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CHAPITRE 1 - Université de Bourgogne

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Contrairement aux agents intercalants, les son<strong>de</strong>s Taqman offrent la possibilité <strong>de</strong> faire <strong>de</strong> la<br />

PCR multiplexe (détection <strong>de</strong> plusieurs cibles en même temps). La PCR multiplexe permet<br />

d’ajouter un contrôle interne afin <strong>de</strong> vérifier si l’amplification a bien eu lieu (absence<br />

d’inhibiteur), ou encore <strong>de</strong> détecter plusieurs pathogènes. Les son<strong>de</strong>s Taqman pouvant être<br />

couplées à plusieurs types <strong>de</strong> fluorochromes (FAM, TAMRA…) absorbant ou émettant à <strong>de</strong>s<br />

longueurs d’on<strong>de</strong>s différentes, cette technologie présente l’avantage <strong>de</strong> pouvoir rechercher<br />

plusieurs cibles en parallèle contrairement aux agents intercalants.<br />

Les limites et avantages <strong>de</strong>s métho<strong>de</strong>s PCR<br />

Les métho<strong>de</strong>s PCR pour la détection <strong>de</strong>s STEC dans <strong>de</strong>s matrices complexes telles que les<br />

aliments montrent cependant certains inconvénients comme l’incapacité à distinguer l’ADN<br />

<strong>de</strong>s bactéries cibles <strong>de</strong> l’ADN libre, <strong>de</strong> cellules mortes ou provenant <strong>de</strong> phages. Les<br />

marqueurs détectés dans les aliments ne sont pas nécessairement présents sur la même souche<br />

et peuvent être situés sur différentes souches non pathogènes. Ainsi, une étape d’isolement est<br />

nécessaire pour récupérer la souche à l’origine <strong>de</strong>s signaux PCR.<br />

L’optimisation <strong>de</strong> la sensibilité <strong>de</strong>s métho<strong>de</strong>s <strong>de</strong> PCR est un point essentiel sachant que la<br />

quantité <strong>de</strong> STEC dans les aliments est le plus souvent très faible. Un <strong>de</strong>s écueils majeurs<br />

pour la mise au point <strong>de</strong> ces métho<strong>de</strong>s est la présence d’inhibiteurs <strong>de</strong> la Taq polymérase dans<br />

les matrices complexes. Dans une étu<strong>de</strong> réalisée par Brian et al. (1992), la sensibilité <strong>de</strong> la<br />

PCR était 100 fois plus faible lorsque l'ADN provenait <strong>de</strong> fèces artificiellement contaminées<br />

en STEC que lorsqu’il était extrait à partir <strong>de</strong> cultures pures. Pour limiter la présence<br />

d’inhibiteurs, plusieurs métho<strong>de</strong>s peuvent être mises en oeuvre. Tout d’abord, la phase<br />

d’enrichissement présente l’avantage, outre le fait <strong>de</strong> permettre la croissance <strong>de</strong>s bactéries<br />

recherchées et par conséquent d’augmenter le nombre <strong>de</strong> cibles pour la PCR, <strong>de</strong> diluer les<br />

inhibiteurs présents dans l'échantillon. Cependant, certains protocoles sont <strong>de</strong>stinés à détecter<br />

les STEC directement à partir <strong>de</strong>s aliments sans enrichissement. Plusieurs auteurs ont<br />

recommandé <strong>de</strong> séparer les bactéries ou leur ADN <strong>de</strong> la matrice avant d'effectuer la PCR<br />

(Bouvet et Vernozy-Rozand, 2000). L’ajout d'albumine sérique bovine ou d’inhibiteurs <strong>de</strong><br />

protéases ont également été testés (Chen et al., 1998). Après avoir constaté que la teneur en<br />

matières grasses <strong>de</strong> la vian<strong>de</strong> hachée était un élément majeur d'inhibition, Begum et Jackson<br />

(1995) ont réussi à réduire la quantité d'inhibiteurs en diluant les échantillons d’un facteur<br />

1000. Grâce à cette technique, ils ont pu détecter 30 STEC par ml -1 <strong>de</strong> boeuf haché<br />

homogénéisé.<br />

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