International Journal of Mediterranean Ecology - Ecologia ...
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s’anastomosent donnant des boucles tridimensionnelles<br />
accompagnées de sécrétions<br />
adhésives (Namouchi 1986).<br />
L’objectif du présent travail est de comparer<br />
deux souches de champignons prédateurs du<br />
genre Monacrosporium provenant de deux<br />
régions différentes en étudiant leur morphométrie<br />
et leur efficacité de capture vis-à-vis<br />
de Tylenchulus semipenetrans et Meloidogyne<br />
javanica, deux nématodes phytoparasites.<br />
Matériels et méthodes<br />
Étude morphologique<br />
Comparaison morphologique de deux souches de Monacrosporium salinum, champignon prédateur de nématode,<br />
isolées d’un agro-écosystème tunisien et omanais<br />
Les deux souches faisant l’objet de cette étude<br />
appartiennent à l’espèce M. salinum. Elles<br />
proviennent de deux régions différentes et<br />
présentent des caractéristiques abiotiques distinctes<br />
(Kallel et al. 2008). Ces caractéristiques<br />
sont présentées dans le tableau 1. La<br />
première souche provient du sud tunisien<br />
(Tozeur), maintenue depuis 1984 sur milieu<br />
gélosé CMA à une température de 22 o C et a<br />
fait l’objet d’un brevet d’invention SN 93106.<br />
La seconde souche a été isolée à Oman en<br />
2003 et est maintenue sur le même milieu et<br />
à la même température. Le milieu de culture<br />
Corn Meal Agar (CMA) (8,5 g de Corn Meal<br />
Agar et de 8,5 g d’agar par litre d’eau distillée)<br />
est préparé en le faisant bouillir puis stérilisé<br />
en l’autoclavant à 120 o C pendant<br />
20 minutes. Les deux souches de M. salinum<br />
provenant de Tunisie et du sultanat d’Oman<br />
sont déposées sous le code de MST84 et<br />
MSO03 respectivement dans la collection de<br />
l’Institut national agronomique de Tunisie.<br />
Les deux souches du champignon prédateur<br />
sont repiquées sur milieu CMA (Difco Laboratories,<br />
Detroit MI 48232-7058, États-Unis)<br />
en prélevant, sous loupe binoculaire et dans<br />
une hotte à flux laminaire, une conidie avec<br />
une aiguille portant à son extrémité un bout<br />
de gélose. Après quelques jours, le champignon<br />
envahit toute la boîte.<br />
La technique de coloration permet l’étude<br />
morphologique des deux souches de champignons<br />
provenant de cultures dans les conditions<br />
expérimentales. Les champignons sont<br />
cultivés à partir d’une conidie sur milieu CMA<br />
à la température optimale de croissance apicale.<br />
Après trois jours d’incubation, un bout<br />
de gélose d’une culture de chaque souche de<br />
champignon est déposé sur une lame avec une<br />
goutte de bleu coton avant d’être couvert par<br />
ecologia mediterranea – Vol. 38 (1) – 2012<br />
une lamelle (Nabil 1993). La lame est ensuite<br />
déposée sur une plaque légèrement chauffée<br />
afin de faire fondre la gélose. Ainsi, les lames<br />
sont prêtes pour l’observation sous microscope.<br />
Les caractéristiques biométriques des<br />
deux souches ont été examinées, mesurées et<br />
dessinées à l’aide d’un microscope Orthoplan<br />
Leitz pourvu d’une chambre claire. Ces caractères<br />
concernent essentiellement les mensurations<br />
des conidies, la largeur des hyphes<br />
mycéliens et le diamètre des chlamydospores.<br />
Le nombre de répétitions a été fixé à cinquante<br />
afin de mieux cerner la différence<br />
entre les deux souches.<br />
Mesure de la croissance apicale<br />
Après repiquage monospore des deux souches<br />
de champignons nématophages au milieu<br />
d’une boîte de Pétri contenant un milieu CMA,<br />
cinq boîtes de Pétri pour chaque souche sont<br />
mises en incubation à 30 o C, l’optimum de<br />
leur croissance apicale (Kallel et al. 2008). La<br />
croissance apicale du mycélium est mesurée<br />
de part et d’autre du bord de la colonie chaque<br />
jour. Pour évaluer la compétition intraspécifique<br />
entre les souches du champignon prédateur<br />
de nématode, deux conidies sont inoculées<br />
ensemble sur milieu CMA de part et<br />
d’autre de l’axe de la boîte de Pétri puis mises<br />
à incuber à la même température de 30 o C<br />
pendant une semaine. L’essai a comporté également<br />
cinq répétitions.<br />
Efficacité de capture<br />
des deux souches<br />
L’efficacité de piégeage des deux souches est<br />
évaluée in vitro à 25 o C sur milieu CMA. La<br />
technique consiste à inoculer des boîtes contenant<br />
les souches du champignon avec Meloidogyne<br />
javanica (Treub) Chitw. ou Tylenchulus<br />
semipenetrans Cobb. Chaque boîte est<br />
inoculée avec 100 larves de nématodes. Le<br />
suivi du taux de capture se fait toutes les<br />
24 heures. Pour obtenir les juvéniles, les<br />
Tableau 1 – Caractéristiques abiotiques de l’origine des deux souches MST84<br />
et MSO03 de Monacrosporium salinum.<br />
Table 1 – Abiotic caracterstic <strong>of</strong> two strains origin MST84 and MSO03 <strong>of</strong><br />
nematode trapping fungi Monacrosporium salinum.<br />
Caractéristiques édaphiques Souche MST84 Souche MSO03<br />
Température 15 < T o < 25 o C 25 < T o < 45 o C<br />
Salinité Peu élevée Ec # 3dS/m Très élevée Ec > 5 dS/m<br />
pH Neutre Alcalin<br />
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