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tamis inférieur (63 microns) arrète les foraminifères planctoniques, les foraminifères
benthiques et la majorité des ostracodes. C'est le refus qui a servi de base essentielle à ce
travail.
Les refus sont séchés à l'étuve ou à l'air libre avant d'ètre triés à l'aide d'une aiguille
montée ou d'un pinceau très fin sous une loupe binoculaire. Les foraminifères et les ostracodes
ont été placés dans deux cellules différentes chaque fois qu'ils étaient présents dans le mème
échantillon. Un nombre moyen de 300 à 350 individus de chaque groupe a été trié par
échantillon lorsque la microfaune était suftlsamment riche. Lorsque la microfaune était très
rare, je procédais à un nouveau lavage et tri de l'échantillon restant. Le tri de la microfaune est
accompagné de fiches de tri pour chaque échantillon, fiches sur lesquelles est décrit le refus et
sont mentionnés les microtàunes rencontrées, les débris de macrofaune et leur abondance
relative.
2.2. Détermination. coloration et photographie des espèces
Compte tenu de la mauvaise préservation des microfossiles (recristallisation,
encroûtement du sédiment), la détermination des ostracodes et des foraminifères n'a pas été
aisée. Cela nous a conduit parfois à les faire nettoyer aux ultrasons. Les espèces déterminées
et le nombre d'individus correspondant à chacune d'elles ont été portés sur une fiche de
détermination accompagnant chaque cellule.
Pour les ostracodes, j'ai eu recours à la technique de coloration au vert malachite dilué
à l'alcool éthylique à 95°, ce qui facilite l'observation de l'ornementation fine.
Les observations optiques ont été réalisées à l'aide d'une loupe binoculaire "WILD" à
des grossissements allant de 10 à 40 fois. Une observation plus fine a été effectuée au
microscope électronique à balayage, suivie de la photographie de la quasi-totalité des espèces
d'ostracodes identifiées et de la majorité des espèces de foraminifères rencontrées. Dans la
plupart des cas, chaque taxon est photographié sur plusieurs faces ou côtés. Les microscopes à
balayage utilisés sont:
- celui de l'Université Claude-Bernard (Lyon 1, France);
- celui de l'Institut et du Musée de Géologie et de Paléontologie de l'Université de
Tübingen (Allemagne);
- celui du Département de Biologie Animale de la Faculté des Sciences et Techniques
de Dakar (JEOL JSM-35CF).
2.3. Collections consultées
Seule la collection d'ostracodes du Paléogène de Casamance et de Guinée Bissau du
Professeur G. CARB01\TNEL a été en grande partie consultée. L'indication v. (= vu) précède
la mention de la synonymie des espèces correspondantes dans l'étude taxinomique réalisée.
J'ai aussi consulté la collection d'ostracodes du Paléogène d'Egypte du Professeur A
LŒBAU de l'Uruversité de Tübingen, bien qu'aucune des espèces n'y soit identique aux
rnJennes.
Bien que n'ayant pas consulté la collection de V. APOSTOLESCU, les échantillons
triés du Paléocène des sondages de Bagana, Fadial, Keur Yoro, Léona, Mbassis, Mbodiène,
Ndofane, et de la falaise de Poponguine ont été envoyés à cet auteur qui a aimablement fait les
déterminations, ce qui m'a procuré au départ une petite collection de référence.
Enfin le Professeur R. A REYMENT, a bien voulu observer et faire des remarques sur
les clichés envoyés d'espèces qu'il a décrites au Nigéria: Buntonia apatayeriyerii, Bythocypris
a/ejo, B. olaredodui, Jorubaella ologuni, Paracypris sokotoensis et Schizocythere·'cf.