International Journal of Mediterranean Ecology - Ecologia ...

S. ELFÉKIH, S. KALLEL, A. ABDELWAHED, M. SULAIMAN AL-HINAI, M.M. B’CHIR
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masses d’œufs sont prélevées avec une
aiguille à partir des racines naturellement
infestées. Les masses d’œufs de M. javanica
sont obtenues à partir de racines provenant
des cultures de saison de tomate et de piment
de la région du cap Bon (au nord de la Tunisie).
Les masses d’œufs de T. semipenetrans
sont prélevées à l’aide d’une aiguille à partir
de racines d’orangers (variété maltaise demisanguine)
greffées sur bigaradier provenant de
vergers infestés de la région du cap Bon. Les
masses d’œufs de nématode sont placées dans
un tamis à maille de 1 mm sur une double
épaisseur de papier cellulosique. Les tamis
eux-mêmes sont disposés dans des boîtes de
A B
C D
E
Tunisie Sultanat d’Oman
G
Q
F
H
Figure 1 – Comparaisons morphologiques des deux souches de
Monacrosporium salinum. Souche MST84 : conidie monocellulaire
sur conidiophore (A) ; conidie à trois cloisons (à gauche) et à une
cloison (à droite) (B) ; conidies à différents stades de
développement sur conidiophores (C, E et F) ; détail d’une conidie
âgée (D) ; formation d’une chaîne de chlamydospores (G et H).
Souche MSO03 : différents stades de développement des conidies
sur conidiophores (I, J) ; comparaison des dimensions d’un
chlamydospores et une conidie (K) ; processus de formation des
chlamydospores (L, M, N) et début de formation d’une chaîne de
chlamydospores (O) ; détail d’une vieille culture, noter
l’importance des chlamydospores (P). Piège en réseau
tridimensionnel développé par la souche MST84 de
Monacrosporium (Q) et système de capture de la souche MSO03 (R).
A, B, C, D, G, H, K, L, M, N, O, Q et R : barre = 10 µm.
E, F, I et J : barre = 20 µm.
P : barre = 50 µm.
Figure 1 – Morphological comparative of the two strains
of Monacrosporium salinum.
I
KL
M
R
O
L
N
P
J
Pétri de 90 mm de diamètre contenant de
l’eau distillée puis mis à incuber à 20 o C. Les
juvéniles J 2 émergeant durant les premières
48 heures sont écartées. Les juvéniles émergeant
après 48 heures sont récupérés et utilisés
pour l’étude de l’activité prédatrice des
deux souches de champignon.
Analyse statistique
L’analyse statistique est effectuée par le logiciel
SPSS.12 et les résultats sont comparés
selon le test t de Student. Avant analyse, les
données brutes ont été testées pour la normalité
des populations et la stabilité de la
variance.
Résultats
Étude morphologique
Les cultures sur milieu CMA présentent un
aspect incolore. Les conidiophores des deux
souches sont dressés trapus et portent à leur
extrémité une à trois conidies soit groupées en
tête soit isolées le long de la partie distale du
rachis (fig. 1 C, D, E, F, I et J). Les conidies
sont pyriformes et pluricellulaires. Elles sont
formées par une cellule proximale qui se
rétrécit vers une base largement tronquée, une
cellule médiane renflée ayant parfois une
large vacuole centrale et une cellule distale
arrondie à l’extrémité. Les conidies du genre
Monacrosporium sont réparties en plusieurs
groupes selon le nombre de cellules qu’elles
renferment. Dans le cas de M. salinum, les
conidies renferment une, deux ou trois cloisons
(fig. 1 A, B et D). Le nombre de cloisons
augmente avec l’âge de la conidie. Ces différents
types de conidies sont présents chez les
deux souches MST84 et MSO03 (fig. 2 et 3).
Les chlamydospores de la souche tunisienne
sont formées de cellules aplaties, en chaînes
et présentant une membrane mince ; alors que
celles de la souche omanaise sont formées par
une seule cellule arrondie et à membrane
épaisse (fig. 1 H et L).
Les deux souches élaborent le même type de
système de capture, même en absence de
nématodes dans le milieu de culture. Ces
pièges sont formés d’anneaux septés en
réseaux tridimensionnels (fig. 1 Q et R).
Les mensurations des conidies (longueur et
largeur) ont intéressé celles des plus âgées à
ecologia mediterranea – Vol. 38 (1) – 2012