(Thèse partie 1)

24
Revue bibliographique
bactéries aux protéases et plus thermotolérants mais ils se dissocient rapidement en
solutions faiblement salines.
La synthèse du flagelle chez les bactéries se fait par transport des sous unités de flagellines
à travers le tube creux du filament (2 nm de diamètre) et s’assemblent spontanément de
sorte que le filament grandit à son extrémité et non dans sa partie basale. Alors que les
flagelles des archaea sont fins et ne peuvent donc permettre le cheminement des
flagellines comme chez les bactéries. Par ailleurs, on a noté chez les archaea, la présence
de peptide signal lié aux sous unités de pré-flagellines, ce qui suggère qu’elle passe à
travers la membrane cytoplasmique. Il sera ensuite clivé par une flagelline peptidase.
Cette caractéristique, et autres similarités sont observées entre le flagelle archéen et les
fimbriae bactérien de type 4, font penser que, chez les archaea, le flagelle se construit à
partir de la base (Thomas et al., 2001a).
Quelques membres d’haloarchaea produisent également des vésicules à gaz comme
certaines bactéries aquatiques (DasSarma & Arora, 1997). Ce sont des structures de forme
cylindrique chez Halobacterium salinarum (Halobacterium halobium), entourée par une
membrane de nature protéique de 20 Å d’épaisseur (Krantz & Ballou, 1973). Leur fonction
est d’assurer la flottabilité en réponse à un besoin d’oxygène ou encore de lumière pour la
membrane pourpre. Selon Oren et al. (2006), les vésicules permettent surtout à la cellule
de se positionner parallèlement à la surface des saumures.
3. 3. 4. ARN et ribosomes
Les Archaea ont des ribosomes 70S comme les bactéries, cependant au microscope
électronique leur forme est très variable et peut différer de celle des ribosomes bactériens
ou eucaryotes. Les ribosomes de Halobacterium salinarum (Halobacterium cutirubrum)
paraissent identiques à ceux de E. coli, 70S, une teneur en ARN de 60 % avec 40 % de
protéines (Bayley & Kushner, 1974). Cependant, ils présentent quelques différences. La
sous unité 70S requiert en plus du magnésium (0,1 M), entre 3 et 4 M de potassium pour sa
stabilisation (Visentin et al., 1972). Les tampons utilisés dans les études des ribosomes
provoquent la dissolution de la plupart des protéines et de l’ARNr 5S. Le maintien de
l’intégrité des particules 70S apparaît dépendant de la concentration en KCl. Le
remplacement de KCl par NaCl se traduit par une dissociation en unités 52S et 31S. Une
autre caractéristique est que la plupart des protéines ribosomales halophiles sont acides,