caractérisation des enzymes bovines et étude préliminaire du rôle ...
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Résultats-Discussion : Etude du rôle de Pofut1 dans la différenciation de cellules C2C12 __________________________________________________________________________________________ Figure 66 : Vecteur témoin pmaxGFP fourni avec le kit de transfection Amaxa. Ce vecteur est relativement petit : 3486 pb. L’expression de l’eGFP est sous le contrôle du promoteur fort CMV. Figure 67 : Cytogramme biparamétrique (rapport taille vs fluorescence) obtenus lors d’une expérience de tri cellulaire après transfection des cellules C2C12 avec le plasmide pmaxGFP. 58,24% des cellules expriment l’eGFP. R1 : pourcentage de cellules vivantes, R2 : pourcentage de cellules prises en compte, R3 : pourcentage de cellules exprimant l’eGFP. Dans le vecteur pmax, l’eGFP est sous le contrôle du promoteur fort du gène précoce du cytomégalovirus humain (pCMV) permettant l’expression de protéines recombinantes dans toutes les cellules animales, et non du promoteur hFerH/m-EF1 comme dans le pVITRO2lGFP. Ce dernier est pourtant un promoteur fort qui permet également l’expression de gènes dans toutes les cellules animales (communication InvivoGen, Toulouse, France). Il est cependant possible qu’il ne soit pas un promoteur optimal pour les cellules C2C12. 202
Résultats-Discussion : Etude du rôle de Pofut1 dans la différenciation de cellules C2C12 __________________________________________________________________________________________ Les expériences de transfection avec le vecteur de shRNA (pSuper-RNAi de 5,4 Kb) ne nous ont pas permis d’obtenir un pourcentage suffisant de cellules transfectées, puisqu’il est seulement d’environ 7%. Ce vecteur n’ayant pas une taille trop importante, il est possible que le faible taux de cellules exprimant l’eGFP résulte de la présence du promoteur PGK (Phosphoglycérate kinase). Tout comme le CMV, il s’agit d’un promoteur ubiquitaire fort; il est cependant envisageable que celui-ci ne soit pas un promoteur optimal pour les C2C12. Pour vérifier cette hypothèse, des expériences de remplacement de ce promoteur par celui du CMV sont actuellement en cours au laboratoire. 3.2.2.2 Utilisation d’autres vecteurs Etant donné les difficultés rencontrées avec l’utilisation de vecteurs permettant l’expression de l’eGFP ou la lGFP, et donc le tri des cellules, nous avons décidé de continuer notre étude avec les vecteurs pcDNA/TOPO3.1 pour la surexpression et pSilencer (Fig.60.) pour la sous-expression. Dans le vecteur pcDNA/TOPO3.1, l’expression de la protéine Pofut1 est sous le contrôle du promoteur CMV. L’expression du shRNA dans le pSilencer est sous le contrôle du promoteur U6. Ces deux promoteurs forts permettent l’expression transitoire dans de très nombreux types cellulaires. Ces vecteurs ne contenant pas de CDS codant une protéine fluorescente, il nous est impossible de déterminer le taux de transfection cellulaire. Cependant, nous avons vérifié, dans les deux cas, le niveau d’expression des transcrits de Pofut1 murin par RT-PCR semiquantitative en temps réel (Fig.68.), grâce à l’utilisation d’une sonde TaqMan (Applied Biosystems, Norwalk, USA) spécifique du transcrit. 203
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Résultats-Discussion : Etude <strong>du</strong> <strong>rôle</strong> de Pofut1 dans la différenciation de cellules C2C12<br />
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Les expériences de transfection avec le vecteur de shRNA (pSuper-RNAi de 5,4 Kb)<br />
ne nous ont pas permis d’obtenir un pourcentage suffisant de cellules transfectées, puisqu’il<br />
est seulement d’environ 7%. Ce vecteur n’ayant pas une taille trop importante, il est possible<br />
que le faible taux de cellules exprimant l’eGFP résulte de la présence <strong>du</strong> promoteur PGK<br />
(Phosphoglycérate kinase). Tout comme le CMV, il s’agit d’un promoteur ubiquitaire fort; il<br />
est cependant envisageable que celui-ci ne soit pas un promoteur optimal pour les C2C12.<br />
Pour vérifier c<strong>et</strong>te hypothèse, <strong>des</strong> expériences de remplacement de ce promoteur par celui <strong>du</strong><br />
CMV sont actuellement en cours au laboratoire.<br />
3.2.2.2 Utilisation d’autres vecteurs<br />
Etant donné les difficultés rencontrées avec l’utilisation de vecteurs perm<strong>et</strong>tant<br />
l’expression de l’eGFP ou la lGFP, <strong>et</strong> donc le tri <strong>des</strong> cellules, nous avons décidé de continuer<br />
notre <strong>étude</strong> avec les vecteurs pcDNA/TOPO3.1 pour la surexpression <strong>et</strong> pSilencer (Fig.60.)<br />
pour la sous-expression.<br />
Dans le vecteur pcDNA/TOPO3.1, l’expression de la protéine Pofut1 est sous le<br />
cont<strong>rôle</strong> <strong>du</strong> promoteur CMV. L’expression <strong>du</strong> shRNA dans le pSilencer est sous le cont<strong>rôle</strong><br />
<strong>du</strong> promoteur U6. Ces deux promoteurs forts perm<strong>et</strong>tent l’expression transitoire dans de très<br />
nombreux types cellulaires.<br />
Ces vecteurs ne contenant pas de CDS codant une protéine fluorescente, il nous est<br />
impossible de déterminer le taux de transfection cellulaire. Cependant, nous avons vérifié,<br />
dans les deux cas, le niveau d’expression <strong>des</strong> transcrits de Pofut1 murin par RT-PCR semiquantitative<br />
en temps réel (Fig.68.), grâce à l’utilisation d’une sonde TaqMan (Applied<br />
Biosystems, Norwalk, USA) spécifique <strong>du</strong> transcrit.<br />
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