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Comportement des nanoparticules de silice en milieu biologique ...

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tel-00836093, version 1 - 20 Jun 2013<br />

formé.<br />

Chapitre 6 : Protocoles expérim<strong>en</strong>taux<br />

Dans le cas <strong><strong>de</strong>s</strong> particules incorporant <strong>de</strong> la fluorescéine, il se pose le problème <strong>de</strong> la<br />

superposition <strong><strong>de</strong>s</strong> spectres d’absorption <strong>de</strong> la fluorescéine et <strong>de</strong> l’aci<strong>de</strong> silico-molybdique. Il<br />

est tout <strong>de</strong> même possible d’obt<strong>en</strong>ir la conc<strong>en</strong>tration <strong>en</strong> <strong>silice</strong> dissoute <strong>en</strong> effectuant <strong>de</strong>ux<br />

mesures d’absorbance à 400 nm (aci<strong>de</strong> silico-molybdique) et à 440 nm (FITC), ainsi que <strong>de</strong>ux<br />

courbes d’étalonnage. Ces <strong>de</strong>ux courbes permett<strong>en</strong>t d’obt<strong>en</strong>ir les coeffici<strong>en</strong>ts d’absorption<br />

molaire <strong>de</strong> la fluorescéine et <strong>de</strong> l’aci<strong>de</strong> silico-molybdique aux <strong>de</strong>ux longueurs d’on<strong><strong>de</strong>s</strong>.<br />

A(400 nm) = CFITC*εFITC(400 nm) + CSilice*εSilice(400 nm)<br />

A(440 nm) = CFITC*εFITC(440 nm) + CSilice*εSilice(440 nm)<br />

On obti<strong>en</strong>t donc CSilice =<br />

€<br />

A(440nm) *ε FITC (400nm) − A(400nm) *ε FITC (440nm)<br />

ε Silice(440nm) *ε FITC (400nm) −ε Silice(400nm) *ε FITC (440nm)<br />

D’après les gammes étalon, on a εFITC(400 nm) = 3,1.10 4 mol -1 .L.cm -1 , εFITC(440 nm) =<br />

8,7.10 4 mol -1 .L.cm -1 , εSilice(400 nm) = 181 mol -1 .L.cm -1 , εSilice(440 nm) = 41 mol -1 .L.cm -1 .<br />

6.2.2 DISSOLUTION EN MILIEU DE CULTURE<br />

La prés<strong>en</strong>ce <strong>de</strong> phosphates dans le <strong>milieu</strong> <strong>de</strong> culture perturbe le dosage <strong>de</strong> la <strong>silice</strong> dissoute <strong>en</strong><br />

réagissant avec le sel <strong>de</strong> molybdène (Thayer 1930). Le suivi <strong>de</strong> la dissolution dans le <strong>milieu</strong><br />

<strong>de</strong> culture s’est donc fait uniquem<strong>en</strong>t par suivi <strong>de</strong> la fluorescéine libérée, comme décrit<br />

précé<strong>de</strong>mm<strong>en</strong>t.<br />

En parallèle, les particules sont analysées <strong>en</strong> MET au cours du temps afin <strong>de</strong> voir s’il y a<br />

évolution <strong>de</strong> leur taille et/ou <strong>de</strong> leur structure. Les particules après 24 h, 7 et 14 jours dans le<br />

<strong>milieu</strong> <strong>de</strong> culture à 37°C sont déposées sur une grille <strong>de</strong> cuivre recouverte d’un film <strong>de</strong><br />

carbone et observées sur un microscope opérant à 120 kV. Un minimum d’une c<strong>en</strong>taine <strong>de</strong><br />

particules est mesuré pour obt<strong>en</strong>ir leur taille.<br />

6.2.3 INTERACTIONS AVEC LES CELLULES<br />

6.2.3.1 Culture cellulaire<br />

Toutes les manipulations <strong>de</strong> cellules sont effectuées <strong>en</strong> conditions stériles, sous une hotte à<br />

flux laminaire. L’état <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules est vérifié régulièrem<strong>en</strong>t sous un microscope inversé à<br />

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