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Extraction, caractérisation chimique et valorisation biologique de ...

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0,02 M en utilisant une électro<strong>de</strong> <strong>de</strong> verre <strong>et</strong> un pHmètre. Un blanc est réalisé à partir du<br />

polysacchari<strong>de</strong> non oxydé. Le nombre <strong>de</strong> moles <strong>de</strong> fonctions carboxyliques crées est calculé<br />

selon la formule suivante :<br />

n COOH(échantillon) = ( Véq (blanc) – Véq (échantillon))* [HCl]<br />

III.2.5. Dosage <strong>de</strong>s fonctions aldéhy<strong>de</strong>s (réaction <strong>de</strong> Cannizarro)<br />

Un prélèvement d’une masse <strong>de</strong> 50 mg d’échantillon est mis en solution dans 10 mL<br />

<strong>de</strong> sou<strong>de</strong> 0,1 M. Le mélange est chauffé à 70°C pendant 10 minutes sous agitation<br />

magnétique. L’excès <strong>de</strong> sou<strong>de</strong> est alors titré en r<strong>et</strong>our par HCl 0,02 M en utilisant une<br />

électro<strong>de</strong> <strong>de</strong> verre <strong>et</strong> un pHmètre. Un blanc est réalisé à partir du polysacchari<strong>de</strong> non oxydé.<br />

Le nombre <strong>de</strong> moles <strong>de</strong> fonctions carboxyliques crées est calculé selon la formule suivante :<br />

n CHO(échantillon) = 2*(( Véq (blanc) – Véq (échantillon))* [HCl] - n COOH(échantillon))<br />

III.2.6. Etu<strong>de</strong> <strong>de</strong> la composition monosaccharidique par CPG<br />

Le principe <strong>de</strong> c<strong>et</strong>te métho<strong>de</strong> repose sur l’obtention <strong>de</strong> méthylglycosi<strong>de</strong>s<br />

triméthylsilylés par méthanolyse suivie d’une pertriméthylsilylation <strong>de</strong>s monosacchari<strong>de</strong>s<br />

libérés.<br />

III.2.6.a. Préparation <strong>de</strong>s dérivés m<strong>et</strong>hylglycosi<strong>de</strong>s triméthylsilylés<br />

Les monosacchari<strong>de</strong>s neutres <strong>et</strong> les aci<strong>de</strong>s uroniques sont i<strong>de</strong>ntifiés <strong>et</strong> analysés sous<br />

forme <strong>de</strong> méthylglycosi<strong>de</strong>s O-triméthylsilylés selon la métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> Kamerling <strong>et</strong> al., 128<br />

modifiée par Montreuil <strong>et</strong> al., 136 . Deux cents à cinq cents microgrammes <strong>de</strong> polysacchari<strong>de</strong>s,<br />

auxquels on ajoute un témoin interne, le méso-inositol (MI), à raison <strong>de</strong> 50% <strong>de</strong> la quantité <strong>de</strong><br />

polysacchari<strong>de</strong>, sont traités. C<strong>et</strong>te analyse, qui a été adaptée à l’analyse <strong>de</strong> poudres d’origine<br />

végétale par Marga <strong>et</strong> al., 237 , a été également utilisée pour l’étu<strong>de</strong> <strong>de</strong> la composition<br />

monosaccharidique <strong>de</strong>s sciures brutes <strong>et</strong> <strong>de</strong>s résidus d’extraction.<br />

Méthanolyse<br />

Les monosacchari<strong>de</strong>s sont libérés sous forme <strong>de</strong> méthylglycosi<strong>de</strong>s par ajout <strong>de</strong> 1 mL<br />

d’une solution <strong>de</strong> chlorure d’acétyle 1 M dans du méthanol anhydre (Instant m<strong>et</strong>hanolic HCl ;<br />

Alltech Réf. 18053) sur 200 µg d’un échantillon polysaccharidique anhydre contenant 20 µg<br />

d’un étalon interne, le méso-inositol (MI). La méthanolyse est stoppée après 24 h <strong>de</strong> réaction<br />

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