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(Thèse partie 1)

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3. 7. 3. Détermination du contenu en G+C de l’ADN génomique<br />

71<br />

Matériel et Méthodes<br />

Le contenu en guanine et cytosine de l’ADN génomique des souches est déterminé<br />

par la méthode de dénaturation thermique selon Marmur et Doty (1962). En effet, lorsque<br />

l’ADN natif est soumis à un agent dénaturant comme la température, la double hélice se<br />

sépare. Cette modification se traduit par une augmentation de l’absorbance à 260 nm. Un<br />

système analyseur ; programmateur de température et enregistreur de type recorder R 100A<br />

couplé à un spectrophotomètre de type Perkin-Elmer UV-Vis Lambda 3B a été utilisé. Il<br />

permet de suivre les variations de densité optique de la solution de l’ADN en fonction de la<br />

température. La température de fusion Tm « pour melting temperature » est celle qui<br />

correspond à une augmentation de la DO atteignant 50 % de la DO maximale. Elle est<br />

déterminée par la méthode graphique décrite par Ferragut et Leclerc (1976). Le contenu en<br />

G+C est calculé à partir du Tm selon l’équation de Owen et Hill (1979) dans un tampon<br />

SSC 1× (0,15 M NaCl et 0,015 M tri-sodium citrate, pH 7,0).<br />

Tm = 69,3 + 0,41 (G+C)<br />

3. 7. 4. La Réaction de Polymérisation en Chaîne ou technique PCR<br />

La PCR (Polymerase Chain Reaction) consiste à amplifier sélectivement une<br />

séquence particulière d’ADN par action d’une ADN polymérase thermostable.<br />

L’amplification s’effectue sur un fragment d’ADN à partir de deux amorces<br />

oligonucléotidiques s’appariant spécifiquement aux extrémités des deux brins<br />

complémentaires qui délimitent la <strong>partie</strong> d’ADN à amplifier.<br />

Amplification des séquences des ADNr<br />

Le marqueur moléculaire choisi dans cette étude phylogénétique est le gène<br />

ribosomal 16S. Très représenté dans les banques de données, ce marqueur nous permettra<br />

d’affilier nos séquences à un groupe d’organismes connus.<br />

Les gènes codant l’ARN ribosomal 16S des haloarchaea sont amplifiés par utilisation de<br />

deux paires d’amorces (ou primers) : le premier jeux : amorce directe F8 et la reverse<br />

1462R (Lizama et al., 2002) et le second jeux d’amorce : directe 21F (DeLong, 1992) et la

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