BIOLOGIE CLINIQUE
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• Sans coloration : Corps piriforme de 10 µm possédant une membrane ondulante tout le long du<br />
corps et un flagelle postérieur. Grande mobilité par mouvements saccadés.<br />
• Après MGG : forme variable, du fuseau à un rond. On distingue la membrane ondulante, un gros<br />
noyau antérieur, 3-5 flagelles antérieurs libres et un flagelle postérieur. Axostyle antéro-postérieur<br />
réfringent.<br />
Traitement habituel / évolution / contrôles d’efficacité :<br />
On utilise le métronidazole 1 g/j pendant 5 jours.<br />
DIAGNOSTIC D'UNE TRYPANOSOMIASE HUMAINE AFRICAINE<br />
Épidémiologie : maladie due à la piqûre d'une glossine. Aussi appelée maladie du sommeil<br />
(à tort). Même genre de cycle que pour les leishmanioses.<br />
Glossine : vecteur de la trypanosomiase.<br />
Clinique : incubation de quelques jours à plusieurs années.<br />
• Invasion phase lymphatico-sanguine : dissémination du parasite à tout le système<br />
réticulo-histiocytaire : adénopathies, splénomégalie, hépatomégalie.<br />
• Évolution : phase méningo-encéphalitique (polarisation cérébrale) : troubles sensitifs et moteurs,<br />
troubles du comportement, inversion des nyctémères. Leuco-encéphalite démyèlinisante.<br />
• Maladie constamment mortelle en l'absence de traitement. La forme d'Afrique de l'Ouest a une<br />
évolution plus chronique que la forme est-africaine, beaucoup plus aiguë, mortelle en 3 à 6 mois.<br />
Zone d'endémie : strictement africaine<br />
• T. gambiense : forêts d'Afrique de l'Ouest et d'Afrique centrale ( zone formant un triangle : Sénégal -<br />
-Soudan -- Angola -- Sénégal)<br />
• T. rhodesiense : savanes d'Afrique de l'Est (Éthiopie, Botswana et Mozambique)<br />
Prélèvement, traitement du prélèvement :<br />
Recherche simple dans le sang :<br />
• Prélèvement de sang capillaire (utiliser la première goutte,<br />
la plus riche en trypanosomes) puis examen entre lame et<br />
lamelle à l'objectif 40. Il faut veiller à mettre la bonne<br />
quantité de sang : si on en met trop, les hématies occupent<br />
toute la place, si on en met pas assez, le poids de la lamelle<br />
empêche les trypanosomes de bouger.<br />
• On observe des organismes fusiformes polymorphes 20 X 3<br />
µm se déplaçant rapidement en faisant bouger les<br />
hématies.<br />
• En cas d'examen négatif, il faut recommencer 3 jours de<br />
suite.<br />
• On peut aussi réaliser un frottis mince que l'on colore<br />
ensuite au MGG ou au Giemsa (photographie :<br />
trypanosomes sur un frottis coloré au Giemsa) On obtient une meilleure morphologie (cytoplasme<br />
bleuté, noyau central et kinétoplasme rouges), mais on a moins de chance de retrouver le<br />
trypanosome si la parasitémie est faible.<br />
• On peut encore réaliser une goutte épaisse pour concentrer le sang, cependant, il y a beaucoup<br />
d'artefacts et la morphologie des trypanosomes est altérée.<br />
Recherche dans le sang en utilisation la méthode de concentration de Wood :<br />
Recherche dans le suc de prélèvement d'un ganglion<br />
Pendant la phase nerveuse de la maladie, on peut rechercher les trypanosomes dans le LCR après<br />
centrifugation et examen du culot entre lame et lamelle, une coloration au MGG est aussi possible après<br />
étalement mince du culot. En effet, les trypanosomes sont souvent absents du sang ou des ganglions à ce<br />
stade de la maladie.<br />
La recherche dans la moelle osseuse n'est pas facile, le prélèvement est de plus difficile.