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(Thèse partie 1)

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72<br />

Matériel et Méthodes<br />

reverse 1525R (McGenity et al., 1998). Pour les bactéries, les amorces utilisées pour<br />

l’amplification du gène de l’ARNr 16S sont 16F27 et 1525R, décrits par (Saiki et al.,<br />

1988) (Tableau 7).<br />

Tableau 7. Spécificité et description des amorces d’amplification.<br />

Amorces Localisation Séquence Spécificité<br />

Sens<br />

F8<br />

21F<br />

16F27<br />

Sens<br />

1462R<br />

1525R<br />

Forward (8-<br />

29)<br />

(7-26)<br />

(8-27)<br />

Reverse<br />

(1462-1441)<br />

(1541-1525)<br />

5’-TTGATCCTGCCGGAGGCCATTC-3’<br />

5’- TTCCGGTTGATCCTGCCGGA -3’<br />

5’ - AGAGTTTGATCMTGGCTCAG -3’<br />

5’- ATCCAGCCGCAGATTCCCCTAC -3’<br />

5’ - AAGGAGGTGATCCAGCC -3’<br />

Archaea<br />

+<br />

+<br />

Bacteria<br />

Tm est définie comme la température de fusion du primer et estimée par l’équation de<br />

Suggs et al. (1981).<br />

NG+C NA+T est la somme des nucléotides A, C, G et T.<br />

L’amplification est réalisée pour un volume de 50 µl dans un thermocycleur de type<br />

Perkin-Elmer Modèle 480 selon les cycles correspondant à chaque paire d’amorces. La<br />

composition du milieu de réaction et les cycles employés figurent les tableaux 8 et 9.<br />

Tableau 8. Mélange réactionnel.<br />

Tm = 4NG+C + 2NA+T<br />

Composés Volumes ( l)<br />

ADN 1<br />

Tampon (100 mM Tris/HCl, pH 8,3 ; 500 mM KCl) (Perkin Elmer) 5<br />

MgCl2 (25 mM) (Perkin Elmer) 3<br />

Taq polymérase (Amplitaq DNA polymerase, Perkin Elmer) 0,25<br />

dNTPs (Ultrapure dNTP set, Pharmacia Biotech, cat. 27-2035-01) 1<br />

Amorce F (20 pmol/ l) (Perkin Elmer) 1<br />

Amorce R (20 pmol/ l) (Perkin Elmer) 1<br />

Eau MilliQ 38,75<br />

+<br />

+<br />

+<br />

+

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