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Influence de facteurs biotiques et abiotiques, induits et ... - IRD

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* Electrophorèse : les échantillons sont déposés dans les puits d'un gel <strong>de</strong><br />

polyacrylami<strong>de</strong> à 12 %, chaque puits correspond à une piste; la migration<br />

est réalisée en 5 heures à voltage constant (15 mn à 80 V puis à 180 V).<br />

Le gel <strong>de</strong> polyacrylami<strong>de</strong> est découpé en <strong>de</strong>ux selon son épaisseur. Une<br />

moitié sera colorée au bleu <strong>de</strong> Coomassie pour servir <strong>de</strong> témoin <strong>de</strong><br />

migration. L'autre moitié va servir au transfert.<br />

* Electrotransfert : la feuille <strong>de</strong> polyacrylami<strong>de</strong> est déposée sur un film<br />

<strong>de</strong> nitrocellulose; le transfert se fait par champ électrique (30 V, une<br />

nuit) en tampon tris glycérine pH 8,3, SDS 0,1 %, méthanol 20 %.<br />

* ImmunodétectioD : le gel est découpé afin <strong>de</strong> séparer les pistes ; celle<br />

qui comprend les marqueurs <strong>de</strong> P.M. est colorée au noir amido ; <strong>de</strong>ux<br />

autres ban<strong>de</strong>s sont traitées avec <strong>de</strong>s immunsérums :<br />

ban<strong>de</strong> S : immunsérum <strong>de</strong> souris anti-toxine brute (protéine<br />

native), dilué au 1/1 oooe<br />

ban<strong>de</strong> L : immunsérum <strong>de</strong> lapin anti-fraction 38 kD <strong>de</strong> la toxine <strong>de</strong><br />

B. sphaericus souche 2775 (anti-protéine dénaturée), dilué au<br />

1/1000 e .<br />

Un conjugué (IgG <strong>de</strong> chèvre anti-Iapin ou IgG <strong>de</strong> mouton antisouris)<br />

marqué à la peroxydase est ensuite appliqué. La coloration est<br />

révélée par 0,5 % <strong>de</strong> diaminobenzidine en solution à 0,1 % <strong>de</strong> peroxy<strong>de</strong><br />

d'hydrogène.

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