
4.3.4 Electrophorèse sur gel d’acrylamide<br />
SDS-PAGE<br />
Les électrophorèses en conditions dénaturantes sont réalisées sur gel SDS-PAGE (sodium dodecylsulfate<br />
polyacrylamide gel electrophoresis) (système mini-protean, Biorad). Un gel de compression<br />
(stacking ou upper) à 4 % d’acrylamide et un gel de séparation (resolving ou lower) à 7 % sont utilisés,<br />
contenant 0,1 % de SDS. Les échantillons sont dilués dans un tampon Tris HCl pH 6,8 125 mM,<br />
4 % SDS, 20 % glycerol et 10 % β-mercapto-éthanol puis incubés à 95°C pendant 90 s avant dépôt.<br />
La coloration après migration est réalisée au bleu de Coomassie.<br />
PAGE natif<br />
Les électrophorèses en conditions natives sont réalisées avec un gel de compression à 4 % et<br />
un gel de séparation à 7 %. Les échantillons sont dilués (dilution au moins 1/2) dans un tampon de<br />
dissociation EDTA 50 mM, Tris HCl pH 9,1 50 mM, 30 % glycerol pendant 10 min avant dépôt. Pour<br />
suivre la migration, 10 µl d’une solution de bleu de bromophénol peuvent être ajoutés dans chaque<br />
échantillon. La coloration après migration est réalisée au bleu de Coomassie.<br />
4.3.5 Spectrométrie de masse<br />
Les analyses en spectrométrie de masse sont réalisées par ESI-MS en conditions dénaturantes<br />
et non-covalentes (ESI-MS supramoléculaire). Elles ont été réalisées avec Peran Terrier et Emmanuelle<br />
Leize dans l’équipe LDSM2 à Strasbourg (UMR 7177, CNRS-ULP). Le protocole utilisé est<br />
détaillé dans les parties 3.2.2 (page 114) et 5.4.2 (page 186). L’utilisation de l’ESI-MS en biologie est<br />
présentée dans la partie 2.1 (page 56).