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Comportement des nanoparticules de silice en milieu biologique ...

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tel-00836093, version 1 - 20 Jun 2013<br />

Chapitre 6 : Protocoles expérim<strong>en</strong>taux<br />

contraste <strong>de</strong> phase (Leica). Les cellules sont placées dans un incubateur maint<strong>en</strong>u à 37°C, <strong>en</strong><br />

atmosphère humi<strong>de</strong> cont<strong>en</strong>ant 5% <strong>de</strong> CO2.<br />

Lignée cellulaire et mise <strong>en</strong> culture :<br />

Les cellules utilisées sont <strong><strong>de</strong>s</strong> fibroblastes <strong>de</strong>rmiques humains normaux commerciaux<br />

prov<strong>en</strong>ant <strong>de</strong> chez PromoCell et sont conservées dans l’azote liqui<strong>de</strong>. Les cellules sont<br />

multipliées <strong>en</strong> les plaçant dans <strong><strong>de</strong>s</strong> flacons <strong>de</strong> culture <strong>de</strong> 75 cm 2 dans 10 mL <strong>de</strong> <strong>milieu</strong> DMEM<br />

complém<strong>en</strong>té par 10% <strong>de</strong> SVF, une solution <strong>de</strong> pénicilline/ streptomycine (<strong>en</strong> conc<strong>en</strong>tration<br />

finale <strong>de</strong> 100 U/mL et 100 µg/mL respectivem<strong>en</strong>t) et 1% d’une solution d’antifungique<br />

(amphotéricine B). Lorsque les cellules arriv<strong>en</strong>t à 70-80% <strong>de</strong> conflu<strong>en</strong>ce, elles sont détachées<br />

<strong><strong>de</strong>s</strong> flacons <strong>de</strong> culture pour être <strong>de</strong> nouveau <strong>en</strong>sem<strong>en</strong>cées à une <strong>de</strong>nsité d’<strong>en</strong>viron 10 6 cellules<br />

par flacon <strong>de</strong> 75 cm 2 . Pour cela, le <strong>milieu</strong> <strong>de</strong> culture est retiré et les cellules sont recouvertes<br />

par 7 mL d’une solution PUCK’S-EDTA p<strong>en</strong>dant 5 minutes afin <strong>de</strong> favoriser leur<br />

décollem<strong>en</strong>t. En effet, l’EDTA chélate les ions dival<strong>en</strong>ts (Ca 2+ et Mg 2+ ) qui intervi<strong>en</strong>n<strong>en</strong>t<br />

dans l’adhésion <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules. Après avoir retiré cette solution, les cellules sont placées dans<br />

l’incubateur avec 1 mL d’une solution <strong>de</strong> Trypsine à 0,1% p<strong>en</strong>dant 5 minutes. La Trypsine va<br />

permettre <strong>de</strong> rompre les interactions <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules avec le support. Après décollem<strong>en</strong>t, les<br />

cellules sont remises <strong>en</strong> susp<strong>en</strong>sion dans 5 mL <strong>de</strong> <strong>milieu</strong> complet. Elles sont c<strong>en</strong>trifugées (5<br />

minutes à 1000 rpm) puis reprises dans 2 mL <strong>de</strong> <strong>milieu</strong> complet pour être comptées à l’ai<strong>de</strong><br />

d’un hémacytomètre.<br />

Solution PUCK’S-EDTA :<br />

NaCl 8,0 g/L , KCl 0,4 g/L , Glucose 1,0 g/L, NaHCO3 0,35 g/L, EDTA 0,2 g/L, H2O Milli-Q<br />

La solution ainsi préparée est stérilisée et conservée à 4°C.<br />

6.2.3.2 Internalisation <strong><strong>de</strong>s</strong> <strong>nanoparticules</strong><br />

Après exposition aux <strong>nanoparticules</strong> (0,6 mg/mL), les cellules sont observées <strong>en</strong> microscopie<br />

à fluoresc<strong>en</strong>ce ainsi qu’<strong>en</strong> MET pour déterminer si les <strong>nanoparticules</strong> ont été internalisées, et<br />

quelle est l’influ<strong>en</strong>ce sur l’internalisation et sa cinétique <strong><strong>de</strong>s</strong> caractéristiques <strong><strong>de</strong>s</strong> particules<br />

(taille, charge). De plus, pour déterminer la voie d’internalisation, <strong><strong>de</strong>s</strong> expéri<strong>en</strong>ces sont<br />

m<strong>en</strong>ées <strong>en</strong> prés<strong>en</strong>ce d’inhibiteurs spécifiques.<br />

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