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caractérisation des enzymes bovines et étude préliminaire du rôle ...

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Exposé bibliographique : La N-glycosylation<br />

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Les oligosacchari<strong>des</strong> riches en mannose r<strong>et</strong>rouvés libres dans le cytosol <strong>des</strong> cellules<br />

attestent <strong>du</strong> devenir <strong>des</strong> glycoprotéines nouvellement synthétisées mais mal repliées. En eff<strong>et</strong>,<br />

si une protéine est mal conformée, son ou ses glycanes vont être clivés par une N-glycanase<br />

qui coupe entre l'asparagine de la chaîne polypeptidique <strong>et</strong> le premier rési<strong>du</strong> GlcNAc. Ils sont<br />

ensuite clivés par d’autres <strong>enzymes</strong> dans le cytoplasme de la cellule jusqu’à l’hexasaccharide,<br />

Man5GlcNAc1. Celui-ci sera ultérieurement dégradé en monosacchari<strong>des</strong> dans les<br />

lysosomes par <strong>des</strong> carbohydrases (Cacan <strong>et</strong> Verbert, 1999). La protéine sera elle-même<br />

dégradée dans les lysosomes ou par le protéasome.<br />

Les glycoprotéines correctement repliées peuvent alors continuer leur chemin vers<br />

l'appareil de Golgi. Celles possédant <strong>des</strong> signaux de rétention <strong>du</strong> RE <strong>et</strong> notamment une<br />

séquence peptidique C-terminale de type KDEL (ou KKXX, RR) (Monnat <strong>et</strong> al., 2000) ou<br />

une séquence interne RXR (Scott <strong>et</strong> al., 2003) resteront dans le réticulum ou y reviendront<br />

après un bref passage dans le Cis-Golgi par un mécanisme de transport rétrograde (Pelham,<br />

1996). Nous reviendrons sur le mécanisme de rétention réticulaire dans le second chapitre de<br />

c<strong>et</strong> exposé.<br />

> Le maintien de la structure <strong>des</strong> N-glycoprotéines <strong>et</strong> leur oligomérisation<br />

Les glycanes participent au maintien de la structure de la protéine qui les porte. Ils<br />

perm<strong>et</strong>tent l’adoption d’une conformation biologiquement active, ceci par <strong>des</strong> liaisons<br />

secondaires de type glycane-glycane <strong>et</strong>/ou glycane-protéine, m<strong>et</strong>tant en jeu <strong>des</strong> liaisons<br />

hydrogènes, ioniques ou <strong>des</strong> interactions hydrophobes. La protéine s’en trouve ainsi stabilisée<br />

<strong>et</strong> son activité assurée. Par exemple, l’absence de N-glycosylation de l’α1,3-<br />

fucosyltransférase IV de rat abolit son activité enzymatique (Baboval <strong>et</strong> al., 2000). En<br />

in<strong>du</strong>isant une conformation spatiale spécifique <strong>et</strong> de par leur caractère hydrophile, les Nglycanes<br />

interviennent également dans la solubilité <strong>et</strong> l'oligomérisation de nombreuses<br />

protéines, particulièrement dans les milieux aqueux (Lis <strong>et</strong> Sharon, 1993).<br />

> La protection <strong>des</strong> N-glycoprotéines vis-à-vis de la protéolyse<br />

Les sites de N-glycosylation sont souvent situés dans <strong>des</strong> régions en feuill<strong>et</strong>s β<br />

exposées aux protéases. Les N-glycanes, de par l’encombrement stérique qu’ils occasionnent,<br />

protègent ces régions de la protéolyse (Kundra <strong>et</strong> Kornfeld, 1999), notamment <strong>du</strong>rant le<br />

transport <strong>des</strong> glycoprotéines depuis le RER jusqu’à leur <strong>des</strong>tination finale (Wormald <strong>et</strong> Dwek,<br />

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