CHAPITRE 1 - Université de Bourgogne
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le caractère sélectif vis-à-vis <strong>de</strong> O157:H7. Ainsi, Okrend et al. (1990), Tesh et al., (1991) ont<br />
montré que l'addition <strong>de</strong> 5 bromo-4 chloro-indoxy-β-D-glucuroni<strong>de</strong> (BCIG) ajouté à raison <strong>de</strong><br />
0,1 g.L-1 à une gélose SMAC favorise l'isolement <strong>de</strong> E. coli O157 inoculé volontairement<br />
dans <strong>de</strong>s échantillons <strong>de</strong> vian<strong>de</strong> <strong>de</strong> boeuf. En effet, le BCIG permet <strong>de</strong> différencier les<br />
colonies β-glucuronidase positives <strong>de</strong> celles qui sont négatives sur ce milieu. E. coli O157:H7<br />
présente <strong>de</strong>s colonies sorbitol négatives et β-glucuronidase négatives ; ces colonies restent<br />
blanches alors que les colonies sorbitol négatives et β-glucuronidases positives virent au vert<br />
ou au bleu. L'ajout du BCIG à la gélose SMAC réduit par conséquent le nombre <strong>de</strong> faux<br />
positifs <strong>de</strong> 36 % par rapport à la simple utilisation du SMAC sans BCIG. En effet, E. coli<br />
O157:H7 a pu être isolé à partir <strong>de</strong> 11 <strong>de</strong>s 12 échantillons <strong>de</strong> vian<strong>de</strong> inoculés utilisant le<br />
SMAC-BCIG contre 8 sur 12 avec la seule utilisation du SMAC sans BCIG. Enfin, Zadik et<br />
al., (1993) ont décrit l’intérêt d’ajouter du tellurite et <strong>de</strong> la céfixime à cette gélose SMAC<br />
(CT-SMAC), étant donné <strong>de</strong>s concentrations minimales inhibitrices (CMI) plus élevées pour<br />
les STEC O157 que pour les autres E. coli et les bactéries sorbitol négatives comme<br />
Aeromonas et Plesiomonas. Néanmoins, <strong>de</strong>s souches <strong>de</strong> E. coli O157:H7 sensibles à certaines<br />
concentrations <strong>de</strong> tellurite ont été décrites par Karch et al. (1996) et l’utilisation <strong>de</strong> la gélose<br />
CT-SMAC dans ce cas précis s’avère inadaptée.<br />
De plus, Thomson et al. (1990) ont développé un test rapi<strong>de</strong> fluorescent pour la détection <strong>de</strong><br />
E. coli O157. Ce test utilise le 4-méthylumbelliféryl β-D-glucuroni<strong>de</strong> (MUG) comme<br />
indicateur hydrolysé en un composé fluorescent par l'enzyme β-glucuronidase (Rippey et al.,<br />
1987).<br />
De nombreux milieux chromogènes ont par ailleurs été mis au point comme par exemple les<br />
milieux CHROMagar E. coli O157:H7 (CHROMagar) et O157:H7 ID (bioMérieux)<br />
spécifiques du sérotype O157:H7. Ainsi les métho<strong>de</strong>s biochimiques sont intéressantes et<br />
fondamentales pour la détection <strong>de</strong> E. coli O157:H7 mais restent inadaptées à la détection <strong>de</strong>s<br />
souches « mutantes » du sérotype O157:H7 et surtout à la détection <strong>de</strong>s STEC non-O157:H7,<br />
étant donné l’absence <strong>de</strong> propriété biochimique commune à tous les STEC.<br />
Les métho<strong>de</strong>s immunologiques<br />
Il existe actuellement sur le marché un grand nombre <strong>de</strong> tests permettant la détection <strong>de</strong> E.<br />
coli O157:H7 dans les aliments et/ou dans les échantillons environnementaux. Ces systèmes<br />
comprennent <strong>de</strong>s tests conventionnels ELISA en microplaques, <strong>de</strong>s systèmes immunologiques<br />
en une étape et <strong>de</strong>s systèmes complètement automatisés.<br />
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