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International Journal of Mediterranean Ecology - Ecologia ...

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Comparaison morphologique de deux souches de Monacrosporium salinum, champignon prédateur de nématode,<br />

isolées d’un agro-écosystème tunisien et omanais<br />

variabilité morphométrique. La souche<br />

MSO03 pourrait donc bien appartenir à l’espèce<br />

M. salinum rapportée pour la première<br />

fois du sultanat d’Oman.<br />

Les deux souches de Monacrosporium salinum<br />

montrent des différences dans la morphologie<br />

de leurs chlamydospores. En effet,<br />

les chlamydospores de la souche MST84 sont<br />

formées de cellules aplaties, en chaînes et à<br />

membranes fines alors que celles de la souche<br />

MSO03 sont arrondies et à membranes<br />

épaisses. Ce mode de formation des chlamydospores<br />

permet-il de classer la souche<br />

MSO03 en tant que nouvelle espèce du genre<br />

Monacrosporium ou permettrait-il à cette<br />

souche de mieux résister aux conditions<br />

extrêmes de son milieu d’origine?<br />

Plusieurs chercheurs ont montré que la présence<br />

des chlamydospores dépend des<br />

souches isolées et ce n’est donc pas un bon<br />

critère de détermination des espèces de NTF<br />

(Nabil 1993 ; Swe et al. 2008). La formation<br />

des chlamydospores dépend de l’âge et des<br />

conditions de culture de NTF (Nabil 1993) et<br />

est liée à un stress abiotique ou biotique<br />

(Labiadh & Kallel 2008). Swe et al. (2008)<br />

ont montré qu’en fonction des souches et de<br />

l’habitat du NTF, une même espèce peut présenter<br />

ou non des chlamydospores. Si les<br />

chlamydospores n’interviennent pas dans la<br />

détermination des hyphomycètes (Fungi<br />

imperfecti), néanmoins l’importance de ces<br />

chlamydospores a été montrée pour la détermination<br />

des espèces d’autres champignons<br />

anamorphes comme les Verticillium (Isaac<br />

1949) et les Fusarium (Nelson et al. 1983).<br />

En ce qui concerne l’intervention des chlamydospores<br />

dans l’adaptation aux conditions<br />

de l’environnement, Kallel et al. (2008) ont<br />

montré en comparant ces deux souches<br />

MST84 et MSO03 que cette dernière est<br />

capable de croître à 35 ºC. De plus, cette<br />

souche est capable de croître à un pH supérieur<br />

à 5 et à un pH alcalin alors que la souche<br />

MST84 présente une croissance optimale à un<br />

pH inférieur à 7. Le pH du sol n’affecte pas<br />

l’activité de piégeage des deux souches.<br />

Cependant, la souche MST84 est plus active<br />

que la souche MSO03 à de forts taux de salinité<br />

du sol (> 5 g/l NaCl). Par conséquent, la<br />

souche MSO03 peut résister aux conditions<br />

adverses telles que la sécheresse et la température<br />

élevée qui se produisent dans les agroécosystèmes<br />

omanais. Dans le même sens,<br />

Kallel & Labiadh (2010) ont montré, en comparant<br />

des souches de même espèce de NFT<br />

ecologia mediterranea – Vol. 38 (1) – 2012<br />

provenant de différentes régions agrumicoles<br />

de Tunisie, que les souches présentent des<br />

caractéristiques biologiques différentes avec<br />

un grand pouvoir adaptatif à leur milieu respectif.<br />

En définitif, l’étude morphométrique a montré<br />

que les deux souches MST84 et MSO03<br />

sont des écotypes de l’espèce Monacrosporium<br />

salinum.<br />

Cette classification se basant sur les critères<br />

morphométriques nécessite une confirmation<br />

par l’étude du génome de la souche MSO03 et<br />

l’établissement des différentes relations phylogénétiques<br />

avec les autres espèces de Monacrosporium.<br />

En effet, il est difficile d’établir l’identification<br />

des NTF avec plusieurs espèces formant<br />

de nombreux genres superficiels de Deutéromycètes,<br />

Arthrobotrys, Geniculifera, Duddingtonia,<br />

Dactyllela et Monacrosporium sur<br />

la base de la formation et des dimensions de<br />

conidies. Ce nombre limité de ces caractères<br />

% d'efficacité de<br />

capture<br />

100<br />

90<br />

80<br />

70<br />

60<br />

50<br />

40<br />

30<br />

20<br />

10<br />

0<br />

a<br />

A<br />

% d'efficacité de<br />

capture<br />

100<br />

90<br />

80<br />

70<br />

60<br />

50<br />

40<br />

30<br />

20<br />

10<br />

0<br />

a<br />

b a<br />

a<br />

MST84 MSO03<br />

a<br />

a<br />

12 24 36 48 56 72<br />

Heures<br />

B<br />

b<br />

a<br />

a<br />

12 24 36 48 56 72<br />

Heures<br />

Figure 6 – Évolution de l’efficacité de capture des nématodes sur milieu CMA<br />

de Monacrosporium salinum MST84 (tunisienne) et MSO03<br />

(omanaise) vis-à-vis des juvéniles J2 de Meloidogyne javanica (A)<br />

et des juvéniles J2 de Tylenchulus semipenetrans (B) à la<br />

température de 25 oC. Les barres verticales correspondent à<br />

l’intervalle de confiance à P = 0,05 et les traitements affectés par<br />

la même lettre ne sont pas statistiquement différents à la<br />

probabilité P = 0,05 selon le test t de Student.<br />

Figure 6 – Capture efficiency evolution <strong>of</strong> two Monacrosporium salinum<br />

strains cultured on Corn Meal Agar medium on Meloidogyne<br />

javanica and Tylenchulus semipenetrans juveniles at 25 oC. a<br />

MST84 MSO03<br />

a<br />

a<br />

a<br />

a<br />

a<br />

a<br />

a<br />

a<br />

a<br />

a<br />

a<br />

a<br />

a<br />

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