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International Journal of Mediterranean Ecology - Ecologia ...

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Comparaison morphologique de deux souches de Monacrosporium salinum, champignon prédateur de nématode,<br />

isolées d’un agro-écosystème tunisien et omanais<br />

quatre cellules. Les mensurations des conidies<br />

des deux souches étudiées montrent que la<br />

longueur de la souche MST84 varie entre 28,4<br />

et 51,6 µm alors que la largeur se situe entre<br />

9,7 et 20 µm. La souche MSO03 présente des<br />

limites de variations qui s’éloignent de celles<br />

de la souche MST84 puisque la longueur des<br />

conidies de MSO03 varie entre 26,4 et 43,2 µm<br />

et la largeur de 11,6 à 17,4 µm (tableau 2).<br />

L’analyse statistique des données montre qu’il<br />

y a une différence significative entre les deux<br />

souches MSO03 et MST84 concernant la longueur<br />

des conidies (P < 0,0001) et le rapport<br />

L/l (longueur/largeur) (P < 0,0001). La largeur,<br />

par contre, ne permet pas de les distinguer<br />

(tableau 2).<br />

Le diamètre des chlamydospores varie entre<br />

3,2 et 25,8 µm (moyenne = 11,76 µm ± 3,56)<br />

pour la souche MSO03 et entre 4,5 et 12,2 µm<br />

(moyenne = 8,38 µm ± 1,05) pour MST84. La<br />

comparaison entre les valeurs moyennes des<br />

mesures effectuées montre qu’il n’y a pas de<br />

différence significative entre les deux souches<br />

MSO03 et MST84 (fig. 4). La mesure du diamètre<br />

des chlamydospores n’est pas dans ce<br />

cas un critère de comparaison entre les deux<br />

souches.<br />

Sur le plan morphologique, les chlamydospores<br />

de MSO03 sont nettement différentes<br />

de celles de MST84, aussi bien du point de vue<br />

forme que mode de formation. En effet, les<br />

chlamydospores de la souche MSO03 se forment<br />

par bourgeonnement (fig. 1 L, M, N et<br />

O), jusqu’à obtenir une chaîne de chlamydospores<br />

dont la forme est arrondie (fig. 1 K).<br />

Tandis que la souche MST84 forme des chlamydospores<br />

en chaîne ayant une forme assez<br />

aplatie (fig. 1 G et H).<br />

Le mycélium des deux souches est septé. La<br />

largeur présente une grande variabilité,<br />

puisque ce critère varie entre 1,3 et 5,2 µm et<br />

c’est pour cette raison qu’il n’a pas été pris en<br />

considération pour la comparaison entre les<br />

deux souches.<br />

Mesure de la croissance apicale<br />

Sur la même boîte, les deux souches se développent<br />

normalement comme sur deux boîtes<br />

différentes. En effet, la souche MSO03 se<br />

développe rapidement par rapport à MST84 et<br />

lorsque les deux souches arrivent au milieu de<br />

la boîte, elles continuent leur développement<br />

et s’enchevêtrent sans qu’il y ait de compétition<br />

ni antibiose (fig. 5).<br />

ecologia mediterranea – Vol. 38 (1) – 2012<br />

Tableau 2 – Les valeurs moyennes des mensurations des conidies des deux<br />

souches MST84 et MSO03 de Monacrosporium salinum.<br />

Table 2 – Conidia measurement <strong>of</strong> two strains <strong>of</strong> Monacrosporium salinum.<br />

Souches Longueur (L) Largeur (l) Rapport L/l<br />

(µm) (µm)<br />

MSO03 33,8 ± 1,03*** 16,12 ± 0,42 2,09 ± 0,02***<br />

MST84 40,9 ± 1,61 θ 15,72 ± 0,74 2,62 ± 0,04<br />

Les chiffres par colonne précédant un astérix (***) sont très hautement<br />

significativement différents selon le test t de Student à P = 0,001.<br />

(θ) correspond à la limite de l’intervalle de confiance à P = 0,05.<br />

Efficacité de capture<br />

des deux souches<br />

Le comptage des nématodes piégés s’étale sur<br />

72 heures. Les deux souches capturent en<br />

moyenne 60 % des larves de M. javanica présentes<br />

dans la boîte après 36 heures de l’inoculation<br />

(fig. 6A). Les pourcentages de capture<br />

des deux souches ne sont pas<br />

statistiquement différents au seuil de 5 % du<br />

test t de Student.<br />

Figure 2 –<br />

Monacrosporium<br />

salinum souche<br />

tunisienne, MST84.<br />

A, B, C, D, E : conidies<br />

âgées à trois cloisons ;<br />

F : chlamydospore ;<br />

G : piège en cours de<br />

formation ;<br />

H et I : conidies à<br />

deux cloisons ;<br />

J et L : conidies<br />

bicellulaires ;<br />

M, N et O : conidies<br />

monocellulaires ;<br />

K : conidiophore.<br />

Figure 2 – Tunisian<br />

strain <strong>of</strong><br />

Monacrosporium<br />

salinum, MST84.<br />

Figure 3 – Monacrosporium salinum souche omanaise, MSO03.<br />

A et B : conidies à trois cloisons ; C : conidie à deux cloisons ;<br />

G et F : conidies bicellulaires ; H : conidie monocellulaire ;<br />

D et E : chlamydospores ; I et J : pièges en réseau tridimensionnel.<br />

Figure 3 – Omani strain <strong>of</strong> Monacrosporium salinum, MSO03.<br />

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