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International Journal of Mediterranean Ecology - Ecologia ...

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s’anastomosent donnant des boucles tridimensionnelles<br />

accompagnées de sécrétions<br />

adhésives (Namouchi 1986).<br />

L’objectif du présent travail est de comparer<br />

deux souches de champignons prédateurs du<br />

genre Monacrosporium provenant de deux<br />

régions différentes en étudiant leur morphométrie<br />

et leur efficacité de capture vis-à-vis<br />

de Tylenchulus semipenetrans et Meloidogyne<br />

javanica, deux nématodes phytoparasites.<br />

Matériels et méthodes<br />

Étude morphologique<br />

Comparaison morphologique de deux souches de Monacrosporium salinum, champignon prédateur de nématode,<br />

isolées d’un agro-écosystème tunisien et omanais<br />

Les deux souches faisant l’objet de cette étude<br />

appartiennent à l’espèce M. salinum. Elles<br />

proviennent de deux régions différentes et<br />

présentent des caractéristiques abiotiques distinctes<br />

(Kallel et al. 2008). Ces caractéristiques<br />

sont présentées dans le tableau 1. La<br />

première souche provient du sud tunisien<br />

(Tozeur), maintenue depuis 1984 sur milieu<br />

gélosé CMA à une température de 22 o C et a<br />

fait l’objet d’un brevet d’invention SN 93106.<br />

La seconde souche a été isolée à Oman en<br />

2003 et est maintenue sur le même milieu et<br />

à la même température. Le milieu de culture<br />

Corn Meal Agar (CMA) (8,5 g de Corn Meal<br />

Agar et de 8,5 g d’agar par litre d’eau distillée)<br />

est préparé en le faisant bouillir puis stérilisé<br />

en l’autoclavant à 120 o C pendant<br />

20 minutes. Les deux souches de M. salinum<br />

provenant de Tunisie et du sultanat d’Oman<br />

sont déposées sous le code de MST84 et<br />

MSO03 respectivement dans la collection de<br />

l’Institut national agronomique de Tunisie.<br />

Les deux souches du champignon prédateur<br />

sont repiquées sur milieu CMA (Difco Laboratories,<br />

Detroit MI 48232-7058, États-Unis)<br />

en prélevant, sous loupe binoculaire et dans<br />

une hotte à flux laminaire, une conidie avec<br />

une aiguille portant à son extrémité un bout<br />

de gélose. Après quelques jours, le champignon<br />

envahit toute la boîte.<br />

La technique de coloration permet l’étude<br />

morphologique des deux souches de champignons<br />

provenant de cultures dans les conditions<br />

expérimentales. Les champignons sont<br />

cultivés à partir d’une conidie sur milieu CMA<br />

à la température optimale de croissance apicale.<br />

Après trois jours d’incubation, un bout<br />

de gélose d’une culture de chaque souche de<br />

champignon est déposé sur une lame avec une<br />

goutte de bleu coton avant d’être couvert par<br />

ecologia mediterranea – Vol. 38 (1) – 2012<br />

une lamelle (Nabil 1993). La lame est ensuite<br />

déposée sur une plaque légèrement chauffée<br />

afin de faire fondre la gélose. Ainsi, les lames<br />

sont prêtes pour l’observation sous microscope.<br />

Les caractéristiques biométriques des<br />

deux souches ont été examinées, mesurées et<br />

dessinées à l’aide d’un microscope Orthoplan<br />

Leitz pourvu d’une chambre claire. Ces caractères<br />

concernent essentiellement les mensurations<br />

des conidies, la largeur des hyphes<br />

mycéliens et le diamètre des chlamydospores.<br />

Le nombre de répétitions a été fixé à cinquante<br />

afin de mieux cerner la différence<br />

entre les deux souches.<br />

Mesure de la croissance apicale<br />

Après repiquage monospore des deux souches<br />

de champignons nématophages au milieu<br />

d’une boîte de Pétri contenant un milieu CMA,<br />

cinq boîtes de Pétri pour chaque souche sont<br />

mises en incubation à 30 o C, l’optimum de<br />

leur croissance apicale (Kallel et al. 2008). La<br />

croissance apicale du mycélium est mesurée<br />

de part et d’autre du bord de la colonie chaque<br />

jour. Pour évaluer la compétition intraspécifique<br />

entre les souches du champignon prédateur<br />

de nématode, deux conidies sont inoculées<br />

ensemble sur milieu CMA de part et<br />

d’autre de l’axe de la boîte de Pétri puis mises<br />

à incuber à la même température de 30 o C<br />

pendant une semaine. L’essai a comporté également<br />

cinq répétitions.<br />

Efficacité de capture<br />

des deux souches<br />

L’efficacité de piégeage des deux souches est<br />

évaluée in vitro à 25 o C sur milieu CMA. La<br />

technique consiste à inoculer des boîtes contenant<br />

les souches du champignon avec Meloidogyne<br />

javanica (Treub) Chitw. ou Tylenchulus<br />

semipenetrans Cobb. Chaque boîte est<br />

inoculée avec 100 larves de nématodes. Le<br />

suivi du taux de capture se fait toutes les<br />

24 heures. Pour obtenir les juvéniles, les<br />

Tableau 1 – Caractéristiques abiotiques de l’origine des deux souches MST84<br />

et MSO03 de Monacrosporium salinum.<br />

Table 1 – Abiotic caracterstic <strong>of</strong> two strains origin MST84 and MSO03 <strong>of</strong><br />

nematode trapping fungi Monacrosporium salinum.<br />

Caractéristiques édaphiques Souche MST84 Souche MSO03<br />

Température 15 < T o < 25 o C 25 < T o < 45 o C<br />

Salinité Peu élevée Ec # 3dS/m Très élevée Ec > 5 dS/m<br />

pH Neutre Alcalin<br />

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