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caractérisation des enzymes bovines et étude préliminaire du rôle ...

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Résultats-Discussion : Etude <strong>du</strong> <strong>rôle</strong> de Pofut1 dans la différenciation de cellules C2C12<br />

__________________________________________________________________________________________<br />

3.2 Etude <strong>du</strong> <strong>rôle</strong> de Pofut1 dans la différenciation<br />

de cellules C2C12<br />

Dans le but d’appréhender le <strong>rôle</strong> joué par l’enzyme Pofut1 au cours de la<br />

différenciation de cellules myoblastiques murines de la lignée C2C12, il nous a fallu, dans un<br />

premier temps, construire les outils moléculaires nécessaires aux transfections. En<br />

l’occurrence, un vecteur de surexpression contentant le CDS de Pofut1 murin. Le vecteur de<br />

shRNA précédemment construit (Fig.61.) contenant une séquence homologue aux séquences<br />

bovine <strong>et</strong> murine pourra nous être utile dans c<strong>et</strong>te <strong>étude</strong>.<br />

3.2.1 Construction <strong>du</strong> vecteur de surexpression<br />

Grâce à la sélection d’amorces spécifiques de part <strong>et</strong> d’autre <strong>du</strong> CDS de Pofut1 murin,<br />

nous avons pu isoler, par PCR, l’ADNc codant la forme active de l’enzyme en utilisant<br />

comme matrice <strong>des</strong> ADNc de cœur obtenus après extraction <strong>et</strong> rétro-transcription d’ARN<br />

totaux. Le gène Pofut1 étant suffisamment exprimé chez la souris, une PCR primaire suffit.<br />

Afin de cloner l’ADN amplifié dans le vecteur pVITRO2-lGFP, nous avons utilisé une<br />

amorce en 5’ possédant le site de restriction de l’enzyme BglII (souligné) <strong>et</strong> la séquence<br />

Kozak de Pofut1 murin (Pofut1-Mus-BglII : 5’-AGATCTGTCGACATGGGCGCCGCC-3’), <strong>et</strong><br />

une amorce en 3’ complémentaire à la région terminale <strong>du</strong> CDS, comportant le codon stop<br />

(Pofut1-Mus-CDS3’ : 5’-TCAAAATTCATCCCGAAGCTGGGAGG-3’). L’amplification obtenue<br />

a tout d’abord été clonée dans le pcDNA/TOPO3.1. La double digestion de ce vecteur par<br />

BglII <strong>et</strong> XhoI autorise ensuite la ligature de l’insert dans le vecteur pVITRO2-lGFP linéarisé<br />

par ces mêmes <strong>enzymes</strong>.<br />

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