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Comportement des nanoparticules de silice en milieu biologique ...

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tel-00836093, version 1 - 20 Jun 2013<br />

Chapitre 6 : Protocoles expérim<strong>en</strong>taux<br />

(v) Mesure <strong>de</strong> l’int<strong>en</strong>sité <strong>de</strong> fluoresc<strong>en</strong>ce <strong><strong>de</strong>s</strong> particules internalisées<br />

Afin <strong>de</strong> comparer l’internalisation <strong><strong>de</strong>s</strong> différ<strong>en</strong>tes particules observées par fluoresc<strong>en</strong>ce,<br />

l’int<strong>en</strong>sité <strong>de</strong> fluoresc<strong>en</strong>ce <strong>de</strong> la FITC au niveau <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules est mesurée sur les images <strong>de</strong><br />

microscopie à fluoresc<strong>en</strong>ce. Pour ce faire, la zone correspondant à une cellule est définie<br />

grâce au marqueur membranaire WGA-AlexaFluor555, et l’int<strong>en</strong>sité du signal <strong>de</strong> la FITC est<br />

sommée sur cette zone à l’ai<strong>de</strong> du logiciel CellProfiler. Pour éviter <strong>de</strong> comptabiliser <strong><strong>de</strong>s</strong><br />

particules à la surface <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules, <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules ne prés<strong>en</strong>tant pas d’agrégats <strong>de</strong> particules <strong>en</strong><br />

surface ont été sélectionnées.<br />

6.2.3.3 Etu<strong>de</strong> <strong>de</strong> la toxicité<br />

Chaque expéri<strong>en</strong>ce est réalisée au moins <strong>en</strong> triplet, les différ<strong>en</strong>ces sont évaluées avec une<br />

analyse statistique (test Stu<strong>de</strong>nt si les résultats suiv<strong>en</strong>t une distribution normale (déterminé<br />

par un test <strong>de</strong> normalité Shapiro-Wilk) et Wilcoxon-Mann-Whitnet pour les autres)<br />

(i) Comptage cellulaire par la technique du bleu trypan<br />

Après exposition aux <strong>nanoparticules</strong>, les cellules sont décollées comme décrit dans le<br />

protocole <strong>de</strong> culture cellulaire (§ 6.2.3.1). Elles sont <strong>en</strong>suite comptées <strong>en</strong> utilisant le bleu<br />

trypan. Cette technique permet <strong>de</strong> colorer <strong>en</strong> bleu les cellules mortes, tout <strong>en</strong> laissant les<br />

cellules vivantes non colorées. En effet, ce colorant, une fois <strong>en</strong>tré dans les cellules, provoque<br />

un mécanisme d’exclusion le rejetant dans le <strong>milieu</strong> extérieur. Ce mécanisme nécessite <strong>de</strong><br />

l’énergie et ne peut donc avoir lieu que dans les cellules vivantes ayant une source d’ATP.<br />

Ces <strong>de</strong>rnières apparaiss<strong>en</strong>t donc non colorées au microscope tandis que les cellules mortes<br />

pr<strong>en</strong>n<strong>en</strong>t une coloration bleue. Pour cela, 100 µL d’une solution <strong>de</strong> bleu Trypan (0,4% dans<br />

du PBS 1X) sont ajoutés à 0,5 mL d’une susp<strong>en</strong>sion cellulaire. Après homogénéisation, les<br />

cellules vivantes non colorées sont comptées avec un hémacytomètre.<br />

(ii) Cytotoxicité : test à la résazurine<br />

Les cellules vivantes réduis<strong>en</strong>t la résazurine bleue <strong>en</strong> résofurine rose (schéma 6.3). L’int<strong>en</strong>sité<br />

<strong>de</strong> coloration obt<strong>en</strong>ue est proportionnelle au nombre <strong>de</strong> cellules vivantes.<br />

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