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Ecologie des foraminifères planctoniques du golfe de Gascogne ...

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tel-00480660, version 1 - 4 May 2010<br />

40<br />

3.2. Au laboratoire<br />

Les pots <strong>de</strong> 250 ml, contenant l’échantillon coloré au Rose Bengal et conservé dans l’alcool<br />

furent passés sur une colonne <strong>de</strong> tamis <strong>de</strong> 315 µm, 150 µm et 100 µm sous un filet d'eau. Le<br />

<strong>de</strong>rnier tamis <strong>de</strong> la colonne (100 µm) fut utilisé en raison <strong>de</strong> la taille <strong><strong>de</strong>s</strong> mailles <strong><strong>de</strong>s</strong> filets à<br />

plancton également <strong>de</strong> 100 µm, nous permettant <strong>de</strong> récupérer l’intégralité <strong><strong>de</strong>s</strong> spécimens<br />

échantillonnés. Les refus <strong><strong>de</strong>s</strong> tamis nous permettent <strong>de</strong> différencier trois gammes <strong>de</strong> tailles<br />

100-150 µm, 150-315µm et >315µm. Le tamis <strong>de</strong> 315 µm n’a pas été utilisé pour le<br />

traitement <strong><strong>de</strong>s</strong> échantillons <strong>de</strong> la mission PECH 1, seuls les tamis 100 µm et 150 µm ont été<br />

utilisés. Une fois les refus <strong>de</strong> tamis récupérés, les différentes fractions furent stockées dans <strong>de</strong><br />

l’alcool à 95% avant d’effectuer le piquage.<br />

Les échantillons, subdivisés en trois fractions provenant <strong><strong>de</strong>s</strong> refus <strong>de</strong> chacun <strong><strong>de</strong>s</strong> tamis, furent<br />

transvasées dans un bécher <strong>de</strong> 6 cm <strong>de</strong> diamètre et 3,5 cm <strong>de</strong> haut, avec un bec. Puis, par<br />

rotation légère <strong>du</strong> bécher, les tests <strong>de</strong> <strong>foraminifères</strong>, gastéropo<strong><strong>de</strong>s</strong> et lamellibranches se<br />

réunissent par différence <strong>de</strong> <strong>de</strong>nsité vers le centre <strong>du</strong> bécher, contrairement aux copépo<strong><strong>de</strong>s</strong><br />

allant plus vers les bords. Chacune <strong><strong>de</strong>s</strong> fractions fut piquée humi<strong>de</strong> sous alcool, avec port <strong>de</strong><br />

masque, à l’ai<strong>de</strong> d’un pinceau sous une loupe binoculaire Leica © (Figure I-15).<br />

Figure I-15: Port <strong>du</strong> masque lors <strong>du</strong> piquage <strong><strong>de</strong>s</strong> échantillons sous alcool.<br />

Les spécimens vivants et morts furent distingués à ce sta<strong>de</strong> et positionnés dans <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules<br />

Chapman à fond noir.<br />

Le Rose Bengal est le colorant le plus communément utilisé pour distinguer les spécimens <strong>de</strong><br />

<strong>foraminifères</strong> vivants (Walton, 1952 ; Bernhard, 2000). Une dégradation lente <strong>de</strong> la matière<br />

organique <strong><strong>de</strong>s</strong> <strong>foraminifères</strong> <strong>planctoniques</strong> peut entrainer une coloration au Rose Bengal <strong>de</strong><br />

<strong>foraminifères</strong> récemment morts (Bernhard, 1988 ; Hannah et Rogerson, 1997 ; Bernhard,<br />

2000). Il est donc possible que la quantité <strong>de</strong> <strong>foraminifères</strong> morts soit sous-estimée et<br />

inversement pour les spécimens vivants. Prenant compte <strong>de</strong> ce problème, seul les spécimens<br />

manifestement bien colorés et aux cytoplasmes intérieurs bien développés furent considérés<br />

comme vivants (Figure I-15).

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