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Extraction, caractérisation chimique et valorisation biologique de ...

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tous les protons anomériques <strong>et</strong> ainsi déterminer la séquence <strong>de</strong>s unités osidiques. Les<br />

spectres HMQC (H<strong>et</strong>eronuclear MultiQuantum Coherence) perm<strong>et</strong>tent <strong>de</strong> corréler chaque<br />

proton avec le carbone auquel il est lié. Dans ce cas, outre l’i<strong>de</strong>ntification <strong>de</strong>s carbones <strong>et</strong> la<br />

détermination <strong>de</strong> leurs déplacements <strong>chimique</strong>s, l’observation d’un déblindage <strong>de</strong>s carbones<br />

perm<strong>et</strong> <strong>de</strong> déterminer la substitution, c’est-à-dire les points <strong>de</strong> branchements <strong>de</strong>s<br />

monosacchari<strong>de</strong>s.<br />

Les spectres HMBC (H<strong>et</strong>eronuclear Multiple-Bond Correlation) donnent les corrélations 1 H-<br />

13 C <strong>et</strong> les constantes 3 J associées. Il est alors possible <strong>de</strong> corréler les noyaux distants <strong>de</strong> 3<br />

liaisons covalentes, notamment les constantes 3 JH1-Cx où x est la position du carbone du<br />

monosacchari<strong>de</strong> voisin inclus dans la liaison glycosidique (Figure 42). Ainsi, on peut préciser<br />

l’enchaînement <strong>de</strong>s monosacchari<strong>de</strong>s <strong>et</strong> donc, la séquence <strong>de</strong> l’oligosacchari<strong>de</strong>.<br />

HO<br />

H<br />

HO<br />

C 3<br />

H<br />

OH<br />

C 5<br />

H<br />

H<br />

O<br />

OH<br />

H<br />

Figure 42 : Schéma représentant les corrélations 3 JH,C carbone/proton observées à partir du proton H-1 dans une<br />

expérience HMBC. La corrélation la plus intéressante est celle qui indique la liaison glycosidique.<br />

Spectrométrie <strong>de</strong> masse<br />

O<br />

59<br />

H<br />

C4 La spectrométrie <strong>de</strong> masse est une technique d’analyse complémentaire à la RMN, aux<br />

applications variées <strong>et</strong> qui n’a vu son champ d’utilisation s’étendre aux macromolécules que<br />

<strong>de</strong>puis peu <strong>de</strong> temps. C<strong>et</strong>te technique était employée à l’origine pour caractériser les éthers<br />

méthyliques résultant <strong>de</strong>s expériences <strong>de</strong> perméthylation, la position <strong>de</strong>s groupements<br />

méthyle <strong>de</strong> chaque monosacchari<strong>de</strong> issu d’une hydrolyse aci<strong>de</strong> étant caractéristique <strong>de</strong>s<br />

liaisons entre monomères. Mais ce résultat ne perm<strong>et</strong> pas d’accé<strong>de</strong>r à la séquence<br />

oligosaccharidique.<br />

Même si la métho<strong>de</strong> est <strong>de</strong>structive pour l’échantillon, la spectrométrie <strong>de</strong> masse<br />

présente l’avantage <strong>de</strong> ne nécessiter que <strong>de</strong> très faibles quantités <strong>de</strong> matériel (10 à 1000 fois<br />

moins que pour la RMN). La clé <strong>de</strong> l’analyse <strong>de</strong>s oligosacchari<strong>de</strong>s par spectrométrie <strong>de</strong> masse<br />

rési<strong>de</strong> dans le choix <strong>de</strong> la technique d’ionisation.<br />

HO<br />

HO<br />

H<br />

H<br />

H<br />

O<br />

OH<br />

H<br />

OH

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