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THS-6596.pdf

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de 500 Jlg d'ADN dans les conditions détenninées ci-dessus. Ajouter la solution d'EDTA<br />

pour stopper la réaction. Extraire l'ADN deux fois de suite avec le même volume de<br />

Phénol/chlorofonne/alcool isoamylique. Centrifuger 1 mn à chaque fois, pour séparer la<br />

phase liquide contenant l'ADN des restes d'enzyme. Ajouter 1/9 volume d'acétate de<br />

sodium et 2,5 volumes d'éthanol absolu pour précipiter l'ADN Incuber à -20°C pendant 1<br />

heure. Centrifuger à 12000 g pendant 30 mn à température ambiante puis éliminer la phase<br />

liquide. Laver le culot avec de l'éthanol à 70 % et sécher sous vide. Resuspendre l'ADN<br />

séché dans 500 III de solution T.E. et conserver à -20°C.<br />

11.2.3 Réaction de ligation entre fragment d'ADN et le vecteur<br />

Réactifs<br />

Vecteur pSUl en solution<br />

Solution d'ADN partiellement hydrolysée<br />

Solution de ligase<br />

Solution de réaction de la ligase<br />

Eau bidistillée stérile<br />

Technique<br />

On utilise un tube Eppendorf de 1,5 ml pour un volume total de réaction égal à 151l\.<br />

Pipetter 1111 pSUl dans le tube puis placer ce tube dans un bain-marie à 45°C pendant 5<br />

mn; cette opération à pour but de linéariser les vecteurs pour faciliter la réaction de<br />

Iigation.<br />

Ajouter ensuite dans le tube:<br />

-10JlI ADN<br />

-1,5Jll solution de Iigase<br />

-1,5Jll de solution de réaction<br />

-1111 eau bidistillée stérile<br />

Le tube est ensuite incubé à 16°C environ pendant 12 heures.<br />

11.2.4 Transformation<br />

La transfonnation consiste à introduire les vecteurs recombinés dans le cytoplasme<br />

d'organismes receveurs. Nous avons utilisé deux méthodes différentes dans cette étude.<br />

11.2.4.1 Transformation de E.coli par électroporation<br />

Solutions<br />

Milieu LB:<br />

Milieu SOC:<br />

Glycérine:<br />

/"<br />

(voir milieux de culture)<br />

(voir milieux de culture)<br />

/"<br />

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