D. Chabasse
D. Chabasse
D. Chabasse
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Pathologie fongique de l’ongle<br />
due aux moisissures<br />
Dominique <strong>Chabasse</strong><br />
CHU-Angers<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 1<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Onychomycose à moisissures<br />
–Place des « moisissures » dans une<br />
onychopathie<br />
–Peut-on avoir une orientation<br />
clinique?<br />
–Rôle du laboratoire de Mycologie,<br />
intêret du diagnostic d’espèce<br />
–Apport de l’histopathologie ++<br />
–Conséquences thérapeutiques<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 2<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Les Onychomycoses<br />
• Infections fongiques de l’appareil unguéal<br />
• Fréquentes: 3 à 30 % de la population, 14 à 18 %<br />
des consultations en Dermatologie<br />
• Prévalence augmente avec l’âge 48 % (> de 70 ans )<br />
• Mais onychopathie n’est pas toujours<br />
onychomycose ( 18 à 50 %)<br />
• Le prélèvement a visée « mycologique » est<br />
incontournable<br />
Baran R et al . Les mycoses unguéales .Chap.1. Epidémiologie 2006 Informa UK Ltd 2006<br />
<strong>Chabasse</strong> D .Peut-on chiffrer la fréquence des onychomycoses.Ann Dermatol Venereol 2003<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 3<br />
2011
Psoriasis unguéal<br />
Onychomycose ?
Onychomycoses: recommandations pour les<br />
modalités de diagnostic et de prise en charge<br />
Conclusion du groupe de travail:<br />
« Le groupe de travail insiste sur l’obligation d’un<br />
prélèvement mycologique systématique, fait avec<br />
une technique rigoureuse, dans un laboratoire qui<br />
a l’habitude de ces prélèvements, et avant tout<br />
traitement local et a fortiori systémique. Le<br />
laboratoire doit fournir les résultats de l’examen<br />
direct et de la culture ».<br />
Ann Dermatol Venereol 2007;134:5S3-4<br />
J Med Med 2007;17:282-84<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 5<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Les outils du diagnostic<br />
▪Identification de l’espèce<br />
-Identification mycologique morphologique : direct, culture, identification<br />
-Identification moléculaire (séquençage ITS (r DNA ) et introduction de la séquence<br />
dans Genbank (1)<br />
-Identification par spectrométrie de masse, cytométrie de flux<br />
▪Apport de l’histopathologie (histomycologie) (2-3)<br />
▪Immuno-Histologie ( IF direct ou Immunoperoxydase )sur coupe d’ongle ( 4)<br />
▪Microscopie confocale in vivo (5)<br />
1-Machouard-Dubach M., LacroixC., Feuilhade de Chauvin M. J Clin Microbiol<br />
2001;39:685-90<br />
2-Pierard GE, Aresse JE, Quatresozz P. Histomycologie de la biodiversité des<br />
onychomycoses in Onychomycoses R. Baran , GE Pierard Abrégés Masson 2004<br />
3-Pierard-Franchimont C , Kaharfi M., Pierard GE; Prélèvement et examen mycologique<br />
des onychomycoses, in Onychomycose, R. Baran, GE Pierard Abrégés Masso 2004<br />
4-Pierrard et al. Ann Dermatol Venereol 1994; 121:25-29<br />
5-Hongcharu W. et al. J Acad Dermatol 2000; 42:214-16<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
6
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microscopie confocale<br />
D’après Pierrard GE<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
7
Les champignons des Onychomycoses<br />
• Les Dermatophytes 80 % ( 4/5 aux pieds)<br />
• Trichophyton rubrum<br />
• Trichophyton mentagrophytes (var.interdigitale)<br />
• Epidermophyton floccosum<br />
• Les Levures ( 5-15 % ) surtout aux mains<br />
• Candida albicans<br />
• Candida parapsilosis<br />
• Trichosporon sp<br />
• Les moisissures ( 3-7 % )<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
8
Onychomycoses à « moisissures »<br />
-Fréquence mal connue : 3 à 7 % en moyenne<br />
des onychopathies fongiques<br />
- > à 40 ans, surtout sujet âgé<br />
- Femmes > Hommes<br />
- Pieds > mains<br />
- Fréquence :gros orteil<br />
-Contet-Audonneau N et al. Nouv Dermatol 1995<br />
-Tosti A et al. J Am Acad Dermatol 2000<br />
-Gianni C et al. Mycoses 2000<br />
-Escobar ML et AL. Rev Iberoam Micol 2003<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
9
Onychomycose à moisissures<br />
-Il convient en pratique de distinguer<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
-Les «pseudodermatophytes »<br />
- Les moisissures opportunistes<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
10
Les Pseudo Dermatophytes<br />
Comportement parasitaire simulant les dermatophytes<br />
dans l’ongle<br />
Présentent une réelle affinité pour la kératine ( ongle,<br />
espaces interdigitaux, plantes et paumes)<br />
Clinique : onychomycoses sous-unguéales distales évoluant<br />
très lentement vers une onychomycodystrophie totale<br />
Atteintes palmo-plantaires et des plis « en regard »<br />
Isolés en culture → considérées comme de « vrais »<br />
pathogènes<br />
2 genres : Onychocola<br />
Neoscytalidium (ex : Scytalidium )<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 11<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Onychocola canadensis<br />
Isolée la 1 ère fois au Canada en 1990, puis en Nouvelle<br />
Zélande pour la forme parfaite : Arachnomyces nodesotus<br />
( Ascomycète )<br />
Champignon des pays froids et tempérés, réservoir<br />
inconnu<br />
Clinique : onyxis des pieds et intertrigos chez les personnes<br />
âgées, surtout les femmes, ayant des troubles vasculaires<br />
des membres inférieurs<br />
Souvent atteinte latéro-distale du gros orteil<br />
-Sigler L., Congly H. Toenail infection caused by Onychocola canadensis gen. and sp. nov. J Myco Vet Med, 1990, 28: 405-417.<br />
-Koenig H., Ball C., de Bièvre C. First European cases of onychomycosis caused by Onychocola canadensis J<br />
Myco Vet Med 1997, 35: 71-72..<br />
_Contet-Audonneau N., Schmutz J.L., Basile A.M ., de Bièvre C.A new agent of onychomycosis in the elderly :<br />
Onychocola canadensis. Eur J Dermatol, 1997: 115-117.<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 12<br />
2011
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Onychomycose à Onychocola<br />
canadensis<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
13
Onychomycose à Onychocola<br />
canadensis<br />
CHU Rennes
Pousse très lente<br />
Caractéristique<br />
après 4-5<br />
semaines<br />
Pousse sur<br />
Actidione®<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Onychocola canadensis<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
15
Onychocola canadensis<br />
Culture lente sur Sab+cycloheximide<br />
attendre 4 à 6 semaines , repiquages<br />
sur milieux pauvres (milieu de<br />
Takashio, eau gélosée à 2 %).<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 16<br />
2011
Onychocola canadensis<br />
Arthrosporés , Conidiogénèse type « Thallique arthritique »<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 17<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Onychocola canadensis<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 18<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Genre Neoscytalidium<br />
Moisissures des pays tropicaux et subtropicaux<br />
espèces phytopathogènes<br />
Isolées de personnes originaires des tropiques : Antilles,<br />
Maghreb, Afrique, Indes<br />
Espèces kératinophiles et kératinolytiques :<br />
Simulent un dermatophyte, car responsables d’onyxis des<br />
pieds et des mains, mais aussi d’hyperkératoses palmoplantaires<br />
et d’intertrigos associés. Ils représentent 40 % des<br />
atteintes fongiques des pieds en zone d’endémie.<br />
2 espèces Neoscytalidium dimidiatum et<br />
Scytalidium (Neoscytalidium) hyalinum<br />
Lacroix C. et al. J Acad Dermatol 2003;48:852-6<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 19<br />
2011
▪Saprophyte<br />
▪Pathogène d’arbres et de plantes<br />
tropicales (citroniers citroniers, , bananiers, pêchers,<br />
Eucalyptus calmadulensis<br />
calmadulensis.. )<br />
▪Kératinophile ++<br />
Neoscytalidium dimidiatum<br />
▪Continent Africain, Antilles, Indes ,Asie<br />
▪Atteintes palmo-plantaires et onyxis des<br />
mains et pieds,<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
20
Aussi intertrigo et parfois formes disséminées<br />
Pihet et al. Phaeohyphomycose cutanée à S. dimidiatum chez une<br />
transplantée rénale . J Mycol Med 2007; 17: 109 109-113 113<br />
Tan DHS, Sigler L., Gibas CFC., Fong I.Disseminated fungal infection in renal<br />
transplant recipient recipient, , …… Med Mycol 2008; 46: 285 285-292 292<br />
Khan ZU . Cutaneus phaeohyphomycosis due to Neosytalidium dimidiatum . J<br />
Mycol Med 2009; 19: 138 138-142 142<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Photo G.Badillet<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
21
▪Culture rapide<br />
extensive, noire<br />
▪Pousse à 37° C<br />
-Champignon noir<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Neoscytalidium dimidiatum<br />
« Phaeohyphomycète »<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
22
▪Filaments<br />
arthrosporés<br />
mélanisés<br />
Neoscytalidium dimidiatum<br />
▪Conidiogénèse de<br />
type « thallique<br />
arthritique »’<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
23
Saprophyte<br />
Neoscytalidium hyalinum<br />
Pathogène de plantes<br />
tropicales ( bananiers,<br />
citroniers)<br />
Rencontré surtout aux<br />
Antilles *:onyxis des pieds<br />
atteintes plantaires et<br />
palmaires, nombreux porteurs<br />
sains +++<br />
Kératinophile +<br />
*Belloeuf L. et al. Ann Dermatol Venereol ,2004;<br />
131: 245-9<br />
Elewski BE. J Acad Dermatol ; 1996; 35:336-38<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
G. Badillet<br />
G. Buot<br />
24
Scytalidium (Neosytalidium) hyalinum<br />
Culture duveteuse<br />
poudreuse<br />
Conidiogénèse Conidiogénèse de type<br />
« thallique arthritique »<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
25
Scytalidium (Neosytalidium) hyalinum<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 26<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
En résumé<br />
Les « Peudodermatophytes »<br />
Espèce fongique habitat<br />
Neoscytalidium<br />
dimidiatum<br />
Scytalidium<br />
hyalinum<br />
Onychocola<br />
canadensis<br />
Rôle pathogène<br />
Pays tropicaux (Afrique, Onyxis des mains des<br />
pieds ( souvent avec<br />
intertrigo),Hyperkératose<br />
palmo palmo-plantaire<br />
palmo palmo-plantaire plantaire<br />
Pays tropicaux ( Antilles, ..) Onyxis des mains des<br />
pieds ( souvent avec<br />
intertrigo)<br />
Pays froids et tempérés<br />
(Canada ,Europe,..)<br />
Onyxis , plus rares<br />
intertrigo<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 27<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Les « moisissures » opportunistes<br />
parasites de l’ongle<br />
D. Chabalesse 28<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Moisissures impliquées dans une<br />
onychomycose<br />
• Acremonium potronii<br />
• Acremonium strictum<br />
• Alternaria alternata<br />
• Alternaria tenuis<br />
• Alternaria tereus<br />
• Aphanoascus fulvescens<br />
• Arthrinium phaeospermum<br />
• Arthroderma tuberculatum<br />
• Aspergillus favus<br />
• Aspergillus fumigatus<br />
• Aspergillus groupe glaucus<br />
• Aspergillus candidus<br />
• Aspergillus nidulans<br />
• Aspergillus niger<br />
• Aspergillus ochraceus<br />
• Aspergillus sclerotiorum<br />
• Aspergillus ustus<br />
• Aspergillus varians<br />
• Aureobasidium pullulans<br />
• Beauveria sp<br />
• Bipolaris hawaiiensis<br />
• Cladiophialophora carrionii<br />
• Cladosporium spaerospermum<br />
• Chaetomium globosum<br />
• Chrysosporium anamorphe<br />
• d’Arthroderma curreyi<br />
• Chrysosporium carmichaelli<br />
• Chrysosporium keratinophilum<br />
• Chrysosporium lobatum<br />
-D. <strong>Chabasse</strong> Epidémiologie et étiologie des onychomycoses in<br />
Onychomycose R.Baran et GE Pierard Abrégés Masson 2004<br />
-Scherer WP. J Am Pod Med As 2001; 91: 456-64
• Exophiala jeanselmei<br />
• Exserohilum sp<br />
• Geomyces pannorum<br />
• Curvularia lunata<br />
• Geotricum candidum<br />
• Gymnascella dankaliensis<br />
• Lasiodiplodia theobromae<br />
• Malbranchea gypsea<br />
• Microascus cinereus<br />
• Microascus cirrosus<br />
• Myceliophthora lutea<br />
• Myrodontium keratinophilum<br />
• Nigrospora sp<br />
• Paecilomyces lilacinus<br />
• Paecilomyces variotii<br />
• Penicillium citrinum<br />
• Pithomyces sp<br />
• Pseudorotium<br />
• Pyrenochaeta unguis-hominis<br />
• Renispora flavissima<br />
• Rhizopus sp<br />
• Schizophylum commune<br />
• Scopulariopsis fusca<br />
• Scopulariopsis koningii<br />
• Scopulariopsis brumptii<br />
• Scopulariopsis candida<br />
• Wangellia dermatitidis<br />
-D. <strong>Chabasse</strong> Epidémiologie et étiologie des onychomycoses in<br />
Onychomycose R.Baran et GE Pierard Abrégés Masson 2004<br />
-Scherer WP. J Am Pod Med As 2001; 91: 456-64
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
31
Les moisissures opportunistes<br />
▪ Les moisissures ne possèdent pas de kératinase, lysent difficilement<br />
la kératine de l’ongle en s’attaquant au cèment des cornéocytes<br />
et le processus de lyse est long, formation de fins filaments<br />
perforateurs<br />
M P. English Sabouraudia 1962<br />
Achten et coll Dermatologica 1979<br />
▪ En pratique 5 genres sont plus particulièrement retrouvés :<br />
Aspergillus sp., Fusarium sp, Scopulariopsis sp, Acremonium sp et<br />
Paecilomyces sp<br />
- Contet-Audonneau N. Les onyxis à moisissures RFL 2005<br />
-Tosti A et al. J Am Acad Dermatol 2000<br />
-Gianni C et al. Mycoses 2000<br />
▪ Atteinte portant le plus souvent sur les ongles des gros orteils<br />
distale au départ puis fréquemment un aspect d’ hyperkératose et<br />
d’onycholyse associées ou de leuconychie<br />
▪ Lésions cutanées exceptionnellement associées<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 32<br />
2011
Onyxis à Aspergillus<br />
▪ Espèces les plus fréquemment<br />
isolées : A. versicolor A. sydowii et<br />
A. candidus<br />
Autres :, A. flavus, A terreus , A<br />
ochraceus, A. fumigatus, …<br />
→ Aspergillus versicolor<br />
▪ Caractères culturaux :<br />
croissance lente et restreinte,<br />
résistance au cycloheximide<br />
polychromie des colonies<br />
Tête radiée bisériée<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 33<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Espèces impliquées :<br />
Fusarium oxysporum<br />
et Fusarium solani<br />
Onyxis des pieds et<br />
des mains<br />
Atteinte<br />
distolatérale,<br />
leuconychie ou<br />
proximale avec<br />
paronychie<br />
Redoutables chez<br />
l’immunodéprimé →<br />
porte d’entrée d’une<br />
infection systémique<br />
à moisissure.<br />
Onyxis à Fusarium<br />
N Contet-Audonneau<br />
R Baran<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 34<br />
2011
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Onyxis à Fusarium<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
M. Gari-Toussaint<br />
35
▪Culture duveteuse extensive<br />
Fusarium sp<br />
Conidiogénèse de type phialidique<br />
macroconidies arquées (plusieurs<br />
logette), microconidies,<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
36
Onyxis à Scopulariopsis brevicaulis<br />
Agent<br />
d’onychomycose<br />
disto-latérale<br />
Notion Notion de<br />
traumatisme<br />
toujours retrouvée<br />
Infection mixte<br />
possible avec un<br />
dermatophyte<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
Photo Guy Badillet<br />
37
Scopulariopsis brevicaulis<br />
Culture poudreuse marron<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Conidiogénèse de type<br />
« annellidique »spores en<br />
montgolfière échinulées<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
38
Onyxis à Acremonium (A. strictum)<br />
Saprophyte<br />
Agent<br />
d’onychomycose<br />
(leuconychie)<br />
Notion de<br />
traumatisme<br />
toujours retrouvée<br />
Infection mixte<br />
possible avec un<br />
dermatophyte<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
Photo G. Badillet<br />
39
▪Culture parfois<br />
glabre, finement<br />
duveteuse philalides<br />
étroites<br />
▪Type phialidique<br />
et spores disposées<br />
en « balles »<br />
Acremonium<br />
A.strictum<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 40<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Onyxis à Paecylomyces<br />
Photo G. Badillet<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
41
▪Culture finement<br />
poudreuse couleur<br />
lilas phialides<br />
élancées<br />
Paecylomyces<br />
P. lilacinus<br />
▪Conidiogénèse de<br />
type phialidique<br />
Phialides produisant<br />
des spores disposées<br />
en « chaîne »<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 42<br />
2011
En résumé:les moisissures opportunistes<br />
Espèce fongique habitat Rôle pathogène<br />
Acremonium sp sp. Sol et habitat Onyxis (leuconychie)<br />
Arthrographis sp sp. Sol et Habitat Onyxis<br />
Aspergillus sp sp.<br />
A.versicolor A.versicolor, , A.sydowii, ….<br />
Sol et habitat Onyxis<br />
Chrysosporium sp sp. Sol Onyxis mains ou<br />
pieds<br />
Fusarium sp Sol (pays froids et<br />
tempérés)<br />
Paecilomyces sp sp. Sol Onyxis<br />
Scopulariosis brevicaulis Sol Onyxis<br />
Onyxis, intertrigos<br />
Formes disséminées<br />
Scedosporium apiospermum Sol, eaux Onyxis, poumon,<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
cerveau, atteintes<br />
43<br />
disséminées
Interprétation<br />
-Rôle pathogène des champignons filamenteux non<br />
dermatophytiques discuté : isolement d’une moisissure<br />
toujours d’interprétation délicate<br />
- simple contaminant des cultures ?<br />
- réel pathogène ?<br />
- infection mixte ?<br />
-Difficile d’affirmer le caractère pathogène d’une moisissure<br />
au niveau des ongles<br />
→Critères de pathogènicité<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 44<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
1-Un bon prélèvement !<br />
▪ A distance d’un traitement ,<br />
fenêtre thérapeutique de 3 mois<br />
▪Essuyer l’ongle<br />
▪Eliminer les fragments les plus<br />
externes<br />
▪Prélever à la jonction ongle sain<br />
ongle malade<br />
▪Pour l’histopathologie biopsie<br />
latéro-longitudinale et/ou<br />
exérèse longitudinale , placer le<br />
ou les fragments dans du formol<br />
en solution aqueuse à 5 %<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 45<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
▪ Mise en évidence<br />
d’éléments fongiques<br />
filaments mycéliens<br />
spores, chlamydospores<br />
2-Examen direct<br />
1-Signe une origine<br />
fongique<br />
2-L’aspect des filaments<br />
peut-être évocateur<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 46<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Examen direct (contraste de phase)<br />
Photo G. Badillet<br />
Neoscytalidium dimidiatum<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 47<br />
2011
Examen direct (contraste de phase)<br />
Photo N. Contet-Audonneau<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
Scopulariopsis<br />
48
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Onychocola canadensis<br />
Contraste de phase<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
49
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Examen direct/histopathologie<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
Onychocola<br />
canadensis<br />
50
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Scopulariopsis brevicaulis<br />
Noir Chlorazol<br />
Photo N.Contet-Audonneau<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
51
Examen direct/histopathologie<br />
Photos N. Contet-Audonneau<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
Scopulariopsis<br />
brevicaulis<br />
52
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Association Dermatophyte (T.rubrum)<br />
et Scopulariopsis brevicaulis<br />
Photo Pierrard GE<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
53
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Noir Chlorazol<br />
Photo N.Contet-Audonneau<br />
Aspergillus spp<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
54
3-Critères histologiques<br />
▪ Biopsie de l’ongle colorée au<br />
PAS ou Grocott<br />
observation de la<br />
morphologie des éléments<br />
fongiques et du mode<br />
d’attaque de l’ongle →<br />
différenciation<br />
moisissures/dermatophytes<br />
Reste difficile<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 55<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Trichophyton rubrum<br />
Photo R. Baran<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 56<br />
2011
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Onychocola canadensis<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
57
▪Intérêt des boîtes<br />
4-Critères culturaux<br />
-2 milieux dont un avec<br />
Actidione ®<br />
-Présence de la même<br />
moisissure à plusieurs<br />
points d’ensemencement<br />
¾ des inocula sur la même<br />
boîte *<br />
*English MP . Nails and fungi. Br J<br />
Dermatol 1976<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 58<br />
2011
4-Renouveler le prélèvement*<br />
ANAES ANAES<br />
*English MP . Nails and fungi. Br J<br />
Dermatol 1976<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 59<br />
2011
Interprétation des résultats<br />
• Moisissure associée<br />
à un dermatophyte<br />
• Moisissure seule en<br />
cause<br />
• Encas de doute :<br />
Refaire le prélèvement<br />
• Dermatophyte isolé en<br />
culture, associé à une<br />
moisissures<br />
→ Traiter le<br />
dermatophyte en<br />
priorité<br />
• Moisissure en culture<br />
pure , et direct et/ou<br />
histologie +<br />
→Traiter la moisissure<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 60<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Traitement des onyxis à<br />
moisissures<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 61<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Au préalable<br />
-Découpe de toutes les tablettes décollées<br />
-Meulage et curetage des zones malades par un<br />
pédicure ou une personne de l’entourage<br />
- Onycholyse chimique :<br />
Bifonazole-urée (Amycor-Onychoset® ) à 40% sous<br />
pansement occlusif<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
→ Se débarrasser au maximum de<br />
la kératine unguéale parasitée<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
62
Démarche thérapeutique<br />
Traitement difficile et long , thérapeutique pas codifiée, pas de<br />
consensus !!<br />
1- absence d’atteinte matricielle →<br />
traitement local seul<br />
▪Mycoster® = ciclopirox<br />
actif sur les Aspergillus, F. oxysporum et S. brevicaulis<br />
vernis à usage quotidien sur tous les ongles<br />
▪Locéryl® = amorolfine<br />
large spectre, +/- actif sur les mêmes moisissures<br />
solution filmogène, application 1 fois par semaine sur les<br />
ongles atteints<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Tosti A. et al. J Acad Dermatol 2000; 42: 217-24<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
63
Démarche thérapeutique, suite<br />
▪Amycor onychoset® :pour toutes les moisissures<br />
association bifonazole (imidazolé) + urée<br />
avulsion chimique de l’ongle<br />
Le traitement local en général efficace pour les<br />
onyxis à S. brevicaulis, Fusarium et Acremonium<br />
Dans tous les cas il faut enlever le maximum d’ongle<br />
pathologique ( pédicure )<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 64<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
2- Avec atteinte matricielle →<br />
associer un traitement per os<br />
-Nizoral® = kétoconazole. Si les fonctions hépatiques sont bonnes , mais<br />
résultats variables .<br />
-Sporanox® = itraconazole en pulse-thérapie (200mg/j une S/mois )<br />
parfois efficace sur les Aspergillus, Fusarium , Scytalidium,<br />
Scopulariopsis, et Alternaria mais pas d’AMM en France pour les<br />
onychomycoses (De Doncker P. et al. Acad Dermatol 1997)<br />
-Lamisil® = terbinafine : active aussi sur ces champignons , surtout sur<br />
les Aspergillus ,1 cp à 250 mg/jour, 3 à 6 mois pour l’onyxis des orteils<br />
- 6 semaines à 3 mois pour les doigts. ( Nolting S. et al. Brit J Dermatol. 1994 )<br />
(Arenas R. et al. Inter J Dermatol 1995)<br />
- Noxafil ®= posaconazole : actif sur la plus part des moisissures “in<br />
vitro”, mais pas de recul clinique suffisant<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 65<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
Traitement des<br />
« pseudodermatophytes »<br />
Neoscytalidium sp Amorolfine parfois efficace<br />
Onychocola canadensis<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
Amphotéricine B<br />
Posaconazole actif « in vitro »<br />
J. Dunand et A. Paugam Pathologie<br />
Biologie, 2008, 56: 268_72<br />
Itraconazole parfois actif<br />
Ann Dermatol Venereol<br />
,2006,133, 4:380-82<br />
Localement :bifonazol-urée<br />
ou Amorilfine ( Loceryl®<br />
66
Prévention des rechutes<br />
▪Poudre antifongique dans les chaussures (1 / s ),<br />
chaussettes en coton,..<br />
▪Facteurs mécaniques :mise en place d’une orthèse<br />
(élastomère, silicones )pour éviter les phénomènes de<br />
chevauchements (malposition des orteils )<br />
▪Facteurs environnementaux (sols de douches de<br />
piscines, tatamis) : nettoyage des tapis, carrelages<br />
(hypochlorite de sodium à 7%),<br />
▪Facteurs individuels : hygiène , toilette soigneuse après<br />
le bain , stérilisation des chaussettes (ébullition), éviter<br />
de marcher directement pieds nus (piscines ,<br />
gymnases)<br />
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
67
Conclusion<br />
▪Onyxis à moisissures: fréquence mal connue,<br />
surtout sujet âgé<br />
▪Difficile de distinguer colonisation/parasitisme<br />
▪ Distinguer aussi les « pseudo dermatophytes des<br />
autres moisissures<br />
▪Diagnostic difficile → intérêt de l’examen histo- histopathologique<br />
et en cas de doute refaire le<br />
prélèvement<br />
▪Diagnostic mycologique nécessaire car traitement<br />
selon l’espèce en cause<br />
D. <strong>Chabasse</strong> 68<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011
D. <strong>Chabasse</strong><br />
Merci pour votre attention !!<br />
Microbiologie Clinique-Paris-21 Janvier<br />
2011<br />
69
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