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CHAPITRE 1 - Université de Bourgogne

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Notons toutefois qu’une préparation <strong>de</strong>s échantillons qui utilise uniquement une métho<strong>de</strong> <strong>de</strong><br />

lyse peut-être insuffisante voir inefficace. En conséquence, une préparation <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s<br />

nucléiques complète peut être choisie. Il s’agit <strong>de</strong> métho<strong>de</strong>s lour<strong>de</strong>s employant le plus souvent<br />

du phénol, du chloroforme et <strong>de</strong> l’éthanol (Gore et al., 2003). De fait, <strong>de</strong>s métho<strong>de</strong>s<br />

d’extraction <strong>de</strong> l’ADN<br />

grâce à <strong>de</strong>s kits d’extraction ont vu le jour. Leur principe est le suivant : la première étape<br />

consiste à lyser les bactéries (physique et/ou chimique), en parallèle, une inactivation <strong>de</strong>s<br />

RNases a lieu, ensuite l’ADN est absorbé sur une membrane <strong>de</strong> silice contenue dans une<br />

colonne spéciale. Une étape <strong>de</strong> lavage <strong>de</strong> cet ADN, puis une élution est réalisée. Ces kits<br />

présentent l’avantage d’obtenir un ADN purifié et concentré, mais leur mise en œuvre<br />

nécessite beaucoup <strong>de</strong> temps. Pour réduire ce temps, il est possible d’extraire et <strong>de</strong> purifier ces<br />

aci<strong>de</strong>s nucléiques avec <strong>de</strong>s automates d’extraction. Il existe par exemple: l’automate EZ1<br />

commercialisé par la société Qiagen ou encore l’automate EASYMAG commercialisé par la<br />

société BioMérieux (Figure 10).<br />

Toutes les étapes réalisées manuellement ou <strong>de</strong> manière automatique permettent <strong>de</strong> concentrer<br />

et <strong>de</strong> purifier les aci<strong>de</strong>s nucléiques et donc d’obtenir un meilleur seuil <strong>de</strong> détection. En effet,<br />

elles permettent d’éliminer une partie <strong>de</strong>s inhibiteurs matriciels. Actuellement, très peu<br />

d’informations sont disponibles sur les inhibiteurs <strong>de</strong>s réactions <strong>de</strong> biologie moléculaire et la<br />

manière <strong>de</strong> les maîtriser. Ils peuvent être issus <strong>de</strong> l’échantillon lui-même (protéines, gras,<br />

caséine….) ou <strong>de</strong> la métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> préparation <strong>de</strong>s échantillons avant analyse (composant du<br />

bouillon d’enrichissement, produit employé lors <strong>de</strong> la préparation <strong>de</strong> l’ADN…..).<br />

De manière générale, les faux résultats négatifs qui résultent <strong>de</strong> l’action <strong>de</strong>s inhibiteurs,<br />

peuvent apparaître pour diverses raisons :<br />

-L’inactivation <strong>de</strong>s enzymes du mélange réactionnel<br />

-La dégradation ou capture <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s nucléiques (séquences cibles ou amorces)<br />

-La lyse cellulaire insuffisante<br />

L’utilisation <strong>de</strong>s kits d’extraction permet <strong>de</strong> s’affranchir <strong>de</strong> bon nombre d’inhibiteurs <strong>de</strong> PCR.<br />

Lorsque ces kits ne sont pas employés, une dilution <strong>de</strong> l’échantillon à analyser par PCR<br />

permet <strong>de</strong> diluer les inhibiteurs présents, autorisant le plus souvent l’amplification <strong>de</strong> l’ADN<br />

cible. Cette pratique présente cependant l’inconvénient <strong>de</strong> diluer également l’ADN recherché<br />

et <strong>de</strong> diminuer ainsi la sensibilité <strong>de</strong> la PCR.<br />

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