Page 1 E N G LIS H D E U T S C H ITA LIA N O F R A N Ç A IS E S P ...
Page 1 E N G LIS H D E U T S C H ITA LIA N O F R A N Ç A IS E S P ...
Page 1 E N G LIS H D E U T S C H ITA LIA N O F R A N Ç A IS E S P ...
You also want an ePaper? Increase the reach of your titles
YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.
��� ��� ���<br />
����� ��� ��� ���<br />
�������<br />
An enzyme immunoassay for the<br />
quantitation of bone-specific alkaline<br />
phosphatase (BAP) in human serum<br />
Enzym-Immunassay zur Quantifizierung<br />
knochenspezifischer alkalischer<br />
Phosphatase (BAP) in Humanserum<br />
Saggio immunoenzimatico per la<br />
quantizzazione della fosfatasi alcalina<br />
osso-specifica (BAP) nel siero umano<br />
Un essai immunoenzymatique servant<br />
quantifier la phosphatase alcaline<br />
d’origine osseuse dans le sérum humain.<br />
Enzimoinmunoanálisis para la<br />
cuantificación de la fosfatasa<br />
alcalina específica de los huesos<br />
(Bone-specific Alkaline Phosphatase-BAP)<br />
en el suero humano<br />
Um imunoensaio enzimático para medir<br />
a fosfatase alcalina específica do osso<br />
(BAP) no soro humano<br />
Et enzym immunoassay til kvanticering<br />
af knoglespecifik alkalisk fosfatase<br />
(BAP) i humant serum.<br />
Enzymimmunoanalys för kvantitering<br />
av benspecifikt alkaliskt fosfatas<br />
(BAP) i mänskligt serum<br />
Ανοσοπροσδιορισμός ενζύμου για<br />
ποσοτικό προσδιορισμό της ειδικής<br />
για τα οστά αλκαλικής φωσφατάσης<br />
(BAP) στον ανθρώπινο ορό<br />
������� ������� �������� �������� ������� ��������� ����� �������
QUICK GUIDE TO ASSAY STEPS<br />
1. Add 125 µL Assay Buffer.<br />
2. Add 20 µL Standards, Controls, and samples; swirl.<br />
3. Incubate 3 hours ± 10 minutes at 20–28°C.<br />
4. Wash 4 times with 1X Wash Buffer.<br />
5. Add 150 µL 20–28°C Working Substrate Solution.<br />
6. Incubate 30 ± 5 minutes at 20–28°C.<br />
7. Add 100 µL Stop Solution and read optical density at 405 nm.<br />
INTENDED USE<br />
The Metra BAP immunoassay provides a quantitative measure of bone-specific alkaline phosphatase (BAP) activity in serum as an<br />
indicator of osteoblastic activity. Measurement of BAP is intended for use as an aid in the:<br />
� management of postmenopausal osteoporosis and <strong>Page</strong>t’s disease;<br />
� monitoring of postmenopausal women on hormonal or bisphosphonate therapy;<br />
� prediction of skeletal response to hormonal therapy in postmenopausal women.<br />
SUMMARY AND EXPLANATION<br />
The skeletal, or bone-specific, isoform of alkaline phosphatase is a tetrameric glycoprotein found on the cell surface of osteoblasts. 1<br />
Osteoblasts are the cells responsible for synthesis of new bone matrix and its mineralization. The function of BAP has not been fully<br />
elucidated, though its role in skeletal mineralization has been confirmed. 1,2,3<br />
Bone is constantly undergoing a metabolic process called remodeling. 3,4 This includes a degradation process, bone resorption,<br />
mediated by the action of osteoclasts, and a building process, bone formation, mediated by the action of osteoblasts. 3,4 Remodeling<br />
is required for the maintenance and overall health of bone and is tightly coupled; that is, resorption and formation are in balance. 3,4<br />
In abnormal states of bone metabolism this process becomes uncoupled and, when resorption exceeds formation, this results in a<br />
net loss of bone which can lead to osteoporosis, 3,4 or to the disordered bone tissue of pagetic lesions. 5 The measurement of specific<br />
biochemical markers of these remodeling events provides analytical data regarding the rate of bone metabolism or “turnover”. 3,4<br />
Osteoporosis is a metabolic bone disease characterized by abnormal bone remodeling. It is a systemic skeletal disease characterized<br />
by low bone mass and microarchitectural deterioration of bone tissue, with a consequent increase in susceptibility to fractures. 6<br />
The most common type of osteoporosis occurs in postmenopausal women as a result of the estrogen deficiency produced by<br />
the cessation of ovarian function. 3 Restoration of premenopausal estrogen levels by replacement therapy prevents bone loss and<br />
osteoporosis. 3,6 Estrogens and a class of compounds known as bisphosphonates are antiresorptive therapies which can be used to<br />
prevent bone loss or treat osteoporosis. 3,6,7<br />
Osteoporosis can also result from attaining an inadequate peak bone mass during the growing years, an age-related imbalance of<br />
bone remodeling with a net excess of resorption, and a number of clinical conditions and therapies which induce bone loss or bone<br />
remodeling imbalances. 3 These include endocrine diseases such as hypogonadism, hyperthyroidism, hyperparathyroidism, and<br />
hypercortisolism; renal failure; cancers metastatic to bone; gastrointestinal diseases related to nutrition and mineral metabolism;<br />
connective tissue diseases; multiple myeloma; chronic immobilization, alcoholism, or tobacco use; and chronic therapy with heparin<br />
or corticosteroids. 3<br />
<strong>Page</strong>t’s disease of bone is a focal disorder resulting in pain and skeletal deformity in symptomatic patients. 5 <strong>Page</strong>tic lesions are<br />
characterized by bone matrix of highly abnormal structure arising from excessive rates of remodeling activity. The lesions occur<br />
predominantly in the skull, spine, pelvis and long bones, and can result in fractures and neurological impairment. 5 The etiology of<br />
<strong>Page</strong>t’s disease is unknown but hypotheses involving genetic and viral factors are compelling. 5 Bisphosphonates and calcitonin are<br />
currently used to suppress the high rate of biochemical activity to normal levels, enabling restoration of normal bone structure. 9<br />
As a quantitative measure of a marker of bone turnover, BAP provides useful information on bone remodeling in osteoporosis<br />
and <strong>Page</strong>t’s disease, and changes in disease activity produced by antiresorptive therapy. 10-12 For the Metra BAP assay, antibody<br />
technology was employed to produce a monoclonal antibody that demonstrates specificity for BAP. 10 The specificity of the<br />
monoclonal antibody used in the assay allows for simple, convenient, reproducible and direct quantitation of BAP activity in serum.<br />
PRINCIPLE OF THE PROCEDURE<br />
Metra BAP is an immunoassay in a microtiter strip format utilizing a monoclonal anti-BAP antibody coated on the strip to capture<br />
BAP in the sample. The enzyme activity of the captured BAP is detected with a pNPP substrate.<br />
REAGENTS AND MATERIALS PROVIDED<br />
96 Assays for Bone-specific Alkaline Phosphatase<br />
Metra BAP EIA contains the following:<br />
A BAP Standards A - F Parts 4395 through 4400 0.3 mL each<br />
B (A = 0, B = 2, C = 20, D = 50, E = 80, F = 140 U/L BAP)<br />
C BAP purified from osteosarcoma SAOS-2 cells in a buffered solution containing magnesium chloride,<br />
D zinc sulfate, surfactant, carrier protein, blue dye, and sodium azide (0.05%) as a preservative.<br />
E<br />
F<br />
L Low/High Controls Parts 4401, 4402 0.3 mL each<br />
H BAP purified from osteosarcoma SAOS-2 cells in a buffered solution containing magnesium chloride, zinc sulfate, surfactant,<br />
carrier protein, blue dye, and sodium azide (0.05%) as a preservative.<br />
1<br />
ENG<strong>L<strong>IS</strong></strong>H
q Coated Strips Part 4660 12 each<br />
Purified murine monoclonal Anti-BAP IgG antibody adsorbed onto stripwells.<br />
w Stop Solution Part 4702 15 mL<br />
0.5N NaOH<br />
e 10X Wash Buffer Part 4703 55 mL<br />
Nonionic detergent in a buffered solution containing sodium azide (0.05%) as a preservative.<br />
r Assay Buffer Part 4403 27 mL<br />
A buffered solution containing magnesium chloride, zinc sulfate, surfactant, and sodium azide (0.05%) as a preservative.<br />
t Substrate Buffer Part 4404 3 x 10 mL<br />
A 2-amino-2-methyl-1-propanol solution containing HEDTA, magnesium chloride, zinc sulfate, and sodium azide (0.05%)<br />
as a preservative.<br />
y Substrate Tablets Part 0012 3 x 20 mg<br />
p-Nitrophenyl phosphate<br />
MATERIALS REQUIRED BUT NOT PROVIDED<br />
Micropipettes to deliver 20 µL and 100–300 µL<br />
Items suitable for liquid measurement of 100–300 mL<br />
Container for wash buffer dilution<br />
Deionized or distilled water<br />
Plate reader capable of Optical Density readings at A405 > 2.0<br />
Quadratic calibration curve fitting software<br />
WARNINGS AND PRECAUTIONS<br />
1. For In Vitro Diagnostic Use.<br />
2. Treat specimen samples as potentially biohazardous material. Follow Universal Precautions when handling contents of this kit<br />
and any patient samples.<br />
3. Dispose of containers and unused contents in accordance with Federal, State and Local regulatory requirements.<br />
4. Use the supplied reagents as an integral unit prior to the expiration date indicated on the package label.<br />
5. Store assay reagents as indicated.<br />
6. Do not use Coated Strips if pouch is punctured.<br />
7. Test each sample in duplicate.<br />
8. 0.5N NaOH is considered corrosive and can cause severe burns. Do not ingest. Avoid contact with skin, eyes or clothing. If contact<br />
is made, wash with water. If ingested, call a physician.<br />
9. Sodium azide is used as a preservative. Incidental contact with or ingestion of buffers containing sodium azide may cause<br />
irritation to the skin, eyes, or mouth. Only use buffers for intended purposes and avoid contact with acids. Sodium azide may<br />
react with lead and copper plumbing to form highly explosive metal azides. Upon disposal, flush with a large volume of water<br />
to prevent azide build-up.<br />
10. The substrate buffer contains 2-amino-2-methyl-1-propanol and may cause irritation to the eyes and/or skin with prolonged<br />
contact. Wear suitable protective clothing, gloves, and eye/face protection. Contacted areas should be immediately washed with<br />
soap and water.<br />
11. Use of multichannel pipets or repeat pipetors is recommended to ensure timely delivery of reagents.<br />
12. For accurate measurement of samples, add samples and standards precisely. Pipet carefully using only calibrated equipment.<br />
13. Dilute samples greater than 140 U/L in Assay Buffer and retest. Include the dilution factor in the final calculation.<br />
14. This assay may be performed with any validated washing method.<br />
REAGENT PREPARATION<br />
Bring reagents and materials for the assay to 20–28°C before use. After removing the needed reagents<br />
and materials, return unused items to 2–8°C.<br />
Coated Strips<br />
Remove Stripwell Frame and the required number of Coated Strips from the pouch (See table in ASSAY PROCEDURE Section).<br />
Ensure that the pouch containing any unused strips is completely resealed.<br />
Wash Buffer<br />
Prepare required amount of 1X Wash Buffer (see table) by diluting 10X Wash Buffer concentrate 1:10 with deionized water.<br />
Store at 20–28°C. Use 1X Wash Buffer within 21 days of preparation.<br />
Working Substrate Solution<br />
Prepare Working Substrate Solution within 1 hour of use. Put one Substrate Tablet into each required bottle of 20–28°C Substrate<br />
Buffer (see table). Allow 30-60 minutes for tablet(s) to dissolve. Vigorously shake bottle(s) to completely mix. Discard remaining<br />
Working Substrate Solution after use.<br />
2
STORAGE<br />
Store kit at 2–8°C. Do not freeze. Store unused reagents at 2–8°C. Equilibrate reagents to 20–28°C before use.<br />
Store 1X Wash Buffer (10X diluted) at 20–28°C.<br />
SPECIMEN COLLECTION AND STORAGE<br />
Collect serum using standard venipuncture technique. Specimens should be collected without anticoagulants and in such a way<br />
to avoid hemolysis. Allow the blood to clot and separate the serum by centrifugation. Serum can be stored for 5 days at 2–8°C,<br />
at ≤ -40°C for 12 months, or at ≤ -80°C for 36 months. Do not subject samples to more than 3 freeze/thaw cycles.<br />
“Off the clot” serum, serum separator tube serum, Na heparin plasma, and Li heparin plasma yield substantially equivalent results.<br />
It is recommended that plasma samples not be prepared using chelating agents such as EDTA or citrate.<br />
ASSAY PROCEDURE<br />
Read entire product insert before beginning the assay.<br />
See REAGENT PREPARATION before proceeding.<br />
Determine amount of each reagent required for the number of strips to be used.<br />
# of Strips 4 6 8 12<br />
# of Samples (tested in duplicate) 8 16 24 40<br />
Substrate (bottle) 1 1 2* 2*<br />
1X Wash Buffer (mL) 100 150 200 300<br />
*When more than one bottle or vial is to be used, combine the contents and mix prior to use.<br />
Sample Incubation<br />
1. Remove Stripwell Frame and the required number of Coated Strips from the pouch (see table) just prior to use. Ensure that the<br />
foil pouch containing any unused strips is completely resealed.<br />
2. Place desired number of Coated Strips in the Stripwell Frame. Label strips to prevent mix-up in case of accidental removal from<br />
Stripwell Frame.<br />
3. Add 125 µL Assay Buffer to each well.<br />
4. Add 20 µL of Standard, Control or sample to each well. Do not mix with Assay Buffer by repeat pipetting. This step should be<br />
completed within 30 minutes. Gently swirl strips to ensure mixing of sample and buffer.<br />
5. Incubate for 3 hours (± 10 minutes) at 20–28°C.<br />
6. Prepare Working Substrate Solution within 1 hour of use. Put one Substrate Tablet into each required bottle of 20–28°C Substrate<br />
Buffer (see table). Allow 30–60 minutes for tablet(s) to dissolve. Vigorously shake bottle(s) to completely mix.<br />
Washing Step<br />
7. Prepare required amount of 1X Wash Buffer (see table) by diluting 10X Wash Buffer 1:10 with deionized water. Store at 20–28°C.<br />
Use 1X Wash Buffer within 21 days of preparation.<br />
8. Manually invert/empty strips. Add at least 250 µL of 1X Wash Buffer to each well and manually invert/empty strips. Repeat three<br />
more times for a total of four washes. Vigorously blot the strips dry on paper towels after the last wash.<br />
Substrate Incubation<br />
9. Add 150 µL of Working Substrate Solution to each well. Discard remaining Working Substrate Solution after use.<br />
10. Incubate for 30 minutes (± 5 minutes) at 20–28°C.<br />
Stop/Read<br />
11. Add 100 µL of Stop Solution to each well. Add Stop Solution in the same pattern and time intervals as the Substrate Solution<br />
addition.<br />
12. Read the optical density at 405 nm. Assure that no large bubbles are present in the wells and that the bottoms of the strips are<br />
clean. Strips should be read within 15 minutes of Stop Solution addition.<br />
13. Quantitation software with a quadratic calibration curve fitting equation must be used to analyze the Metra BAP assay results.<br />
Equation: y = A + Bx + Cx 2<br />
QUALITY CONTROL<br />
The Certificate of Analysis included in this kit is lot specific and is to be used to verify that the results obtained by your laboratory<br />
are similar to those obtained at Quidel. The optical density values are provided and are to be used as a guideline only. The results<br />
obtained by your laboratory may differ.<br />
Quality control ranges are provided. The control values are intended to verify the validity of the curve and sample results. Each<br />
laboratory should establish its own parameters for acceptable assay limits. If the control values are NOT within your laboratory’s<br />
acceptance limits, the assay results should be considered questionable and the samples should be repeated.<br />
If the optical density of the Metra BAP Standard F is less than 1.0, the results should be considered questionable and the samples<br />
should be repeated.<br />
INTERPRETATION OF RESULTS<br />
Sample results are expressed as U/L and do not need to be corrected for dilution (unless sample was diluted prior to testing).<br />
In the Metra BAP assay, 1 Unit represents 1 µmol of pNPP hydrolyzed per minute at 25°C in 2-amino-2-methyl-1-propanol buffer.<br />
3<br />
ENG<strong>L<strong>IS</strong></strong>H
Representative Standard Curve<br />
Standard BAP levels: 0, 2, 20, 50, 80, 140 U/L<br />
LIM<strong>ITA</strong>TIONS OF THE PROCEDURE<br />
HAMA Interference<br />
Some individuals have antibodies to mouse antibodies (HAMA), which can cause interference in immunoassays that employ<br />
antibodies derived from mice. In particular, it has been reported that serum samples from patients who have undergone therapy or<br />
diagnostic procedures that include infusion of mouse monoclonal antibody may produce erroneous results. Therefore, Metra BAP<br />
results for such patients should be used only in conjunction with results from some other diagnostic procedure and with information<br />
available from the clinical evaluation of the patient.<br />
Samples with significant elevations of liver alkaline phosphatase activity may cause aberrantly elevated results in the Metra BAP assay.<br />
<strong>Page</strong>t’s patients who have low levels of disease may have bone-specific alkaline phosphatase levels that fall within the Metra BAP<br />
reference range.<br />
SAMPLE VALUES<br />
BAP reference ranges have been established for normal males over 25 years of age (n = 126), normal premenopausal females<br />
between the ages of 25 and 44 (n = 178), and normal postmenopausal females (n = 107). For the purposes of establishing<br />
reference ranges, normal subjects were defined as:<br />
� Basically healthy, no bone, endocrine or chronic disorders<br />
� Regular menstrual cycles (premenopausal females)<br />
� Not pregnant or breast feeding (females)<br />
� Not currently taking any medication known to influence bone metabolism<br />
Values may be influenced by such factors as low estrogen production, low calcium intake or low physical activity. 8 Estrogen<br />
deficiency in postmenopausal women can result in elevated bone turnover. 3,4 Each laboratory should establish its own normal<br />
reference range. The ranges are expressed as nonparametric reference intervals (90% CI).<br />
4<br />
Optical Density (405 nm)<br />
3.0<br />
2.0<br />
1.0<br />
Age (Yr) Range (U/L) Median<br />
Females 25 - 44 Premenopausal 11.6 - 29.6 18.3<br />
Females ≥ 45 Postmenopausal 14.2 - 42.7 25.0<br />
Males ≥ 25 15.0 - 41.3 23.2<br />
PERFORMANCE CHARACTER<strong>IS</strong>TICS<br />
Antibody Specifications<br />
The bone-specific alkaline phosphatase antibody has selective, high affinity for the bone-specific alkaline phosphatase isoform, low<br />
cross-reactivity to the liver form of alkaline phosphatase, and negligible binding of intestinal and placental isoenzymes.<br />
AP Isoenzyme % Reactivity<br />
Bone 100<br />
Liver 3 – 8<br />
Placental 0<br />
Intestine 0.4<br />
0.0<br />
0 25 50 75 100 125 150<br />
BAP (U/L)<br />
Sensitivity<br />
The minimum detection limit of the Metra BAP assay is 0.7 U/L, determined by the upper 3 SD limit in a zero standard precision study.<br />
Recovery - Spike Recovery<br />
Spike recovery was determined by adding a known quantity of purified BAP to serum samples with different levels of endogenous<br />
BAP. Typical results are provided after spiking serum samples with low, medium, and high concentrations of BAP and assaying in<br />
triplicate.
Endogenous (U/L) Added (U/L) Observed (U/L) Recovery (%)<br />
13.4 15.7 29.1 99<br />
17.6 37.5 55.3 99<br />
27.2 57.2 88.1 106<br />
Recovery - Linearity<br />
Linearity was determined by serially diluting samples and comparing observed values with expected values. Typical results are<br />
provided below.<br />
Sample Dilution Factor Observed (U/L) Expected (U/L) Recovery (%)<br />
1 neat 108.5 - -<br />
1:2 51.1 54.2 94<br />
1:4 25.8 27.1 99<br />
1:6 18.0 18.1 99<br />
2 neat 39.1 - -<br />
1:2 20.1 19.5 103<br />
1:4 10.3 9.8 105<br />
1:6 6.7 6.5 103<br />
3 neat 58.4 - -<br />
1:2 29.9 29.2 102<br />
1:4 15.7 14.6 108<br />
1:6 9.7 9.7 100<br />
Precision<br />
Within-run precision was determined for ≥ 21 replicates of 3 samples on 3 plates from each of 3 kit lots (9 plates total). Betweenrun<br />
precision was determined for 3 samples run in 6 separate plates from each of 3 kit lots (18 plates total). Typical results are<br />
provided below.<br />
BAP (U/L BAP) Within-run 1 CV% Between-run2 CV%<br />
12 5.8 5.2<br />
35 3.9 7.6<br />
100 5.2 5.0<br />
1 n=21<br />
2 n=6 runs<br />
Interfering Substances<br />
The following substances were tested at the specified concentrations, and were found not to interfere with the assay.<br />
Substance Concentration<br />
Hemoglobin 500 mg/dL<br />
Bilirubin 25 mg/dL<br />
Triglycerides 1420 mg/dL<br />
Total Protein 6.0 g/dL †<br />
Total Protein 15.6 g/dL†<br />
Total Protein 6.0 g/dL ‡<br />
Total Protein 15.6 g/dL‡<br />
† Protein with water<br />
‡ Protein with BAP (BAP concentration = 43.6 U/L)<br />
Drug Interferences<br />
Various concentrations of drugs were added to three separate serum pools containing approximately 35, 70, and 105 U/L BAP and<br />
assayed in triplicate. The drugs and the highest concentrations tested were:<br />
Substance Highest Concentration<br />
Etidronate 350 µg/mL<br />
Estrogen 100 µg/mL<br />
Ibuprofen 150 µg/mL<br />
Acetominophen 350 µg/mL<br />
Aspirin 350 µg/mL<br />
Calcitonin - Human 80 µg/mL<br />
Calcitonin - Salmon 80 µg/mL<br />
Calcium 500 µg/mL<br />
Norethindrone/ethynil estradiol mixture (oral contraceptive) 3 mg/mL<br />
Vitamin D 400 IU/mL<br />
5<br />
ENG<strong>L<strong>IS</strong></strong>H
Accuracy<br />
Comparative studies were performed to assess the correlations between measurements of serum bone-specific alkaline<br />
phosphatase (BAP) obtained using the Metra BAP assay to results obtained using three currently marketed methods for measuring<br />
total alkaline phosphatase (TAP) or BAP. The studies were conducted at an independent clinical investigational site, utilizing sera<br />
from 114 patients with <strong>Page</strong>t’s disease and 464 healthy subjects. The first comparative method was a colorimetric technique for the<br />
measurement of TAP. The correlation coefficient (r) obtained between this colorimetric method and the Metra BAP assay was 0.99.<br />
The second comparative method was an electrophoresis method for the determination of BAP isoenzyme levels (r = 0.99). The<br />
third comparative method was an immunoradiometric assay for the measurement of BAP (r = 0.99). Of the 114 patients diagnosed<br />
with <strong>Page</strong>t’s disease, 101 patients had values greater than the upper limit of the reference ranges for the Metra BAP assay. Thirteen<br />
patients had values less than the upper limit of the reference ranges.<br />
CLINICAL STUDIES<br />
Use of Metra BAP for Monitoring the Efficacy of Antiresorptive Therapy in Osteoporosis<br />
A multicenter, randomized controlled trial was successfully conducted to establish the safety and efficacy of the Metra BAP assay<br />
to monitor changes in serum BAP concentrations associated with amino-bisphosphonate (alendronate) antiresorptive therapy.<br />
Subjects, drawn from a larger study of the efficacy of alendronate for treating osteoporosis, 7 were postmenopausal women, aged<br />
45 to 84 years (mean 64 ± 7 years), diagnosed with osteoporosis (based on clinical presentation or baseline lumbar spine bone<br />
mineral density [LSBMD] more than 2.5 standard deviations below the mean for mature premenopausal women). At baseline,<br />
eligible subjects were randomized to receive either 10 mg alendronate and 500 mg calcium per day (ALN) or placebo and 500 mg<br />
calcium per day (CTL). Serum specimens were obtained at baseline, 3, 6 and 12 months from all subjects.<br />
Mean (± 1SD) baseline BAP concentration (14.6 ± 5.4 vs. 14.6 ± 4.6, p = 0.900) and LSBMD (0.74 ± 0.10 vs. 0.75 ± 0.09,<br />
p = 0.751) were similar values for ALN and CTL. Distributions of baseline BAP values in ALN and CTL are depicted in the following<br />
figure by proportion of the study population.<br />
6<br />
Proportion of Population (%)<br />
30.0%<br />
25.0%<br />
20.0%<br />
15.0%<br />
10.0%<br />
5.0%<br />
0.0%<br />
< 4.0<br />
4.0 – 5.9<br />
6.0 – 7.9<br />
Distribution of BAP Levels At Baseline<br />
8.0 – 9.9<br />
10.0 – 11.9<br />
12.0 – 13.9<br />
BAP was significantly lower for ALN than CTL at 3 (9.6 ± 3.5 vs. 13.4 ± 4.0, p
The mean (± 1SD) BAP concentration in CTL subjects decreased modestly from baseline to -5.4% (± 19.1%) at 12 months<br />
(p=0.00004) which may reflect the limited bone-sparing effect of calcium. 13<br />
Mean BAP concentrations in ALN subjects decreased 30.5 ± 24.6% at 3 months, 42.8 ± 17.3% at 6 months, and 42.2 ± 19.2% at<br />
12 months. Subjects in ALN were more likely than CTL subjects to demonstrate BAP losses exceeding minimum percent change 14<br />
with 68.5%, 83.9%, and 86.1% of ALN and 9.5%, 15.9% and 9.0% of CTL individuals decreasing by ≥ 25% at the 3, 6, and 12<br />
month timepoints. Distributions of the percent change from baseline in BAP values following 12 months in the ALN or CTL groups<br />
are depicted in the following figure.<br />
Proportion of Population (%)<br />
30.0%<br />
25.0%<br />
20.0%<br />
15.0%<br />
10.0%<br />
5.0%<br />
0.0%<br />
Distribution of Percent Change in BAP Levels Following 12 Months<br />
Therapy with Alendronate (ALN) or Calcium (CTL)<br />
< -70.0%<br />
-70.0 to -60.1%<br />
At 12 months, subjects in ALN had gained LSBMD compared to CTL (p < 0.00001) as shown in the following table.<br />
Changes in LSBMD (Mean ± SD)<br />
-60.0 to -50.1%<br />
-50.0 to -40.1%<br />
-40.0 to -30.1%<br />
n Baseline (g/cm 2 ) 12 months (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 159 0.75 ± 0.09 0.74 ± 0.09 -0.6 ± 3.4<br />
ALN 121 0.74 ± 0.10 0.79 ± 0.10 5.5 ± 4.1<br />
These results indicate that the Metra BAP assay is safe and effective for monitoring the antiresorptive effect of aminobisphosphonate<br />
(alendronate) therapy among subjects diagnosed with osteoporosis.<br />
Use of Metra BAP for Monitoring Hormonal Antiresorptive Therapy and Predicting Skeletal Response<br />
(Bone Mineral Density) in Postmenopausal Women.<br />
Monitoring Therapy:<br />
A multicenter, randomized controlled trial was successfully conducted to establish the safety and efficacy of the Metra BAP assay<br />
to monitor the changes in serum BAP concentrations associated with estrogen/progestin antiresorptive therapy. Increased bone<br />
turnover and significant loss of bone are often associated with postmenopausal estrogen deficiency. Estrogen replacement has<br />
been shown to effectively decrease bone turnover and protect existing bone mass. 3,6 Subjects were postmenopausal women,<br />
aged 45 to 64 years (mean 56 ± 4 years), who had undergone natural or surgical menopause within the last 10 years. At baseline,<br />
eligible subjects were randomized to either an active treatment group (HRT): Premarin® (0.625 mg daily) with placebo progestin,<br />
Premarin® (0.625 mg daily) and an active progestin (Provera® 2.5 mg/day continuous, Provera® 10 mg/day cyclical, or micronized<br />
progesterone 200 mg/day cyclical); or to the control group (CTL): placebo estrogen and placebo progestin. Serum specimens were<br />
obtained at baseline and 12 months from all subjects.<br />
Mean (± 1SD) baseline BAP concentration (20.7 ± 7.6 vs. 20.3 ± 6.8 U/L, p = 0.704) and LSBMD (0.97 ± 0.17 vs. 0.97 ± 0.15 g/cm 2 ,<br />
p = 0.970) were similar for CTL and HRT. Distributions of baseline BAP values in HRT and CTL are depicted in the following figure by<br />
proportion of the study population.<br />
-30.0 to -20.1%<br />
-20.0 to -10.1%<br />
-10.0 to -0.1%<br />
0.0 to 9.9%<br />
12 Month CTL<br />
12 Month ALN<br />
Decreasing bone turnover % Change<br />
Increasing bone turnover<br />
10.0 to 19.9%<br />
≥ 20.0%<br />
7<br />
ENG<strong>L<strong>IS</strong></strong>H
8<br />
Proportion of Population (%)<br />
≤ 9.0<br />
9.1 – 11<br />
11.1 – 13<br />
Distribution of BAP Levels At Baseline<br />
13.1 – 15<br />
15.1 – 17<br />
17.1 – 19<br />
BAP was significantly lower for HRT than CTL at 12 months (13.3 ± 5.0 vs. 21.9 ± 7.9 U/L, p < 0.00001). Distributions of BAP<br />
values following 12 months in the HRT and CTL groups are depicted in the following figure.<br />
Proportion of Population (%)<br />
30.0%<br />
25.0%<br />
20.0%<br />
15.0%<br />
10.0%<br />
5.0%<br />
0.0%<br />
30.0%<br />
25.0%<br />
20.0%<br />
15.0%<br />
10.0%<br />
5.0%<br />
0.0%<br />
Decreasing bone turnover U/L BAP<br />
Increasing bone turnover<br />
≤ 9.0<br />
Distribution of BAP Levels Following 12 Months<br />
Therapy with Estrogen/Progestin (HRT) or Placebo (CTL)<br />
9.1 – 11<br />
11.1 – 13<br />
13.1 – 15<br />
15.1 – 17<br />
17.1 – 19<br />
The mean (± 1SD) BAP concentration in CTL subjects increased slightly from baseline to +9.8% (± 33.2%) at 12 months<br />
(p = 0.08) whereas BAP concentrations in HRT subjects decreased from baseline to -32.4 (± 21.5%) at 12 months (p < 0.00001).<br />
Subjects in HRT were more likely than CTL subjects to demonstrate BAP losses exceeding minimum percent change 12 with 73.3%<br />
of HRT and 3.4% of CTL individuals decreasing by ≥ 25% at the 12 month timepoint. Distributions of the percent change from<br />
baseline in BAP values following 12 months in the HRT and CTL groups are depicted in the following figure.<br />
19.1 – 21<br />
19.1 – 21<br />
21.1 – 23<br />
21.1 – 23<br />
23.1 – 25<br />
23.1 – 25<br />
25.1 – 27<br />
25.1 – 27<br />
27.1 – 29<br />
27.1 – 29<br />
CTL<br />
HRT<br />
Decreasing bone turnover U/L BAP<br />
Increasing bone turnover<br />
> 29<br />
CTL<br />
HRT<br />
> 29
Distribution of Percent Change in BAP Levels Following 12 Months<br />
Therapy with Estrogen/Progestin (HRT) or Placebo (CTL)<br />
At 12 months, subjects in HRT had gained LSBMD compared to CTL (p
10<br />
HRT Study - Linear Regression of the % change in<br />
LSBMD and BAP from Baseline to 12 months<br />
Contingency table analysis showed that a ≥ 25% decrease in BAP at 12 months was significantly associated (p < 0.0001) with a<br />
positive skeletal response to HRT (gain in BMD) at 12 months. The binomial (second order approximation) 85% confidence intervals<br />
for the sensitivity and specificity of using a 25% decrease in BAP for predicting a response to HRT are:<br />
Sensitivity = 77% (95% CI 75%, 82%); Specificity = 61% (95% CI 41%, 78%).<br />
These results indicate that the % change in BAP concentration can be used to predict the degree of skeletal response (BMD) to HRT<br />
treatment.<br />
LSBMD Percent Change to 12 months<br />
15.0%<br />
10.0%<br />
5.0%<br />
0.0%<br />
-5.0%<br />
-10.0%<br />
-15.0%<br />
-60.0% -40.0% -20.0%<br />
ASS<strong>IS</strong>TANCE<br />
To place an order or for technical assistance, please contact a Quidel Representative at 800-524-6318 or 408-616-4301, Monday<br />
through Friday, between 8:00 a.m. and 5:00 p.m., Pacific Time. Orders may also be placed by fax at 408-616-4310.<br />
For services outside the U.S., please contact your local distributor.<br />
y = -0.060x + 0.011<br />
r = 0.51<br />
p < 0.001<br />
0.0% 20.0% 40.0% 60.0%<br />
BAP Percent Change to 12 months
KURZANLEITUNG<br />
1. 125 µl Testpufferlösung hinzugeben.<br />
2. 20 µl Standardlösungen, Kontrollen und Proben hinzugeben und schwenken.<br />
3. Bei 20–28 °C für 3 Stunden ± 10 Minuten inkubieren.<br />
4. Viermal mit 1fach konzentriertem Waschpuffer waschen.<br />
5. 150 µl der auf 20–28 °C gebrachten Substratlösung hinzugeben.<br />
6. Bei 20–28 °C für 30 ± 5 Minuten inkubieren.<br />
7. 100 µl Stopplösung hinzugeben und Absorbanz bei 405 nm ablesen.<br />
VERWENDUNGSZWECK<br />
Der Metra BAP Immunassay ermöglicht die quantitative Bestimmung der knochenspezifischen alkalischen Phosphataseaktivität<br />
(BAP) in Serum, ein Indikator der Osteoblastenaktivität. Die BAP-Messung soll folgende Vorgänge unterstützen:<br />
� Behandlung von Patienten mit postmenopausaler Osteoporose und <strong>Page</strong>t-Krankheit<br />
� Überwachung postmenopausaler Patientinnen bei Hormon- oder Bisphosphonattherapien<br />
� Prognose der skelettalen Reaktion auf Hormontherapien bei postmenopausalen Patientinnen<br />
ZUSAMMENFASSUNG UND ERLÄUTERUNGEN<br />
Bei der skelett- oder knochenspezifischen Isoform der alkalischen Phosphatase handelt es sich um ein tetramerisches Glykoprotein,<br />
das auf der Zellenoberfläche von Osteoblasten zu finden ist. 1 Osteoblasten sind Zellen, die für die Bildung neuer Knochenmatrix<br />
und deren Mineralisation verantwortlich sind. Zwar ist der Funktionsmechanismus von BAP noch nicht vollständig bekannt, das<br />
Mitwirken dieser Substanz bei der Skelettmineralisation ist jedoch bereits nachgewiesen. 1,2,3<br />
Knochen unterliegen einem als Knochengeweberemodellierung bezeichneten Stoffwechselvorgang. 3,4 Dazu gehören ein<br />
Abbauvorgang – eine durch Osteoklasten bewirkte Knochenresorption - und ein Aufbauvorgang, die durch Osteoblasten bewirkte<br />
Knochenformation. 3,4 Die Remodellierung ist zum Erhalt der Gesamtintegrität des Knochens erforderlich und beruht auf einer<br />
genau abgestimmten Kopplung, d.h. Resorptions- und Formationsvorgänge stehen in einem Gleichgewicht zueinander. 3,4 Bei einer<br />
Störung des Knochenstoffwechsels tritt dieser Prozess aus dem Gleichgewichtszustand heraus, so dass es bei einem Übergewicht<br />
an Resorption gegenüber Formationsvorgängen zu einem Gesamtverlust an Knochenmatrix kommt. 3,4 Dies wiederum kann zur<br />
Osteoporose 3,4 oder zu den im Rahmen der <strong>Page</strong>t-Krankheit auftretenden Veränderungen des Knochengewebes führen. 5 Durch die<br />
Bestimmung spezifischer biochemischer Marker dieser Remodellierungsprozesse kann die Geschwindigkeit bzw. der Umsatz (engl.<br />
„turnover“) des Stoffwechsels ermittelt werden. 3,4<br />
Osteoporose ist eine Knochenstoffwechselkrankheit, die durch Störungen der Knochengeweberemodellierung charakterisiert<br />
ist. Es ist eine systemische Skeletterkrankung, die von einer geringen Knochenmasse und einem mikrostrukturellen Abbau des<br />
Knochengewebes begleitet ist und somit zu einer erhöhten Frakturanfälligkeit führt. 6 Der häufigste Typ der Osteoporose tritt<br />
bei postmenopausalen Frauen auf und wird von einem auf dem Ausbleiben der Ovarialfunktion beruhenden Östrogenmangel<br />
verursacht. 3 Durch die Wiederherstellung der prämenopausalen Östrogenkonzentration mittels Substitutionstherapien kann ein<br />
Abbau des Knochengewebes und Osteoporose verhindert werden. 3,6 Auf Östrogenen und den sog. Bisphosphonaten beruhende<br />
antiresorptive Therapien können zur Vermeidung von Knochenschwund oder zur Behandlung von Osteoporose eingesetzt<br />
werden. 3,6,7<br />
Zudem kann Osteoporose ein Resultat einer inadäquaten maximalen Knochenmasse während der Wachstumsperiode sein<br />
– einem altersbedingten Ungleichgewicht der Knochengeweberemodellierung, bei dem die Resorption übermäßig stark<br />
ausgeprägt ist – und durch eine Reihe klinischer Erkrankungen und Therapien verursacht worden sein, die zu Knochenschwund<br />
oder Störungen der Knochengeweberemodellierung führen. 3 Dazu gehören endokrine Erkrankungen wie z. B. Hypogonadismus,<br />
Hyperthyreoidismus, Hyperparathyreoidismus, Hyperkortisolismus, renales Versagen, Knochenmetastasen, ernährungsbedingte<br />
und auf dem Mineralstoffwechsel beruhende Gastrointestinalerkrankungen, Bindegewebskrankheiten, multiple Myelome,<br />
chronische Immobilisation, Alkoholismus, Tabakmissbrauch sowie chronische Heparin- und Kortikosteroidtherapien. 3<br />
Die <strong>Page</strong>t-Krankheit der Knochen ist eine fokale Störung, die bei symptomatischen Patienten zu Schmerzen und<br />
Skelettdeformierungen führt. 5 Die im Rahmen der <strong>Page</strong>t-Krankheit auftretenden Veränderungen des Knochengewebes<br />
zeichnen sich durch eine höchst anomal strukturierte Knochenmatrix aus, deren Anomalität durch eine übermäßig hohe<br />
Remodellierungsaktivität verursacht wird. Die Läsionen treten hauptsächlich in Schädel, Wirbelsäule, Becken und den langen<br />
Knochen auf und können zu Frakturen und neurologischen Störungen führen. 5 Die Ätiologie der <strong>Page</strong>t-Krankheit ist zwar<br />
unbekannt, es werden jedoch genetische und virale Faktoren verantwortlich gemacht. 5 Eine Senkung der hohen biochemischen<br />
Aktivität auf ein normales Niveau wird zur Zeit mit Hilfe von Bisphosphonaten und Calcitonin erreicht, wodurch eine normale<br />
Knochenstruktur wiederhergestellt werden kann. 9<br />
Als quantitativer Marker für den Knochenumsatz bietet BAP bei Osteoporose und <strong>Page</strong>t-Krankheit und bei Veränderungen der<br />
Krankheitsaktivität infolge antiresorptiver Therapien wichtige Informationen zur Knochengeweberemodellierung. 10-12 Für den<br />
Metra BAP Assay wurde mit Hilfe der Antikörpertechnologie ein monoklonaler Antikörper mit einer hohen BAP-Spezifität<br />
entwickelt. 10 Diese Spezifität des monoklonalen Antikörpers ermöglicht es, die BAP-Aktivität in Serum auf einfache, bequeme,<br />
reproduzierbare und direkte Weise zu bestimmen.<br />
FUNKTIONSPRINZIP<br />
Metra BAP ist ein auf Mikrotiterstreifen beruhender Immunassay, bei dem die in der Probe vorliegende BAP an die mit einem<br />
monoklonalen Anti-BAP-Antikörper beschichteten Mikrotiterstreifen gebunden wird. Die Enzymaktivität des gebundenen BAP wird<br />
mit Hilfe eines pNPP-Substrats bestimmt.<br />
11<br />
DEUTSCH
MITGELIEFERTE REAGENZIEN UND MATERIALIEN<br />
96 Tests auf knochenspezifische alkalische Phosphatase (BAP)<br />
Der Metra BAP Enzym-Immunassay enthält folgende Komponenten:<br />
A BAP-Standardlösungen A - F Artikelnr. 4395 bis 4400 je 0,3 ml<br />
B (A = 0, B = 2, C = 20, D = 50, E = 80, F = 140 E/L BAP)<br />
C Von Osteosarkomzellen (SAOS-2) hergestelltes BAP in Pufferlösung mit Magnesiumchlorid, Zinksulfat,<br />
D Tensid, Trägerprotein, blauem Farbstoff und Natriumazid (0,05 %) als Konservierungsmittel<br />
E<br />
F<br />
L Niedrige/hohe Kontrolle Artikelnr. 4401, 4402 je 0,3 ml<br />
H Von Osteosarkomzellen (SAOS-2) hergestelltes BAP in Pufferlösung mit Magnesiumchlorid, Zinksulfat, Tensid, Trägerprotein,<br />
blauem Farbstoff und Natriumazid (0,05 %) als Konservierungsmittel<br />
q Beschichtete Teststreifen Artikelnr. 4660 je 12<br />
Gereinigter monoklonaler Anti-BAP-IgG-Antikörper von Mäusen absorbiert auf die Vertiefungen der Teststreifen<br />
w Stopplösung Artikelnr. 4702 15 ml<br />
0,5 N NaOH<br />
e 10fach konzentrierter Waschpuffer Artikelnr. 4703 55 ml<br />
Nicht ionisches Detergens in Pufferlösung mit Natriumazid (0,05 %) als Konservierungsmittel<br />
r Testpufferlösung Artikelnr. 4403 27 ml<br />
Gepufferte Lösung mit Magnesiumchlorid, Zinksulfat, Tensid und Natriumazid (0,05 %) als Konservierungsmittel<br />
t Substratpuffer Artikelnr. 4404 3 x 10 ml<br />
2-Amino-2-methyl-1-propanol-Lösung mit HEDTA, Magnesiumchlorid, Zinksulfat und Natriumazid (0,05 %) als<br />
Konservierungsmittel<br />
y Substrattabletten Artikelnr. 0012 3 x 20 mg<br />
p-Nitrophenylphosphat<br />
BENÖTIGTE MATERIALIEN (NICHT IM LIEFERUMFANG)<br />
Mikropipetten zum Pipettieren von 20 µl und 100–300 µl<br />
Geräte zum Abmessen von Flüssigkeiten im Volumenbereich von 100 bis 300 ml<br />
Behälter für die Waschpufferverdünnung<br />
Entionisiertes oder destilliertes Wasser<br />
Plattenlesegerät für Absorbanzmessungen von A405 > 2,0<br />
Software zum Anpassen quadratischer Kalibrierkurven<br />
WARNHINWE<strong>IS</strong>E UND VORSICHTSMASSNAHMEN<br />
1. Zur In-vitro-Diagnostik<br />
2. Proben als potenziell gefährliches biologisches Material behandeln. Beim Arbeiten mit diesem Kit und den Proben allgemein<br />
gültige Vorsichtsmaßnahmen befolgen.<br />
3. Behälter und ungenutzte Inhaltsstoffe gemäß den Anforderungen bundesweit, landesweit und örtlich geltender<br />
Bestimmungen entsorgen.<br />
4. Die mitgelieferten Reagenzien als eine zusammengehörende Einheit vor dem auf der Verpackung angegebenen Verfallsdatum<br />
verwenden.<br />
5. Die Reagenzien des Assays wie angegeben lagern.<br />
6. Die beschichteten Teststreifen nicht verwenden, wenn der Beutel beschädigt ist.<br />
7. Jede Probe mit Duplikaten testen.<br />
8. 0,5 N NaOH ist ätzend und kann zu schweren Verbrennungen führen. Nicht einnehmen. Berührung mit Haut, Augen und<br />
Kleidung vermeiden. Bei Berührung mit Wasser abwaschen. Bei Einnahme einen Arzt konsultieren.<br />
9. Natriumazid wird als Konservierungsstoff verwendet. Der unbeabsichtigte Kontakt mit Pufferlösungen, die Natriumazid<br />
enthalten, bzw. deren Einnahme kann zu Reizungen der Haut, der Augen oder des Mundes führen. Die Pufferlösungen nur für<br />
die vorgesehenen Verwendungszwecke einsetzen und den Kontakt mit Säuren vermeiden. Natriumazid kann beim Kontakt<br />
mit Kupfer- und Bleirohren hochexplosive Metallazide bilden. Bei der Entsorgung mit viel Wasser nachspülen, um eine<br />
Anreicherung von Aziden zu vermeiden.<br />
10. Der Substratpuffer enthält 2-Amino-2-methyl-1-propanol und kann bei anhaltendem Kontakt Reizungen der Augen und/oder<br />
der Haut verursachen. Geeignete Schutzkleidung, Handschuhe und Augen-/Gesichtsschutz tragen. Betroffene Bereiche nach<br />
dem Kontakt sofort mit Wasser und Seife waschen.<br />
11. Für ein zügiges und effizientes Dosieren von Flüssigkeiten wird der Gebrauch von Mehrkanalpipetten empfohlen.<br />
12. Zum Gewährleisten genauer Messungen bei der Zugabe der Proben und Standardlösungen genau arbeiten. Beim Pipettieren<br />
vorsichtig vorgehen und nur kalibrierte Geräte verwenden.<br />
13. Proben mit über 140 E/l mit Testpufferlösung verdünnen und erneut bestimmen. Den Verdünnungsfaktor bei den<br />
Berechnungen berücksichtigen.<br />
14. Für dieses Assay kann eine beliebige anerkannte Waschmethode eingesetzt werden.<br />
12
VORBEREITUNG DER REAGENZIEN<br />
Die Reagenzien und Materialien vor dem Test auf 20–28 °C bringen. Nach der Entnahme der erforderlichen<br />
Reagenzien und Materialien die nicht mehr benötigten Komponenten wieder auf 2–8 °C bringen.<br />
Beschichtete Teststreifen<br />
Den Teststreifenträger und die benötigte Anzahl beschichteter Teststreifen aus dem Beutel entnehmen (siehe Tabelle unter<br />
TESTVERFAHREN). Darauf achten, dass der Beutel, sofern er ungenutzte Teststreifen enthält, wieder richtig verschlossen wird.<br />
Waschpuffer<br />
Das benötigte Volumen des 1fach konzentrierten Waschpuffers (siehe Tabelle) vorbereiten, indem 10fach konzentrierter Waschpuffer<br />
im Verhältnis 1:10 mit entionisiertem Wasser verdünnt wird. Bei 20–28 °C aufbewahren. Den 1fach konzentrierten Waschpuffer<br />
innerhalb von 21 Tage nach dem Ansetzen verwenden.<br />
Substratlösung<br />
Die Substratlösung 1 Stunde vor Gebrauch ansetzen. In jede benötigte Substratpufferflasche (siehe Tabelle), die auf 20–28 °C<br />
gebracht wurde, eine Substrattablette geben. Die Tablette(n) 30–60 Minuten lang auflösen lassen. Die Flasche(n) kräftig schütteln,<br />
um eine vollständige Auflösung zu erzielen. Verbleibende Substratlösung nach dem Gebrauch entsorgen.<br />
LAGERUNG<br />
Das Kit bei 2–8 °C aufbewahren. Nicht einfrieren. Nicht gebrauchte Reagenzien bei 2–8 °C aufbewahren. Die Reagenzien vor dem<br />
Gebrauch auf 20–28 °C bringen. Den 1fach konzentrierten Waschpuffer (10fach verdünnt) bei 20–28 °C aufbewahren.<br />
ENTNAHME UND AUFBEWAHRUNG DER PROBEN<br />
Das Serum mit Hilfe einer standardmäßigen Venenpunktion entnehmen. Die Proben sollten ohne Antikoagulanzien aufbewahrt<br />
werden, jedoch so, dass keine Hämolysereaktionen auftreten. Das Blut koagulieren lassen und das Serum durch Zentrifugieren<br />
trennen. Das Serum kann bei 2–8 °C 5 Tage, bei ≤ –40 °C 12 Monate und bei ≤ –80 °C 36 Monate lang aufbewahrt werden.<br />
Die Proben dürfen nicht häufiger als dreimal eingefroren/aufgetaut werden.<br />
Mit Serum, das vom Koagulum entnommen wurde („Off-the-clot“-Serum), im Serum-Trennröhrchen vorliegendes Serum,<br />
Na-Heparin-Blutplasma und Li-Heparin-Blutplasma werden weitgehend vergleichbare Ergebnisse erzielt. Plasmaproben sollten<br />
nicht mit Komplexbildnern wie EDTA oder Citrat vorbereitet werden.<br />
TESTVERFAHREN<br />
Vor der Durchführung des Tests die gesamte Packungsbeilage lesen.<br />
Vor dem Fortfahren die unter VORBEREITUNG DER REAGENZIEN gegebenen Informationen einsehen.<br />
Die Volumina der verschiedenen Reagenzien bestimmen, die für eine bestimmte Anzahl von Teststreifen<br />
benötigt werden.<br />
Anz. der Teststreifen 4 6 8 12<br />
Anz. der Proben (Bestimmung in Duplikaten) 8 16 24 40<br />
Substrat (Flasche) 1 1 2* 2*<br />
1fach-Waschpuffer (ml) 100 150 200 300<br />
*Werden mehrere Flaschen oder Fläschchen benötigt, deren Inhalt zusammenschütten und vor dem Gebrauch mischen.<br />
Inkubation der Proben<br />
1. Den Teststreifenträger und die benötigte Anzahl der beschichteten Teststreifen unmittelbar vor Gebrauch aus dem Beutel<br />
entnehmen (siehe Tabelle). Darauf achten, dass der Beutel, sofern er ungenutzte Streifen enthält, wieder richtig verschlossen wird.<br />
2. Die gewünschte Anzahl der beschichteten Teststreifen in den Teststreifenhalter legen. Die Teststreifen beschriften, damit sie nicht<br />
vertauscht werden können, sollte der Teststreifenträger unbeabsichtigt entfernt werden.<br />
3. 125 µl Testpufferlösung in jede Vertiefung geben.<br />
4. 20 µl Standardlösung, Kontrolle oder Probe in jede Vertiefung geben. Nicht durch wiederholtes Aufziehen in der Pipette<br />
mischen. Dieser Schritt sollte innerhalb von 30 Minuten abgeschlossen werden. Die Teststreifen vorsichtig<br />
schwenken, um eine gründliche Mischung von Probe und Pufferlösung zu erreichen.<br />
5. Bei 20–28 °C 3 Stunden (± 10 Minuten) inkubieren.<br />
6. Die Substratlösung innerhalb 1 Stunde vor dem Gebrauch ansetzen. In jede benötigte Substratpufferflasche (siehe Tabelle),<br />
die auf 20–28 °C gebracht wurde, eine Substrattablette geben. Die Tablette(n) 30–60 Minuten auflösen lassen. Die Flasche(n)<br />
kräftig schütteln, um eine vollständige Auflösung zu erzielen.<br />
Waschen<br />
7. Das benötigte Volumen des 1fach konzentrierten Waschpuffers (siehe Tabelle) vorbereiten, indem 10fach konzentrierter<br />
Waschpuffer im Verhältnis 1:10 mit entionisiertem Wasser verdünnt wird. Bei 20–28 °C aufbewahren. Den 1fach konzentrierten<br />
Waschpuffer innerhalb von 21 Tage nach dem Ansetzen verwenden.<br />
8. Die Teststreifen manuell umdrehen/entleeren. Mindestens 250 µl des 1fach konzentrierten Waschpuffers in jede Vertiefung<br />
geben und die Teststreifen manuell umdrehen/entleeren. Diesen Vorgang dreimal wiederholen, um insgesamt viermal zu<br />
waschen. Die Teststreifen nach dem letzten Waschschritt durch kräftiges Ausschlagen auf ein Papierhandtuch trocknen.<br />
Inkubieren des Substrats<br />
9. 150 µl der Substratlösung in jede Vertiefung geben. Verbleibende Substratlösung nach dem Gebrauch entsorgen.<br />
10. Bei 20–28 °C 30 Minuten (± 5 Minuten) inkubieren.<br />
13<br />
DEUTSCH
Hinzugeben der Stopplösung und Ablesen des Ergebnisses<br />
11. 100 µl der Stopplösung in jede Vertiefung geben. Die Zugabe der Stopplösung sollte auf die gleiche Weise und mit dem<br />
gleichen zeitlichen Ablauf erfolgen wie die Zugabe der Substratlösung.<br />
12. Die Absorbanz bei 405 nm ablesen. Darauf achten, dass sich in den Vertiefungen keine größeren Blasen befinden und dass die<br />
Unterseite der Teststreifen sauber ist. Die Ergebnisse sollten innerhalb von 15 Minuten nach der Zugabe der Stopplösung<br />
abgelesen werden.<br />
13. Zum Analysieren des Metra BAP Testergebnisses muss eine Quantifizierungssoftware zum Anpassen quadratischer<br />
Kalibrierkurven verwendet werden.<br />
Gleichung: y = A + Bx + Cx 2<br />
QUALITÄTSKONTROLLE<br />
Das diesem Kit beiliegende Analysezertifikat ist nicht spezifischer Natur und soll nachweisen, dass die von Ihrem Labor ermittelten<br />
Ergebnisse denen von Quidel entsprechen. Die gegebenen Absorbanzwerte sollen lediglich als Richtwerte dienen. Die von Ihrem<br />
Labor erhaltenen Ergebnisse können davon abweichen.<br />
Die im Rahmen der Qualitätskontrolle zu verwendenden Bereiche sind angegeben. Die Kontrollwerte haben die Aufgabe, die<br />
Gültigkeit der Kurve und der Probenergebnisse zu bestätigen. Jedes Labor sollte eigene Kriterien festlegen, nach denen die<br />
Testergebnisse anzunehmen sind. Wenn die Kontrollwerte nicht innerhalb der zulässigen Grenzwerte Ihres Labors liegen, sollten<br />
die Testergebnisse in Frage gestellt und die Proben wiederholt werden.<br />
Wenn die Absorbanz der Metra BAP Standardlösung F unter 1,0 liegt, sollten die Testergebnisse in Frage gestellt und die Proben<br />
wiederholt werden.<br />
AUSWERTUNG DER ERGEBN<strong>IS</strong>SE<br />
Die Probenergebnisse können in E/l angegeben werden und müssen nicht mit dem Verdünnungsfaktor korrigiert werden (es sei<br />
denn, die Probe wurde vor dem Test verdünnt).<br />
Eine Einheit (E) des Metra Assays entspricht 1 µmol pNPP, hydrolysiert bei 25 °C pro Minute in 2-Amino-2-methyl-1-propanol-<br />
Pufferlösung.<br />
Repräsentative Standardkurve<br />
BAP-Konzentration der Standardlösungen: 0, 2, 20, 50, 80, 140 E/l<br />
Optische Dichte (405 nm)<br />
3,0<br />
2,0<br />
1,0<br />
GRENZEN DER METHODE<br />
HAMA-Interferenzen<br />
0,0<br />
0 25 50 75 100 125 150<br />
BAP (E/l)<br />
Einige Patienten haben Antikörper gegen Mausantikörper (HAMA), die sich bei Immunassays, die aus Maus-Antikörpern hergestellt<br />
wurden, störend auswirken können. Besonders bei Serumproben von Patienten, die mit therapeutischen oder diagnostischen<br />
Verfahren unter Verwendung von Infusionen mit monoklonalen Maus-Antikörpern behandelt wurden, wurden falsche Ergebnisse<br />
beobachtet. Die Ergebnisse des Metra BAP Assays sollten für derartige Patienten nur im Zusammenhang mit den Ergebnissen<br />
anderer diagnostischer Verfahren und mit anderen klinischen Daten des Patienten verwendet werden.<br />
Bei Proben mit signifikant erhöhter alkalischer Leber-Phosphatase-Aktivität können mit dem Metra BAP Assay ungewöhnlich<br />
hohe Ergebnisse erhalten werden.<br />
Patienten mit <strong>Page</strong>t-Krankheit, bei denen die Krankheit nicht sehr stark ausgeprägt ist, können BAP-Konzentrationen aufweisen,<br />
die noch innerhalb des Referenzbereichs des Metra BAP Assays liegen.<br />
BE<strong>IS</strong>PIELCWERTE<br />
Die BAP-Referenzbereiche wurden für normale Männer im Alter über 25 Jahren (n = 178), normale prämenopausale Frauen im<br />
Alter zwischen 25 und 44 Jahren (n = 178) und normale postmenopausale Frauen (n = 107) ermittelt. Für die Bestimmung der<br />
Referenzbereiche wurden normale Probanden wie folgt definiert:<br />
� Grundsätzlich gesund, ohne endokrine oder chronische Erkrankungen bzw. Knochenerkrankungen<br />
� Regelmäßiger Menstruationszyklus (prämenopausale Frauen)<br />
� Keine schwangeren oder stillenden (Frauen)<br />
� Keine Medikationen, von denen bekannt ist, dass sie den Knochenstoffwechsel beeinflussen<br />
14
Beeinflusst werden die Werte durch Faktoren wie geringe Östrogenproduktion, geringe Kalziumaufnahme oder geringe physische<br />
Aktivität. 8 Ein bei postmenopausalen Frauen auftretender Östrogenmangel kann zu einem erhöhten Knochenumsatz führen. 3,4<br />
Jedes Labor sollte eigene Referenzbereiche für normale Patienten festlegen. Die Bereiche sollten in Form von nicht parametrischen<br />
Referenzintervallen (90 % KI) angegeben werden.<br />
Alter (Jahre) Bereich (E/l) Median<br />
Frauen 25 – 44 Prämenopausal 11,6 – 29,6 18,3<br />
Frauen ≥ 45 Postmenopausal 14,2 – 42,7 25,0<br />
Männer ≥ 25 15,0 – 41,3 23,2<br />
LE<strong>IS</strong>TUNGSMERKMALE<br />
Antikörper-Spezifikationen<br />
Der BAP-Antikörper ist gegenüber der knochenspezifischen alkalischen Phosphatase-Isoform selektiv und hochaffin, zeigt eine<br />
geringe Kreuzaktivität zur hepatischen Form der alkalischen Phosphatase und weist gegenüber intestinalen und plazentaren<br />
Isoenzymen eine vernachlässigbare Bindungsaffinität auf.<br />
AP-Isoenzym % Reaktivität<br />
Knochen 100<br />
Leber 3 – 8<br />
Plazenta 0<br />
Darm 0,4<br />
Sensitivität<br />
Das Nachweisgrenze des Metra BAP Assays beträgt 0,7 E/l und wurde im Rahmen einer Nullstandard-Präzisionsstudie an der<br />
3fachen Standardabweichung festgelegt.<br />
Wiedergewinnung – maximale Wiedergewinnung<br />
Die maximale Wiedergewinnung (engl. „spike recovery“) wurde dadurch ermittelt, dass eine bekannte Menge gereinigter BAP zu<br />
Serumproben mit unterschiedlichen Konzentrationen endogener BAP hinzugegeben wurde. Im Folgenden sind typische Ergebnisse<br />
aufgeführt, die nach der Zugabe von geringen, mittleren und hohen BAP-Konzentrationen zu Serumproben und anschließender<br />
Bestimmung von Triplikaten erhalten wurden.<br />
Endogen (E/l) Zugabe (E/l) Gefunden (E/l) Wiedergew. (%)<br />
13,4 15,7 29,1 99<br />
17,6 37,5 55,3 99<br />
27,2 57,2 88,1 106<br />
Wiedergewinnung – Linearität<br />
Die Linearität wurde ermittelt, indem eine serielle Verdünnungsreihe der Proben erstellt wurde und die gemessenen Werte mit den<br />
erwarteten Werten verglichen wurden. Die Ergebnisse sind im Folgenden dargestellt.<br />
Probe Verdün-nung Gefunden (E/l) Erwartet (E/l) Wieder-gew. (%)<br />
1 unverdünnt 108,5 - -<br />
1:2 51,1 54,2 94<br />
1:4 25,8 27,1 99<br />
1:6 18,0 18,1 99<br />
2 unverdünnt 39,1 - -<br />
1:2 20,1 19,5 103<br />
1:4 10,3 9,8 105<br />
1:6 6,7 6,5 103<br />
3 unverdünnt 58,4 - -<br />
1:2 29,9 29,2 102<br />
1:4 15,7 14,6 108<br />
1:6 9,7 9,7 100<br />
Präzision<br />
Die Präzision „in der Serie“ wurde für ≥ 21 Replikate von 3 Proben auf 3 Plättchen von 3 verschiedenen Kitchargen (insgesamt 9<br />
Plättchen) ermittelt Die Präzision „von Serie zu Serie“ wurde durch die Bestimmung von 3 Proben auf 6 einzelnen Plättchen von 3<br />
verschiedenen Kitchargen (insgesamt 18 Plättchen) ermittelt. Die Ergebnisse sind im Folgenden dargestellt.<br />
BAP (E/l) In der Serie 1 (CV %) Von Serie zu Serie 2 (CV %)<br />
12 5,8 5,2<br />
35 3,9 7,6<br />
100 5,2 5,0<br />
1 n = 21 2 n = 6 Serien<br />
15<br />
DEUTSCH
Störsubstanzen<br />
Die folgenden Substanzen wurden mit den angegebenen Konzentrationen getestet. Sie stellen keine Störungen für diesen Assay dar.<br />
16<br />
Substanz Konzentration<br />
Hämoglobin 500 mg/dl<br />
Bilirubin 25 mg/dl<br />
Triglyceride 1.420 mg/dl<br />
Gesamteiweiß 6,0 g/dl †<br />
Gesamteiweiß 15,6 g/dl †<br />
Gesamteiweiß 6,0 g/dl ‡<br />
Gesamteiweiß 15,6 g/dl ‡<br />
† Eiweiß mit Wasser<br />
‡ Eiweiß mit BAP (BAP-Konzentration= 43,6 E/l)<br />
Arzneimittelinterferenzen<br />
Zu den drei Serumproben mit ungefähr 35, 70 und 105 E/l BAP wurden verschiedene Konzentrationen von Arzneimitteln<br />
hinzugegeben. Danach wurden sie als Triplikate getestet. Folgende Arzneimittel und Maximalkonzentrationen wurden untersucht:<br />
Substanz Maximalkonzentration<br />
Etidronat 350 µg/ml<br />
Östrogen 100 µg/ml<br />
Ibuprofen 150 µg/ml<br />
Acetaminophen 350 µg/ml<br />
Aspirin 350 µg/ml<br />
Calcitonin – human 80 µg/ml<br />
Calcitonin – Lachs 80 µg/ml<br />
Kalzium 500 µg/ml<br />
Norethisteron-Äthinylöstradiol-Mischung (orales Kontrazeptivum) 3 mg/ml<br />
Vitamin D 400 IE/ml<br />
Genauigkeit<br />
Zur Bewertung der Korrelation zwischen den BAP-Bestimmungen in Serum, die mit dem Metra BAP Assay durchgeführt wurden,<br />
und den Ergebnissen von drei anderen im Handel erhältlichen Tests zur Bestimmung der alkalischen Gesamtphosphatase (TAP)<br />
oder BAP wurden Vergleichsstudien durchgeführt. Diese Studien wurden an einem unabhängigen klinischen Forschungszentrum<br />
durchgeführt und umfassten Serumproben von 114 Patienten mit der <strong>Page</strong>t-Krankheit und 464 gesunden Probanden. In der<br />
ersten Vergleichsstudie wurde die TAP-Konzentration mit einer kolorimetrischen Methode bestimmt. Der Korrelationskoeffizient<br />
(r) zwischen dieser kolorimetrischen Methode und dem Metra BAP Assay betrug 0,99. Der zweite Vergleich bestand in einer<br />
Elektrophoresebestimmung der BAP-Isoenzym-Konzentrationen (r = 0,99). In einem dritten Vergleich wurde die BAP-Konzentration<br />
mit einem Radioimmunassay bestimmt (r = 0,99). Von den 114 Patienten mit diagnostizierter <strong>Page</strong>t-Krankheit lagen die Werte bei<br />
101 Patienten über dem oberen Grenzwert der Referenzbereiche, die für das Metra BAP Assay festgelegt wurden. Bei 13 Patienten<br />
lagen die Werte unter dem oberen Grenzwert der Referenzbereiche.<br />
KLIN<strong>IS</strong>CHE STUDIEN<br />
Überwachung der Wirksamkeit antiresorptiver Therapien bei Osteoporose mit dem Metra BAP Assay<br />
Zur Bestimmung der Zuverlässigkeit und Wirksamkeit des Metra BAP Assays bei der Überwachung von Änderungen der BAP-<br />
Konzentrationen in Serum, die bei antiresorptiven Bisphosphonat-(Alendronat)-Therapien auftreten, wurde eine randomisierte,<br />
kontrollierte Multizenterstudie durchgeführt. Die Probanden, die von einer größeren Studie über die Wirksamkeit von Alendronat<br />
bei der Behandlung von Osteoporose stammten 7 , waren postmenopausale Frauen im Alter zwischen 45 und 84 Jahren (Mittel<br />
64 ± 7 Jahre), bei denen Osteoporose diagnostiziert wurde (beruhend auf der klinischen oder Basislinien-Knochenmineraldichte<br />
der Lendenwirbelsäule [LSBMD], über 2,5 Standardabweichungen unter dem Mittelwert für reife, prämenopausale Frauen). Die<br />
geeigneten Probanden wurden an der Basislinie randomisiert und erhielten entweder 10 mg Alendronat und 500 mg Kalzium<br />
täglich (ALN) oder ein Plazebo und 500 mg Kalzium täglich (CTL). Die Serumproben wurden von allen Probanden an der Basislinie<br />
sowie nach 3, 6 und 12 Monaten entnommen.<br />
Die mittlere (± 1 SA) BAP-Basislinienkonzentration (14,6 ± 5,4 vs. 14,6 ± 4,6, p = 0,900) und LSBMD (0,74 ± 0,10 vs.<br />
0,75 ± 0,09, p = 0,751) waren vergleichbar für ALN und CTL. In der folgenden Abbildung ist die Verteilung der BAP-<br />
Basislinienwerte in der ALN- und CTL-Gruppe als prozentualer Anteil der Studienpopulation dargestellt.
Anteil an der Population (%)<br />
Verteilung der BAP-Werte (Basislinie)<br />
Nach 3 (9,6 ± 3,5 vs. 13,4 ± 4,0, p
18<br />
Anteil an der Population (%)<br />
Verteilung der prozentualen BAP-Änderungen nach 12 Monaten<br />
Therapie mit Alendronat (ALN) oder Kalzium (CTL)<br />
< -70,0%<br />
-70,0 bis -60,1%<br />
-60,0 bis -50,1%<br />
Wie in der folgenden Abbildung dargestellt, trat bei den Probanden der ALN-Gruppe im Vergleich zur CTL-Gruppe nach 12 Monaten<br />
eine LSBMD-Zunahme auf (p < 0,00001).<br />
LSBMD-Änderungen (Mittelwert ± SA)<br />
-50,0 bis -40,1%<br />
-40,0 bis -30,1%<br />
n Basislinie (g/cm 2 ) 12 Monate (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 159 0,75 ± 0,09 0,74 ± 0,09 -0,6 ± 3,4<br />
ALN 121 0,74 ± 0,10 0,79 ± 0,10 5,5 ± 4,1<br />
Diese Ergebnisse zeigen, dass der Metra BAP Assay zur Überwachung der antiresorptiven Wirkung von Aminobisphosphonat-<br />
(Alendronat-)-Therapien bei Probanden mit diagnostizierter Osteoporose zuverlässig und wirksam ist.<br />
Überwachung antiresorptiver Hormontherapien und Prognose der skelettalen Reaktion<br />
(Knochenmineraldichte) bei postmenopausalen Frauen mit Hilfe des Metra BAP Assays<br />
Überwachung der Therapie:<br />
Zur Bestimmung der Zuverlässigkeit und Wirksamkeit des Metra BAP Assays für die Überwachung von Änderungen der BAP-<br />
Konzentrationen in Serum, die bei antiresorptiven Östrogen-/Progestin-Therapien auftreten, wurde eine randomisierte, kontrollierte<br />
Multizenterstudie durchgeführt. Ein postmenopausaler Östrogenmangel geht häufig mit einem erhöhten Knochenumsatz und<br />
einem signifikanten Knochenschwund einher. Es wurde gezeigt, dass durch eine Östrogenersatztherapie der Knochenumsatz<br />
wirksam gesenkt und die vorhandene Knochenmasse geschützt werden kann. 3,6 Bei den Probanden handelte es sich um<br />
postmenopausale Frauen im Alter zwischen 45 und 64 Jahren (Mittelwert 56 ± 4 Jahre) mit natürlicher oder chirurgischer<br />
Menopause in den letzten 10 Jahren. Die geeigneten Probanden wurden an der Basislinie randomisiert und entweder einer aktiven<br />
Behandlungsgruppe (HRT) (Premarin® [0,625 mg täglich] mit Plazebo-Progestin, Premarin® [0,625 mg täglich] und aktivem<br />
Progestin [Provera® 2,5 mg/Tag und kontinuierlich, Provera® 10 mg/Tag zyklisch oder mikronisiertes Progesteron 200 mg/Tag<br />
zyklisch] oder der Kontrollgruppe (CTL) (Plazebo-Östrogen und Plazebo-Progestin) zugewiesen. Die Serumproben wurden von<br />
allen Probanden an der Basislinie und nach 12 Monaten entnommen.<br />
Die mittlere (± 1 SA) BAP-Basislinienkonzentration (20,7 ± 7,6 vs. 20,3 ± 6,8 E/L, p = 0,704) und LSBMD (0,97 ± 0,17 vs.<br />
0,97 ± 0,15 g/cm2 , p = 0,970) waren in der HRT- und CTL-Gruppe ähnlich. In der folgenden Abbildung ist die Verteilung der BAP-<br />
Basislinienwerte in der HRT- und CTL-Gruppe als prozentualer Anteil der Studienpopulation dargestellt.<br />
Verteilung der BAP-Werte (Basislinie)<br />
CTL<br />
HRT<br />
30,0%<br />
Anteil an der Population (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-30,0 bis -20,1%<br />
verringerter Knochenumsatz % Änderung<br />
erhöhter Knochenumsatz<br />
≤ 9,0<br />
9,1 bis 11<br />
11,1 bis 13<br />
13,1 bis 15<br />
15,1 bis 17<br />
17,1 bis 19<br />
19,1 bis 21<br />
-20,0 bis -10,1%<br />
21,1 bis 23<br />
-10,0 bis -0,1%<br />
23,1 bis 25<br />
0,0 bis 9,9%<br />
25,1 bis 27<br />
12 Monate CTL<br />
12 Monate ALN<br />
verringerter Knochenumsatz E/I BAP<br />
erhöhter Knochenumsatz<br />
10,0 bis 19,9%<br />
27,1 bis 29<br />
≥ 20,0%<br />
> 29
Die BAP-Werte waren in der HRT-Gruppe nach 12 Monaten signifikant niedriger als in der CTL-Gruppe (13,3 ± 5,0 vs. 21,9 ±<br />
7,9 E/L, p < 0,00001). In der folgenden Abbildung sind die Verteilungen der BAP-Werte in der HRT- und CTL-Gruppe nach<br />
12 Monaten dargestellt.<br />
Anteil an der Population (%)<br />
Verteilung der BAP-Werte nach 12 Monaten<br />
Therapie mit Östrogen/Progestin (HRT) oder Plazebo (CTL)<br />
Die mittlere (± 1 SA) BAP-Konzentration nahm in den Probanden der CTL-Gruppe nach 12 Monaten von der Basislinie etwas auf<br />
+9,8 % (± 33,2 %) zu (p=0,00004), wogegen die BAP-Konzentrationen in den Probanden der HRT-Gruppe im gleichen Zeitraum<br />
von der Basislinie auf –32,4 (± 21,5 %) abnahm (p < 0,00001). Bei den Probanden der HRT-Gruppe traten im Vergleich zur CTL-<br />
Gruppe mit einer höheren Wahrscheinlichkeit BAP-Abnahmen auf, die über einer prozentualen Mindeständerung 12 lagen (73,3 %<br />
in der HRT-Gruppe und 3,4 % in der CTL-Gruppe, Abnahme um ≥ 25 % nach 12 Monaten). In der folgenden Abbildung sind die<br />
Verteilungen der prozentualen BAP-Änderungen von der Basislinie in der HRT- und CTL-Gruppe nach 12 Monaten dargestellt.<br />
Anteil an der Population (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
≤ 9,0<br />
9,1 bis 11<br />
11,1 bis 13<br />
Verteilung der prozentualen BAP-Änderungen nach 12 Monaten<br />
Therapie mit Östrogen/Progestin (HRT) oder Plazebo (CTL)<br />
Wie in der folgenden Abbildung dargestellt, trat bei den Probanden der HRT-Gruppe im Vergleich zur CTL-Gruppe nach 12 Monaten<br />
eine LSBMD-Zunahme auf (p < 0,00001).<br />
LSBMD-Änderungen (Mittelwert ± SA)<br />
13,1 bis 15<br />
15,1 bis 17<br />
17,1 bis 19<br />
verringerter Knochenumsatz E/I BAP<br />
erhöhter Knochenumsatz<br />
< -70,0%<br />
-70,0 bis -60,1%<br />
-60,0 bis -50,1%<br />
-50,0 bis -40,1%<br />
-40,0 bis -30,1%<br />
n Basislinie (g/cm 2 ) 12 Monate (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 58 0,97 ± 0,17 0,95 ± 0,16 –1,6 ± 2,8<br />
HRT 262 0,97 ± 0,15 1,00 ± 0,15 +3,5 ± 2,8<br />
Diese Ergebnisse zeigen, dass der Metra BAP Assay zur Überwachung der antiresorptiven Wirkung von Hormonersatztherapien bei<br />
postmenopausalen Frauen zuverlässig und wirksam ist.<br />
-30,0 bis -20,1%<br />
19,1 bis 21<br />
-20,0 bis -10,1%<br />
21,1 bis 23<br />
-10,0 bis -0,1%<br />
23,1 bis 25<br />
0,0 bis 9,9%<br />
25,1 bis 27<br />
10,0 bis 19,9%<br />
27,1 bis 29<br />
CTL<br />
HRT<br />
verringerter Knochenumsatz % Änderung<br />
erhöhter Knochenumsatz<br />
> 29<br />
HRT<br />
≥ 20,0% CTL<br />
19<br />
DEUTSCH
Prognose der skelettalen Reaktion:<br />
Die prozentuale Abnahme der BAP-Werte von der Basislinie zum 12-Monate-Zeitpunkt ist in der folgenden Abbildung nach Quartil<br />
für die HRT-Gruppe dargestellt. Die Probanden im höchsten Quartil (Q1: größte prozentuale Abnahme) zeigten den größten LSBMD-<br />
Anstieg als Reaktion auf die HRT-Therapie.<br />
20<br />
% LSBMD- Änderung bis 12 Monate (+/- SEM)<br />
HRT-Gruppe – prozentuale BAP-Änderung nach 12 Monaten nach<br />
Quartil und die entsprechende prozentuale LSBMD-Änderung über den gleichen Zeitraum<br />
Die lineare Regression (y = –0,060x + 0,011, r = –0,51, p < 0,001) zwischen der prozentualen BAP-Änderung von der Basislinie<br />
bis zum 12-Monate-Zeitpunkt und der prozentualen BMD-Änderung von der Basislinie bis zum 12-Monate-Zeitpunkt ist für alle<br />
Probanden der Studie (Plazebo und Behandlung) in der folgenden Abbildung dargestellt.<br />
LSBMD- Änderung bis 12 Monate<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
1<br />
0<br />
Q1 (-66,5 bis -45,9) Q2 (-45,9 bis -36,0)<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-5,0%<br />
-10,0%<br />
p < 0,001<br />
HRT-Studie – lineare Regression der prozentualen LSBMD- und BAP-<br />
Änderungen von der Basislinie bis zum 12-Monate-Zeitpunkt<br />
Eine auf Kontigenz-Tabellen beruhende Analyse hat gezeigt, dass zwischen einer BAP-Abnahme ≥ 25 % nach 12 Monaten<br />
und einer positiven skelettalen Reaktion auf HRT (BMD-Zunahme) über den gleichen Zeitraum ein signifikanter (p < 0,0001)<br />
Zusammenhang besteht. Die binomialen (Approximation 2. Ordnung) 85-%-Konfidenzintervalle für die Sensitivität und Spezifität<br />
einer 25%igen BAP-Abnahme lauten zum Prognostizieren der Reaktion auf HRT wie folgt:<br />
Sensitivität = 77 % (95 % KI 75 %, 82 %); Spezifität = 61 % (95 % KI 41 %, 78 %).<br />
Diese Ergebnisse zeigen, dass die skelettale Reaktion (BMD) auf die HRT-Behandlung anhand der prozentualen Änderung der<br />
BAP-Konzentration prognostiziert werden kann.<br />
KUNDENDIENST<br />
Zum Aufgeben einer Bestellung oder für technischen Kundendienst wenden Sie sich unter +1 408 616 4301, Montags bis<br />
Freitags zwischen 8:00 und 17:00 Uhr (PST) an eine Quidel Vertretung. Bestellungen können unter +1 408 616 4310 auch<br />
per Fax aufgegeben werden.<br />
Informationen zum Serviceangebot außerhalb der USA erhalten Sie von Ihrer Vertretung vor Ort.<br />
Q3 (-36,0 bis -23,8) Q4 (-23,8 bis 167,3)<br />
Quartile der BAP-Änderungen (%) bis 12 Monate<br />
-15,0%<br />
-60,0% -40,0% -20,0%<br />
y = -0,060x + 0,011<br />
r = 0,51<br />
p < 0,001<br />
0,0% 20,0% 40,0% 60,0%<br />
BAP-Änderung bis 12 Monate
GUIDA VELOCE PER LE FASI DEL SAGGIO<br />
1. Aggiungere 125 µL di tampone del saggio.<br />
2. Aggiungere 20 µL di standard, di campioni di controllo e di campioni, quindi agitare.<br />
3. Incubarli per 3 ore ± 10 minuti a 20–28°C.<br />
4. Lavarli 4 volte con tampone di lavaggio 1X.<br />
5. Aggiungere 150 µL di soluzione di substrato attiva a 20–28°C.<br />
6. Incubarla per 30 ± 5 minuti a 20–28°C.<br />
7. Aggiungere 100 µL di soluzione bloccante e leggere i risultati della densità ottica a 405 nm.<br />
FINALITÀ D’USO:<br />
Il saggio immunoenzimatico Metra BAP fornisce una misura quantitativa dell’attività della fosfatasi alcalina osso-specifica<br />
(bone-specific alkaline phosphatase, BAP) nel siero come indicatore dell’attività osteoblastica. La misura di BAP è prevista<br />
per l’uso come ausilio:<br />
� nella gestione dell’osteoporosi della postmenopausa e del morbo di <strong>Page</strong>t;<br />
� nel monitoraggio delle donne in postmenopausa che fanno uso di una terapia ormonale o a base di bisfosfonato;<br />
� nella previsione di una risposta scheletrica alla terapia ormonale in donne in postmenopausa.<br />
SOMMARIO E SPIEGAZIONE<br />
L’isoformio scheletrico, o osso-specifico della fosfatasi alcalina è una glicoproteina tetramerica riscontrata nella superficie cellulare<br />
degli osteoblasti. 1 Gli osteoblasti sono le cellule responsabili della sintesi della matrice del nuovo osso e della sua mineralizzazione.<br />
La funzione di BAP non è stata spiegata completamente, sebbene sia stato confermato il suo ruolo nella mineralizzazione<br />
scheletrica. 1,2,3<br />
L’osso è costantemente sottoposto a un processo metabolico denominato rimodellazione. 3,4 Tale processo comprende una fase<br />
di degradazione, riassorbimento dell’osso, mediato dall’azione degli osteoclasti, e una fase di generazione, formazione dell’osso,<br />
mediata dall’azione degli osteoblasti. 3,4 La rimodellazione è necessaria per il mantenimento, in generale per la salute dell’osso ed è<br />
strettamente abbinata; vale a dire che il riassorbimento e la formazione sono bilanciati. 3,4 In condizioni anormali del metabolismo<br />
dell’osso, questo processo non va di pari passo e quando il riassorbimento supera la formazione, si ha una perdita netta dell’osso,<br />
che può portare all’osteoporosi 3,4 o alla comparsa di lesioni pagetiche nel tessuto osseo con disordini. 5 La misurazione dei marcatori<br />
biochimici specifici di tali casi di rimodellazione fornisce i dati analitici relativi al tasso di metabolismo osseo o “ricambio”. 3,4<br />
L’osteoporosi è una malattia metabolica dell’osso caratterizzata da una rimodellazione anormale dell’osso. Si tratta di una malattia<br />
scheletrica sistemica, caratterizzata da minore massa ossea e deterioramento della microarchitettura del tessuto osseo, con<br />
un conseguente aumento della suscettibilità alle fratture. 6 Il tipo maggiormente comune di osteoporosi si verifica in donne in<br />
postmenopausa in seguito alla mancanza di estrogeni causata dalla cessazione della funzione ovarica. 3 Il ripristino dei livelli di<br />
estrogeno in premenopausa con una terapia sostitutiva impedisce la perdita ossea e l’osteoporosi. 3,6 Gli estrogeni e una classe di<br />
composti conosciuti come bisfosfonati rappresentano delle terapie anti-riassorbenti che possono essere usate per impedire la perdita<br />
ossea o per curare l’osteoporosi. 3,6,7<br />
È possibile anche che l’osteoporosi provochi una massa ossea con picco inadeguato durante gli anni di crescita, uno squilibrio della<br />
rimodellazione dell’osso riferito all’età con un eccesso netto di riassorbimento e numerose condizioni cliniche e terapie che inducono<br />
la perdita ossea o gli squilibri della rimodellazione dell’osso. 3 Queste comprendono malattie endocrine quali ipogonadismo,<br />
ipertiroidismo, iperparatiroidismo, ipercortisonismo; blocco renale; tumori metastatici dell’osso; malattie gastrointestinali riferite al<br />
metabolismo della nutrizione e minerale; malattie del tessuto connettivo; mieloma multiplo; immobilizzazione cronica, alcolismo o<br />
uso di tabacco e terapia cronica con eparina o corticosteroidi. 3<br />
Il morbo di <strong>Page</strong>t dell’osso costituisce un disordine focale che provoca dolore e deformità scheletrica in pazienti sintomatici. 5 Le<br />
lesioni pagetiche, caratterizzate da matrice ossea dalla struttura estremamente anormale, nascono da tassi eccessivi dell’attività di<br />
rimodellazione. Le lesioni si verificano in modo predominante nel cranio, nella colonna vertebrale, nella pelvi e nelle ossa lunghe e<br />
possono causare fratture e un peggioramento neurologico. 5 L’eziologia del morbo di <strong>Page</strong>t non è accertata, ma vengono avvalorate<br />
le ipotesi che comprendono fattori genetici e virali. 5 Attualmente vengono usati i bisfosfonati e la calcitonina per eliminare il tasso<br />
elevato di attività biochimica a livelli normali, che consente il ripristino della struttura ossea normale. 9<br />
Come misura quantitativa di un marcatore del ricambio osseo, BAP fornisce informazioni utili sulla rimodellazione ossea in pazienti<br />
affetti da osteoporosi e morbo di <strong>Page</strong>t e sulle modifiche nell’attività della malattia prodotte da una terapia anti-riassorbente. 10-12<br />
Per il saggio Metra BAP è stata impiegata la tecnologia degli anticorpi allo scopo di produrre un anticorpo monoclonale che dimostri<br />
la specificità di BAP. 10 La specificità dell’anticorpo monoclonale usato nel saggio consente la quantificazione in modo semplice,<br />
comodo, riproducibile e diretto dell’attività di BAP in siero.<br />
PRINCIPIO DELLA PROCEDURA<br />
Metra BAP è un saggio immunoenzimatico in formato di striscia per microtitolazione che utilizza un anticorpo monoclonale<br />
anti-BAP rivestito sulla striscia al fine di catturare la BAP nel campione. L’attività enzimatica della BAP catturata viene rilevata con<br />
un substrato di pNPP.<br />
21<br />
<strong>ITA</strong><strong>LIA</strong>NO
REAGENTI E MATERIALI FORNITI<br />
96 saggi per fosfatasi alcalina osso-specifica<br />
Metra BAP EIA contiene i seguenti materiali e reagenti:<br />
A Standard BAP A - F Codici da 4395 a 4400 0,3 mL ciascuno<br />
B (A = 0, B = 2, C = 20, D = 50, E = 80, F = 140 U/L BAP)<br />
C BAP viene purificata dalle cellule dell’osteosarcoma SAOS-2 in una soluzione tamponata contenente cloruro di magnesio,<br />
D solfato di zinco, tensioattivo, proteina carrier, colorante blu e azide di sodio (0,05%) come conservante.<br />
E<br />
F<br />
L Campioni di controllo Codici 4401, 4402 0,3 mL ciascuno<br />
H inferiori/superiori<br />
BAP purificata dalle cellule dell’osteosarcoma SAOS-2 in una soluzione tamponata contenente cloruro di magnesio, solfato di<br />
zinco, tensioattivo, proteina carrier, colorante blu e azide di sodio (0,05%) come conservante.<br />
q Strisce rivestite Codice 4660 12 pezzi<br />
Anticorpo monoclonale IgG Anti-BAP murino purificato assorbito nei telai Stripwell.<br />
w Soluzione bloccante Codice 4702 15 mL<br />
0,5N NaOH<br />
e Tampone di lavaggio 10X Codice 4703 55 mL<br />
Detergente non ionico in una soluzione tamponata contenente azide di sodio (0,05%) come conservante.<br />
r Tampone del saggio Codice 4403 27 mL<br />
Soluzione tamponata contenente cloruro di magnesio, solfato di zinco, tensioattivo e azide di sodio (0,05%) come conservante.<br />
t Tampone del substrato Codice 4404 3 x 10 mL<br />
Soluzione di 2-amino-2-metil-1-propanolo contenente HEDTA, cloruro di magnesio, solfato di zinco e azide di sodio (0,05%)<br />
come conservante.<br />
y Tavolette di substrato Codice 0012 3 x 20 mg<br />
Fosfato di p-Nitrofenile.<br />
MATERIALI NECESSARI MA NON FORNITI<br />
Micropipette per la fornitura di 20 µL e 100-300 µL<br />
Elementi adatti per la misurazione di liquidi da 100-300 mL<br />
Contenitore per la diluizione del tampone di lavaggio<br />
Acqua deionizzata o distillata<br />
Lettore per piastra in grado di effettuare letture alla densità ottica di A405 > 2,0<br />
Software per adattamento della curva di calibrazione quadratica<br />
AVVERTENZE E PRECAUZIONI<br />
1. Per uso diagnostico In Vitro.<br />
2. Trattare i campioni come materiale a potenziale rischio biologico. Seguire le precauzioni generali durante la manipolazione<br />
del contenuto di questo kit e di qualunque campione paziente.<br />
3. Smaltire i contenitori e il contenuto inutilizzato in conformità con i requisiti delle normative federali, statali e locali.<br />
4. Usare i reagenti forniti come un’unità integrale prima della data di scadenza indicata sull’etichetta della confezione.<br />
5. Conservare i reagenti del saggio come indicato.<br />
6. Non usare le strisce rivestite se la busta protettiva è danneggiata.<br />
7. Sottoporre a test ciascun campione in duplicato.<br />
8. 0,5N NaOH è considerato corrosivo e può causare gravi ustioni. Non ingerirlo. Evitare il contatto con la cute, gli occhi o gli<br />
indumenti. Se avviene il contatto, lavare con acqua. Se ingerito, consultare un medico.<br />
9. L’azide di sodio viene usato come conservante. Il contatto o l’ingestione accidentale di tamponi contenenti azide di sodio può<br />
causare irritazioni alla cute, agli occhi o alla bocca. Usare esclusivamente i tamponi per gli scopi previsti ed evitare il contatto con<br />
gli acidi. È possibile che l’azide di sodio reagisca con tubazioni in rame e in piombo e formi azidi metallici altamente esplosivi.<br />
Dopo lo smaltimento, lavare con una grande quantità di acqua per impedire l’accumulo di azide.<br />
10. Il tampone del substrato contiene 2-amino-2-metil-1-propanolo e, in caso di contatto prolungato, può provocare irritazione<br />
agli occhi e/o alla cute. Indossare adeguati indumenti di protezione, guanti e protezioni per occhi/viso. Occorre lavare<br />
immediatamente con sapone e acqua le aree entrate in contatto.<br />
11. Si consiglia l’uso di pipette multicanale o di pipettatori a ripetizione per garantire la fornitura veloce dei reagenti.<br />
12. Per una misurazione accurata dei campioni, aggiungere accuratamente i campioni e gli standard. Pipettare attentamente,<br />
usando esclusivamente apparecchiature calibrate.<br />
13. Diluire i campioni maggiori di 140 U/L nel tampone del saggio ed effettuare di nuovo il test. Comprendere il fattore di diluizione<br />
nel calcolo finale.<br />
14. È possibile eseguire questo saggio con qualunque metodo di lavaggio omologato.<br />
22
PREPARAZIONE DEI REAGENTI<br />
Prima dell’uso, portare i reagenti e i materiali per il saggio a 20–28°C. Dopo la rimozione dei reagenti e<br />
materiali necessari, conservare gli elementi inutilizzati a 2–8°C.<br />
Strisce rivestite<br />
Rimuovere dalla busta protettiva il telaio Stripwell e il numero necessario di strisce rivestite (fare riferimento alla tabella nella sezione<br />
PROCEDURA DEL SAGGIO). Verificare che la busta protettiva contenente eventuali strisce inutilizzate venga risigillata completamente.<br />
Tampone di lavaggio<br />
Preparare la quantità necessaria di tampone di lavaggio 1X (fare riferimento alla tabella) diluendo con acqua deionizzata il<br />
tampone di lavaggio concentrato in un rapporto di 1:10. Conservare a 20–28°C. Utilizzare il tampone di lavaggio 1X entro 21<br />
giorni dalla preparazione.<br />
Soluzione di substrato attiva<br />
Preparare la soluzione di substrato attiva entro 1 ora dall’utilizzo. Porre una tavoletta di substrato in ciascun flacone necessario di tampone<br />
di substrato a 20–28°C (fare riferimento alla tabella). Lasciar trascorrere 30–60 minuti per consentire alle tavolette di dissolversi. Agitare<br />
accuratamente i flaconi al fine di miscelarli completamente. Dopo l’uso, gettare la rimanente soluzione di substrato attiva.<br />
CONSERVAZIONE<br />
Conservare i kit a 2–8°C. Non congelare. Conservare i reagenti inutilizzati a 2–8°C. Prima dell’uso, equilibrare i reagenti a 20–28°C.<br />
Conservare il tampone di lavaggio 1X (diluito 10X) a 20–28°C.<br />
PRELIEVO E CONSERVAZIONE DEI CAMPIONI<br />
Prelevare il siero adottando una tecnica di venopuntura standard. È necessario prelevare i campioni senza usare anticoagulanti<br />
e in modo da evitare l’emolisi. Lasciare che il sangue coaguli e separare il siero tramite centrifugazione. È possibile conservare il<br />
siero per 5 giorni a 2–8°C, a ≤ -40°C per 12 mesi, oppure a ≤ -80°C per 36 mesi. Non sottoporre i campioni a più di 3 cicli di<br />
congelamento/decongelamento.<br />
Il siero senza coaguli, quello in provetta proveniente da un separatore per siero, il plasma di eparina Na e il plasma di eparina Li forniscono<br />
sostanzialmente risultati equivalenti. Si sconsiglia di preparare i campioni di plasma facendo uso di chelanti quali EDTA o citrato.<br />
PROCEDURA DEL SAGGIO<br />
Prima di iniziare il saggio, leggere completamente l’inserto fornito con il prodotto.<br />
Prima di procedere, fare riferimento a PREPARAZIONE DEI REAGENTI.<br />
Determinare la quantità necessaria di ciascun reagente per il numero di strisce da usare.<br />
# di strisce 4 6 8 12<br />
# di campioni (sottoposti a test in duplicato) 8 16 24 40<br />
Substrato (flacone) 1 1 2* 2*<br />
Tampone di lavaggio 1X (mL) 100 150 200 300<br />
*Quando viene usato più di un flacone o di una fiala, unire i contenuti e miscelarli prima dell’uso.<br />
Incubazione del campione<br />
1. Rimuovere il telaio Stripwell dalla busta protettiva e il numero necessario di strisce rivestite (fare riferimento alla tabella)<br />
immediatamente prima dell’uso. Verificare che la busta protettiva metallizzata contenente qualunque striscia inutilizzata venga<br />
risigillata completamente.<br />
2. Porre il numero desiderato di strisce rivestite nel telaio Stripwell. Etichettare le strisce per evitare di fare confusione nel caso di<br />
una rimozione accidentale dal telaio Stripwell.<br />
3. Aggiungere 125 µL di tampone del saggio in ciascun pozzetto.<br />
4. Aggiungere 20 µL di standard, campione di controllo o campione in ciascun pozzetto. Non miscelarli con il tampone del saggio<br />
pipettando nuovamente. È necessario completare questa fase entro 30 minuti. Agitare delicatamente le strisce per<br />
garantire la miscelazione del campione e del tampone.<br />
5. Incubare per 3 ore (± 10 minuti) a 20–28°C.<br />
6. Preparare la soluzione di substrato attiva entro 1 ora dall’utilizzo. Porre una tavoletta di substrato in ciascun flacone necessario<br />
di tampone di substrato a 20–28°C (fare riferimento alla tabella). Lasciar trascorrere 30–60 minuti per consentire alle<br />
tavolette di dissolversi. Agitare accuratamente i flaconi al fine di miscelarli completamente.<br />
Fase di lavaggio<br />
7. Preparare la quantità necessaria di tampone di lavaggio 1X (fare riferimento alla tabella) diluendo con acqua deionizzata il<br />
tampone di lavaggio concentrato in un rapporto di 1:10. Conservare a 20–28°C. Utilizzare il tampone di lavaggio 1X entro<br />
21 giorni dalla preparazione.<br />
8. Capovolgere/svuotare manualmente le strisce. Aggiungere a ciascun pozzetto almeno 250 µL di tampone di lavaggio<br />
1X e capovolgere/svuotare le strisce. Ripetere la procedura per altre tre volte, per un totale di quattro lavaggi. Asciugare<br />
accuratamente le strisce su carta assorbente dopo l’ultimo lavaggio.<br />
Incubazione del substrato<br />
9. Aggiungere a ciascun pozzetto 150 µL di soluzione attiva di substrato. Dopo l’uso, gettare la rimanente soluzione di substrato attiva.<br />
10. Incubare per 30 minuti (± 5 minuti) a 20–28°C.<br />
23<br />
<strong>ITA</strong><strong>LIA</strong>NO
Arresto/Lettura<br />
11. Aggiungere a ciascun pozzetto 100 µL di soluzione bloccante. Aggiungere soluzione bloccante dello stesso tipo e a intervalli di<br />
tempo uguali all’aggiunta della soluzione di substrato.<br />
12. Leggere la densità ottica a 405 nm. Garantire che nei pozzetti non sia presente alcuna bolla grande e che le estremità inferiori<br />
delle strisce siano pulite. È necessario leggere le strisce entro 15 minuti dall’aggiunta della soluzione bloccante.<br />
13. È necessario fare uso del software di quantizzazione con equazione di adattamento della curva di calibrazione quadratica<br />
per l’analisi dei risultati del saggio Metra BAP.<br />
Equazione: y = A + Bx + Cx 2<br />
CONTROLLO DI QUALITÀ<br />
Il certificato di analisi compreso in questo kit è specifico per il lotto e deve essere usato per verificare che i risultati ottenuti dal<br />
laboratorio siano simili a quelli ottenuti da Quidel. Vengono forniti valori della densità ottica che sono da usare esclusivamente<br />
come direttiva. È possibile che i risultati ottenuti dal laboratorio differiscano.<br />
Vengono forniti i valori di gamma per il controllo di qualità. I valori di controllo sono destinati a verificare la validità della curva e i<br />
risultati del campione. È necessario che ciascun laboratorio stabilisca i propri parametri per la definizione dei limiti di accettazione<br />
del saggio. Se i valori di controllo NON sono all’interno dei limiti di accettazione del laboratorio, i risultati del saggio devono essere<br />
considerati discutibili e si dovranno ripetere i campioni.<br />
Se la densità ottica di Metra BAP Standard F è inferiore a 1,0, i risultati devono essere considerati discutibili e si dovranno ripetere i campioni.<br />
INTERPRETAZIONE DEI R<strong>IS</strong>ULTATI<br />
I risultati dei campioni sono espressi come U/L e non necessitano di correzione per la diluizione (a meno che il campione non<br />
sia stato diluito prima del test).<br />
Nel saggio Metra BAP, 1 unità rappresenta 1 µmol di pNPP idrolizzato per minuto a 25°C in un tampone di 2-amino-2-metil-1propanolo.<br />
Curva standard rappresentativa<br />
Livelli standard BAP: 0, 2, 20, 50, 80, 140 U/L<br />
LIMITI DELLA PROCEDURA<br />
Interferenza HAMA<br />
Alcuni individui hanno anticorpi anti-anticorpo di topo (HAMA), che possono causare interferenze nei saggi immunologici che<br />
impiegano anticorpi derivati dai topi. In particolare è stato riscontrato che i campioni di siero di pazienti che sono stati sottoposti a<br />
terapia o a procedure diagnostiche che comprendono l’infusione di anticorpo monoclonale di topo possono fornire risultati errati.<br />
Pertanto, per alcuni pazienti, si dovranno usare i risultati Metra BAP solo unitamente ai risultati provenienti da altre procedure<br />
diagnostiche e con informazioni disponibili della valutazione clinica del paziente.<br />
I campioni con elevazioni significative di attività di fosfatasi alcalina del fegato possono provocare risultati elevati in modo aberrante<br />
nel saggio Metra BAP.<br />
I pazienti affetti dal morbo di <strong>Page</strong>t con bassi livelli di tale malattia possono avere livelli di fosfatasi alcalina osso-specifica che<br />
rientrano nella gamma di riferimento di Metra BAP.<br />
R<strong>IS</strong>ULTATI DEL CAMPIONE<br />
I valori di riferimento BAP sono stati stabiliti per uomini normali con oltre 25 anni di età (n = 126), donne normali in premenopausa<br />
di età compresa fra 25 e 44 anni (n = 178) e donne normali in postmenopausa (n = 107). Per gli scopi della determinazione dei<br />
valori di riferimento, i soggetti normali sono stati definiti come:<br />
� fondamentalmente sani, nessun disordine delle ossa, endocrino o cronico<br />
� con cicli mestruali regolari (donne in premenopausa)<br />
� nessuna gravidanza o allattamento al seno (donne)<br />
� nessuna assunzione di farmaci attualmente accertata che influenzi il metabolismo osseo<br />
24<br />
Densità ottica (405 nm)<br />
3,0<br />
2,0<br />
1,0<br />
0,0<br />
0 25 50 75 100 125 150<br />
BAP (U/L)
È possibile che i valori siano influenzati da alcuni fattori come bassa produzione di estrogeni, minore assunzione di calcio o minore<br />
attività fisica. 8 La mancanza di estrogeni in donne in postmenopausa può causare un elevato ricambio osseo. 3,4 È necessario che<br />
ciascun laboratorio stabilisca il proprio valore normale di riferimento. I valori vengono espressi come intervalli di riferimento non<br />
parametrici (90% CI).<br />
Età (Anni) Valore (U/L) Medio<br />
Donne 25 - 44 Premenopausa 11,6 - 29,6 18,3<br />
Donne ≥ 45 Postmenopausa 14,2 - 42,7 25,0<br />
Uomini ≥ 25 15,0 - 41,3 23,2<br />
CARATTER<strong>IS</strong>TICHE DEL METODO<br />
Specifiche dell’anticorpo<br />
L’anticorpodella fosfatasi alcalina osso-specifica ha un’elevata affinità selettiva per l’isoformio della fosfatasi alcalina osso-specifica, minore<br />
reattività crociata rispetto alla forma epatica della fosfatasi alcalina e legame irrilevante con gli isoenzimi intestinali e della placenta.<br />
Isoenzima AP Reattività in %<br />
Osso 100<br />
Fegato 3 - 8<br />
Placenta 0<br />
Intestino 0,4<br />
Sensibilità<br />
Il limite di rilevamento minimo del saggio Metra BAP è di 0,7 U/L, determinato dal limite superiore di 3 DS in uno studio di<br />
precisione a standard zero.<br />
Recupero – Recupero dei picchi<br />
Il recupero dei picchi è stato determinato aggiungendo una quantità nota di BAP purificata ai campioni di siero con livelli diversi di<br />
BAP endogena. I risultati tipici vengono forniti dopo aver testato campioni di siero con concentrazioni di BAP basse, medie ed elevate<br />
e valutandoli in triplicato.<br />
Endogeno (U/L) Aggiunto (U/L) Osservato (U/L) Recupero (%)<br />
13,4 15,7 29,1 99<br />
17,6 37,5 55,3 99<br />
27,2 57,2 88,1 106<br />
Recupero - Linearità<br />
La linearità è stata determinata diluendo in modo seriale i campioni e confrontando i valori osservati con i risultati attesi. I risultati<br />
tipici vengono forniti di seguito.<br />
Campione Fattore di diluizione Osservato (U/L) Atteso (U/L) Recupero (%)<br />
1 non diluito 108,5 - -<br />
1:2 51,1 54,2 94<br />
1:4 25,8 27,1 99<br />
1:6 18,0 18,1 99<br />
2 non diluito 39,1 - -<br />
1:2 20,1 19,5 103<br />
1:4 10,3 9,8 105<br />
1:6 6,7 6,5 103<br />
3 non diluito 58,4 - -<br />
1:2 29,9 29,2 102<br />
1:4 15,7 14,6 108<br />
1:6 9,7 9,7 100<br />
Precisione<br />
La precisione all’interno di una stessa corsa è stata determinata per ≥ 21 ripetizioni di 3 campioni su 3 piastre da ciascuno dei 3 lotti<br />
di kit (9 piastre in totale). La precisione fra le corse è stata determinata dall’analisi di 3 campioni in 6 piastre separate da ciascuno dei<br />
3 lotti di kit (18 piastre in totale). I risultati tipici vengono forniti di seguito.<br />
BAP (U/L BAP) All’interno di una stessa corsa 1 CV% Fra le corse 2 CV%<br />
12 5,8 5,2<br />
35 3,9 7,6<br />
100 5,2 5,0<br />
1 n=21 2 n=6 corse<br />
25<br />
<strong>ITA</strong><strong>LIA</strong>NO
Sostanze interferenti<br />
Le seguenti sostanze sono state sottoposte a test alle concentrazioni specificate e non interferiscono con il saggio.<br />
26<br />
Sostanza Concentrazione<br />
Emoglobina 500 mg/dL<br />
Bilirubina 25 mg/dL<br />
Trigliceridi 1420 mg/dL<br />
Proteina totale 6,0 g/dL †<br />
Proteina totale 15,6 g/dL†<br />
Proteina totale 6,0 g/dL ‡<br />
Proteina totale 15,6 g/dL‡<br />
† Proteina con acqua<br />
‡ Proteina con BAP (concentrazione di BAP = 43,6 U/L)<br />
Interferenze di farmaci<br />
Sono state aggiunte varie concentrazioni di farmaci a tre gruppi di siero separati, contenenti circa 35, 70 e 105 U/L BAP, che<br />
sono stati analizzati in triplicato. I farmaci e le concentrazioni più elevate sottoposte a test sono state:<br />
Sostanza Concentrazione più elevata<br />
Etidronato 350 µg/mL<br />
Estrogeno 100 µg/mL<br />
Ibuprofene 150 µg/mL<br />
Acetominofene 350 µg/mL<br />
Aspirina 350 µg/mL<br />
Calcitonina - umana 80 µg/mL<br />
Calcitonina - del salmone 80 µg/mL<br />
Calcio 500 µg/mL<br />
Miscela di noretindrone/etinil- estradiolo (contraccettivo orale) 3 mg/mL<br />
Vitamina D 400 IU/mL<br />
Precisione<br />
Sono stati eseguiti studi comparativi per valutare le correlazioni fra le misure della fosfatasi alcalina osso-specifica del siero (BAP)<br />
ottenute usando il saggio Metra BAP rispetto ai risultati ottenuti usando i tre metodi attualmente contrassegnati per la misurazione<br />
della fosfatasi alcalina totale (TAP) o BAP. Gli studi sono stati condotti in un sito per indagine clinica indipendente, utilizzando i sieri<br />
di 114 pazienti con il morbo di <strong>Page</strong>t e di 464 soggetti sani. Il primo metodo comparativo è stata una tecnica colorimetrica per la<br />
misurazione di TAP. Il coefficiente di correlazione (r) ottenuto fra tale metodo colorimetrico e il saggio Metra BAP è stato di 0,99. Il<br />
secondo metodo comparativo è stato un metodo di elettroforesi per la determinazione dei livelli dell’isoenzima di BAP (r = 0,99).<br />
Il terzo metodo comparativo è stato un saggio immunoradiometrico per la misurazione di BAP (r = 0,99). Dei 114 pazienti affetti<br />
dal morbo di <strong>Page</strong>t, 101 pazienti avevano valori maggiori rispetto al limite superiore dei valori di riferimento per il saggio Metra BAP.<br />
Tredici pazienti avevano valori inferiori rispetto al limite superiore dei valori di riferimento.<br />
STUDI CLINICI<br />
Uso di Metra BAP per il monitoraggio dell’efficacia della terapia anti-riassorbente nell’osteoporosi<br />
Uno studio policentrico, randomizzato e controllato è stato condotto con successo per stabilire la sicurezza e l’efficacia del saggio<br />
Metra BAP, al fine di monitorare i cambiamenti nelle concentrazioni di BAP nel siero associate a una terapia anti-riassorbente con<br />
amino-bisfosfonato (alendronato). I soggetti, prelevati da uno studio più ampio sull’efficacia dell’alendronato per il trattamento<br />
dell’osteoporosi, 7 erano donne in postmenopausa, con un’età compresa tra 45 e 84 anni (media 64 ± 7 anni), affette da osteoporosi<br />
(basata sulla presentazione clinica o sulla densità minerale dell’osso della colonna vertebrale lombare [LSBMD] con oltre 2,5<br />
deviazioni standard sotto la media delle donne mature in premenopausa). Al momento della partenza, i soggetti idonei sono stati<br />
randomizzati in modo da ricevere 10 mg di alendronato e 500 mg di calcio al giorno (ALN) oppure un placebo e 500 mg di calcio al<br />
giorno (CTL). I campioni di siero sono stati ottenuti alla partenza, a 3, 6 e 12 mesi da tutti i soggetti.<br />
La concentrazione media di BAP alla partenza (± 1DS) (14,6 ± 5,4 in contrapposizione a 14,6 ± 4,6, p = 0,900) e quella di LSBMD<br />
(0,74 ± 0,10 in contrapposizione a 0,75 ± 0,09, p = 0,751) erano valori simili sia per ALN che per CTL. Le distribuzioni dei valori<br />
BAP alla partenza in ALN e CTL sono descritte nella seguente figura in proporzione rispetto alla popolazione dello studio.
Proporzione della popolazione (%)<br />
Distribuzione dei livelli BAP alla partenza<br />
BAP era significativamente più bassa per ALN che per CTL a 3 (9,6 ± 3,5 in contrapposizione a 13,4 ± 4,0, p
28<br />
Proporzione della popolazione (%)<br />
Distribuzione del cambio di percentuale nei livelli BAP dopo 12 mesi<br />
Terapia con alendronato (ALN) o calcio (CTL)<br />
CTL a 12 mesi<br />
ALN a 12 mesi<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
< -70,0%<br />
-70,0 to -60,1%<br />
A 12 mesi, i soggetti del gruppo ALN hanno aumentato la LSBMD se confrontati con quelli del CTL (p < 0,00001) come mostrato<br />
nella seguente tabella.<br />
Modifiche in LSBMD (media ± DS)<br />
-60,0 to -50,1%<br />
-50,0 to -40,1%<br />
-40,0 to -30,1%<br />
n Alla partenza (g/cm 2 ) 12 mesi (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 159 0,75 ± 0,09 0,74 ± 0,09 -0,6 ± 3,4<br />
ALN 121 0,74 ± 0,10 0,79 ± 0,10 5,5 ± 4,1<br />
Questi risultati indicano che il saggio Metra BAP è sicuro ed efficace per il monitoraggio dell’effetto anti-riassorbente della terapia<br />
dell’amino-bisfosfonato (alendronato) fra soggetti affetti da osteoporosi.<br />
Uso di Metra BAP per il monitoraggio della terapia ormonale anti-riassorbente e per la previsione della<br />
risposta scheletrica (densità minerale dell’osso) in donne in postmenopausa<br />
Terapia di monitoraggio:<br />
Uno studio policentrico, randomizzato e controllato, è stato condotto con successo per stabilire la sicurezza e l’efficacia<br />
del saggio Metra BAP, al fine di monitorare i cambiamenti delle concentrazioni di BAP nel siero associate a una terapia<br />
anti-riassorbente con estrogeni/progestina. L’accresciuto ricambio osseo e la perdita significativa dell’osso sono spesso associati<br />
alla mancanza di estrogeni in postmenopausa. La sostituzione degli estrogeni ha dimostrato di diminuire efficacemente il ricambio<br />
dell’osso e di proteggere la massa ossea esistente. 3,6 I soggetti erano donne in postmenopausa, con un’età compresa tra 45 e 64 anni<br />
(in media 56 ± 4 anni), che hanno subito una menopausa naturale o chirurgica negli ultimi 10 anni. Alla partenza, i soggetti idonei<br />
sono stati randomizzati in un gruppo di trattamento attivo (HRT) con: Premarin® (0,625 mg al giorno) con progestina placebo,<br />
Premarin® (0,625 mg al giorno) e una progestina attiva (Provera® 2,5 mg/al giorno, con continuità, Provera® 10 mg/al giorno,<br />
ciclicamente o progesterone micronizzato 200 mg/al giorno, ciclicamente); oppure in un gruppo di controllo (CTL) con: estrogeno<br />
placebo e progestina placebo. I campioni di siero sono stati ottenuti alla partenza e a 12 mesi da tutti i soggetti.<br />
La concentrazione media di BAP alla partenza (± 1DS) (20,7 ± 7,6 in contrapposizione a 20,3 ± 6,8 U/L, p = 0,704) e quella di<br />
LSBMD (0,97 ± 0,17 in contrapposizione a 0,97 ± 0,15 g/cm2 , p = 0,970) erano simili per i gruppi CTL e HRT. Le distribuzioni dei<br />
valori BAP alla partenza in HRT e CTL sono descritte nella seguente figura in proporzione rispetto alla popolazione dello studio.<br />
Distribuzione dei livelli BAP alla partenza<br />
CTL<br />
HRT<br />
30,0%<br />
Proporzione della popolazione (%)<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-30,0 to -20,1%<br />
Diminuzione del ricambio osseo Cambio in % Aumento del ricambio osseo<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
11,1 – 13<br />
13,1 – 15<br />
15,1 – 17<br />
17,1 – 19<br />
Diminuzione del ricambio osseo U/L BAP<br />
Aumento del ricambio osseo<br />
19,1 – 21<br />
-20,0 to -10,1%<br />
21,1 – 23<br />
-10,0 to -0,1%<br />
23,1 – 25<br />
0,0 to 9,9%<br />
25,1 – 27<br />
10,0 to 19,9%<br />
27,1 – 29<br />
≥ 20,0%<br />
> 29
BAP era significativamente più basso per HRT che per CTL a 12 mesi (13,3 ± 5,0 in contrapposizione a 21,9 ± 7,9 U/L,<br />
p < 0,00001). Le distribuzioni dei valori di BAP dopo 12 mesi nei gruppi HRT e CTL sono descritte nella seguente figura.<br />
Proporzione della popolazione (%)<br />
Distribuzione dei livelli BAP dopo 12 mesi<br />
Terapia con estrogeni/progestina (HRT) o placebo (CTL)<br />
La concentrazione media di BAP (± 1DS) nei soggetti CTL è aumentata leggermente rispetto alla partenza al +9,8% (± 33,2%) a<br />
12 mesi (p = 0,08), mentre le concentrazioni di BAP nei soggetti HRT è diminuita dal momento della partenza a –32,4 (± 21,5%)<br />
a 12 mesi (p < 0,00001). I soggetti del gruppo HRT erano quelli che, più probabilmente dei soggetti CTL, dimostravano delle perdite<br />
di BAP oltre il cambio minimo di percentuale 12 , con il 73,3% di individui HRT e il 3,4% di individui CTL, diminuendo di ≥ 25% a<br />
12 mesi. Le distribuzioni del cambio di percentuale rispetto alla partenza nei valori BAP dopo 12 mesi nei gruppi ALN o CTL sono<br />
descritte nella seguente figura.<br />
Proporzione della popolazione (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
11,1 – 13<br />
Distribuzione del cambio di percentuale nei livelli BAP dopo<br />
12 mesi terapia con alendronato (ALN) o calcio (CTL)<br />
A 12 mesi, i soggetti del gruppo HRT hanno aumentato la LSBMD se confrontati con quelli del CTL (p 29<br />
CTL<br />
HRT<br />
≥ 20,0%<br />
29<br />
<strong>ITA</strong><strong>LIA</strong>NO
Previsione della risposta scheletrica:<br />
La seguente figura descrive la diminuzione in % dei valori di BAP dalla partenza a 12 mesi per quartile per il gruppo trattato con<br />
trattamento attivo HRT. I soggetti nel quartile più elevato (Q1: massima diminuzione %) hanno mostrato il massimo aumento di<br />
LSBMD in risposta a HRT.<br />
30<br />
Cambio in % di LSBMD a 12 mesi (+/- SEM)<br />
Gruppo HRT – Valori del cambio in % di BAP a 12 mesi stratificati per<br />
quartile e corrispondente cambio in % di LSBMD a 12 mesi<br />
La seguente figura fornisce l’analisi di regressione lineare (y = -0,060x + 0,011, r = -0,51, p < 0,001) del cambio in percentuale<br />
dalla partenza a BAP a 12 mesi e il cambio in percentuale dalla partenza della BMD a 12 mesi per tutti i soggetti dello studio<br />
(placebo e trattati).<br />
Cambio di percentuale di LSBMD a 12<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
1<br />
0<br />
Q1 (-66,5 to -45,9) Q2 (-45,9 to -36,0)<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-5,0%<br />
-10,0%<br />
Studio HRT – Regressione lineare del cambio di % di<br />
LSBMD e BAP dalla partenza a 12 mesi<br />
-15,0%<br />
-60,0% -40,0% -20,0%<br />
L’analisi della tabella di contingenza ha mostrato che una diminuzione di ≥ 25% in BAP a 12 mesi era significativamente associata<br />
(p < 0,0001) a una risposta scheletrica positiva rispetto a HRT (aumento in BMD) a 12 mesi. Gli intervalli di confidenza binomiale<br />
dell’85% (approssimazione di second’ordine) per la sensibilità e la specificità dell’uso di una diminuzione del 25% di BAP per la<br />
previsione di una risposta a HRT sono:<br />
Sensibilità = 77% (95% CI 75%, 82%); Specificità = 61% (95% CI 41%, 78%).<br />
Questi risultati indicano che il cambio % della concentrazione di BAP può essere utilizzato per prevedere il grado di risposta<br />
scheletrica (BMD) al trattamento di HRT.<br />
ASS<strong>IS</strong>TENZA<br />
Per emettere un ordine oppure per ricevere assistenza tecnica, contattare un funzionario Quidel al numero verde +1 408-616-4301,<br />
dal lunedì al venerdì, dalle 8:00 alle 17:00, ora degli stati del Pacifico. È possibile trasmettere gli ordini anche per fax al numero<br />
+1 408-616-4310.<br />
Per servizi al di fuori degli Stati Uniti, contattare il distributore locale.<br />
p < 0,001<br />
Q3 (-36,0 to -23,8) Q4 (-23,8 to 167,3)<br />
Quartili per cambio di % in BAP a 12 mesi<br />
y = -0,060x + 0,011<br />
r = 0,51<br />
p < 0,001<br />
0,0% 20,0% 40,0% 60,0%<br />
Cambio di percentuale di BAP a 12 mesi
GUIDE RAPIDE DES ÉTAPES DE L’ESSAI<br />
1. Ajouter 125 µL de tampon.<br />
2. Ajouter 20 µL de solutions étalon, solutions témoin, et échantillons ; brasser.<br />
3. Incuber pendant 3 heures ± 10 minutes à 20 – 28 °C.<br />
4. Laver 4 fois avec le tampon de lavage 1X.<br />
5. Ajouter 150 µL de solution de substrat active à 20 – 28 °C.<br />
6. Incuber pendant 30 heures ± 5 minutes à 20 – 28 °C.<br />
7. Ajouter 100 µL de solution d’arrêt et lire la densité optique à 405 nm.<br />
APPLICATION<br />
L’essai immunoenzymatique de la phosphatase alcaline osseuse Metra BAP fournit une mesure quantitative de l’activité sérique<br />
de la phosphatase alcaline d’origine osseuse et sert d’indicateur de l’activité ostéoblastique. La mesure de la phosphatase alcaline<br />
osseuse est destinée comme aide à la :<br />
� Prise en charge de l’ostéoporose post-ménopausique et de la maladie de <strong>Page</strong>t ;<br />
� Surveillance des femmes ménopausées sous traitement hormonal ou traitement par bisphosphonate ;<br />
� Prédiction de la réaction osseuse au traitement hormonal chez les femmes ménopausées.<br />
APER<strong>Ç</strong>U ET EXPLICATION<br />
L’isoforme squelettique ou d’origine osseuse de la phosphatase alcaline est une glycoprotéine tétramérique qui se trouve à la surface<br />
cellulaire des ostéoblastes. 1 Les ostéoblastes sont les cellules responsables de la synthèse de la nouvelle matrice osseuse et de la<br />
minéralisation. La lumière n’a pas été complètement faite sur la fonction de la phosphatase alcaline osseuse, bien que son rôle en<br />
matière de minéralisation osseuse ait été confirmé. 1,2,3<br />
L’os est perpétuellement sujet à un processus métabolique appelé remaniement. 3,4 Ce dernier comprend la résorption osseuse,<br />
induite par l’action des ostéoclastes, et un processus de formation, la formation osseuse, induite par l’action des ostéoblastes. 3,4 Le<br />
remaniement osseux est nécessaire au maintien et à la santé de l’os et il y est étroitement associé ; cela signifie que la résorption<br />
et la formation sont équilibrées. 3,4 Dans les cas de métabolisme osseux anormaux ce processus est dissocié et, quand la résorption<br />
est supérieure à la formation, ceci entraîne une déminéralisation osseuse nette qui peut conduire à l’ostéoporose, 3,4 ou au tissu<br />
osseux désordonné des lésions de la maladie de <strong>Page</strong>t. 5 La mesure de marqueurs biochimiques spécifiques de ces événements de<br />
remaniement fournit des données analytiques concernant le degré de métabolisme osseux ou « vitesse de renouvellement ». 3,4<br />
L’ostéoporose est une maladie métabolique des os qui se caractérise par un remaniement osseux anormal. C’est une maladie<br />
systémique du squelette caractérisée par une masse osseuse basse et une altération de la microarchitecture du tissu osseux, à<br />
l’origine d’une diminution de la résistance aux fractures. 6 Le type d’ostéoporose le plus fréquent est celui qui touche les femmes<br />
ménopausées suite à la carence en œstrogènes induite par la cessation de la fonction ovarienne. 3 Le rétablissement des taux<br />
d’œstrogènes précédant la ménopause par le traitement de substitution empêche la déminéralisation osseuse et l’ostéoporose. 3,6<br />
Les œstrogènes et une classe de composés connus sous le nom de bisphosphonates sont des traitements inhibiteurs de la résorption<br />
osseuse, qui peuvent être utilisés pour prévenir la déminéralisation osseuse ou traiter l’ostéoporose. 3,6,7<br />
L’ostéoporose peut également résulter d’un volume maximal et inadéquat du tissu osseux atteint pendant les années de croissance,<br />
d’un déséquilibre du remaniement osseux dû à l’âge, présentant un excès de résorption significatif et un certain nombre de<br />
conditions cliniques et traitements qui induisent l’ostéopénie ou des déséquilibres du remaniement osseux. 3 Ces derniers incluent les<br />
maladies endocriniennes telles que l’hypogonadisme, l’hyperthyroïdie, l’hyperparathyroïdisme, et l’hypercortisolisme ; l’insuffisance<br />
rénale ; les ostéosarcomes métastatiques ; les maladies gastrointestinales liées à la nutrition et au métabolisme minéral ; les<br />
maladies des tissus conjonctifs ; le myélome multiple ; l’immobilisation chronique, l’alcoolisme, l’usage du tabac, et le traitement<br />
chronique à l’héparine ou aux corticostéroïdes. 3<br />
La maladie osseuse de <strong>Page</strong>t est un trouble focal entraînant des douleurs et une déformation squelettique chez les patients souffrant<br />
des symptômes. 5 Les lésions de la maladie de <strong>Page</strong>t sont caractérisées par une matrice osseuse d’une structure fortement anormale<br />
résultant de taux excessifs de l’activité de remaniement. Les lésions apparaissent principalement au niveau du crâne, de la colonne<br />
vertébrale, du bassin et des os longs, et elles peuvent entraîner des fractures et une détérioration neurologique. 5 L’étiologie de<br />
la maladie de <strong>Page</strong>t est inconnue mais des hypothèses impliquant des facteurs génétiques et viraux sont probantes. 5 On utilise<br />
actuellement les bisphosphonates et la calcitonine pour ramener le taux élevé d’activité biochimique à des taux normaux, ce qui<br />
permet la restauration de la structure osseuse normale. 9<br />
La phosphatase alcaline osseuse fournit, en tant que mesure quantitative d’un marqueur de la vitesse de renouvellement osseux,<br />
des informations utiles sur le remaniement osseux dans le cas de l’ostéoporose et de la maladie de <strong>Page</strong>t, et sur les changements<br />
induits par traitements inhibiteurs de la résorption osseuse sur l’évolution de la maladie. 10-12 Pour le dosage de la phosphatase<br />
alcaline osseuse Metra BAP, on a employé une technologie à base d’anticorps pour produire des anticorps monoclonaux démontrant<br />
la spécificité de la phosphatase alcaline osseuse. 10 La spécificité de l’anticorps monoclonal utilisée dans l’essai permet une<br />
quantification simple, reproductible, pratique et directe de l’activité sérique de la phosphatase alcaline osseuse.<br />
PRINCIPE DU PROCÉDÉ<br />
La phosphatase alcaline osseuse Metra BAP est un essai immunoenzymatique sur plaque de microtitration employant un<br />
anticorps monoclonal anti-phosphatase alcaline osseuse, lequel est enduit sur la plaque pour capturer la phosphatase alcaline<br />
osseuse contenue dans l’échantillon. L’activité enzymatique de la phosphatase alcaline osseuse capturée est détectée à l’aide<br />
d’un substrat pNPP.<br />
31<br />
FRAN<strong>Ç</strong>A<strong>IS</strong>
RÉACTIFS ET MATÉRIAUX FOURN<strong>IS</strong><br />
96 essais pour la phosphatase alcaline d’origine osseuse<br />
L’EIA de la phosphatase alcalcaline osseuse Metra BAP contient les éléments suivants :<br />
A Solutions étalon de Articles 4395 à 4400 de 0,3 ml chacun<br />
B phosphatase alcaline<br />
C osseuse A à F,<br />
D (A = 0, B = 2, C = 20, D = 50, E = 80, F = 140 U/L de phosphatase alcaline osseuse)<br />
E Phosphatase alcaline osseuse purifiée des cellules d’ostéosarcome SAOS-2 dans une solution tamponnée contenant du<br />
F chlorure de magnésium, du sulfate de zinc, un agent de surface, une protéine-support, un colorant bleu, et de l’azoture de<br />
sodium (0,05 %) comme conservateur.<br />
L Solutions témoin à Articles 4401, 4402 de 0,3 ml chacun<br />
H concentration<br />
faibles/élevées<br />
Phosphatase alcaline osseuse purifiée des cellules d’ostéosarcome SAOS-2 dans une solution tamponnée contenant du<br />
chlorure de magnésium, du sulfate de zinc, un agent de surface, une protéine-support, un colorant bleu, et de l’azoture de<br />
sodium (0,05 %) comme conservateur.<br />
q Plaques enduites Article 4660 12 chacun<br />
Anticorps monoclonal de souris anti-phosphatase alcaline osseuse de type IgG purifié, absorbé par les puits de la microplaque.<br />
w Solution d’arrêt Article 4702 15 ml<br />
NaOH 0,5N<br />
e Tampon de lavage X10 Article 4703 55 ml<br />
Détergent non-ionique dans une solution tampon contenant de l’azoture de sodium (0,05 %) comme conservateur.<br />
r Tampon d’essai Article 4403 27 ml<br />
Solution tamponnée contenant du chlorure de magnésium, du sulfate de zinc, un agent de surface, et de l’azoture de sodium<br />
(0,05 %) comme conservateur.<br />
t Substrat tampon Article 4404 3 × 10 ml<br />
Solution de 2-amino-2-méthyl-1-propanol contenant du chlorure de magnésium HEDTA, du sulfate de zinc, et un azoture de<br />
sodium (0,05 %) comme conservateur.<br />
y Substrat en comprimés Article 0012 3 × 20 mg<br />
p-Nitrophényl phosphate.<br />
MATÉRIAUX NÉCESSAIRES NON FOURN<strong>IS</strong><br />
Micropipettes pour l’injection de 20 µL et 100 à 300 µL<br />
Eléments appropriés à la mesure de 100 à 300 ml de liquide<br />
Récipient pour dilution de tampon de lavage<br />
Eau dé-ionisée ou distillée<br />
Lecteur de plaque capable de mesurer la densité optique à A405 > 2,0<br />
Un logiciel avec ajustement des courbes à étalonnage quadratique<br />
AVERT<strong>IS</strong>SEMENTS ET PRÉCAUTIONS<br />
1. Pour diagnostic in vitro.<br />
2. Traiter les prélèvements d’échantillons comme du matériel potentiellement nocif. Suivre les précautions standard lors de la<br />
manipulation du contenu de ce trousseau et de tous les échantillons de patients.<br />
3. Eliminer les récipients et leur contenu inutilisé conformément aux dispositions réglementaires du gouvernement fédéral, de<br />
l’Etat et de la localité.<br />
4. Utiliser les réactifs fournis intégralement avant la date de péremption indiquée sur l’étiquette de l’emballage.<br />
5. Suivre les recommandations concernant la conservation des réactifs de l’essai.<br />
6. Ne pas utiliser les plaques enduites si la poche est percée.<br />
7. Tester chaque échantillon en double.<br />
8. Le NaOH 0,5N est considéré corrosif et peut provoquer des brûlures graves. Ne pas ingérer. Eviter le contact avec la peau, les yeux<br />
ou les vêtements. En cas de contact, laver à l’eau. En cas d’ingestion, appeler un médecin.<br />
9. L’azoture de sodium est utilisé comme conservateur. Un contact accidentel ou une ingestion de tampons contenant de l’azoture<br />
de sodium peut provoquer une irritation de la peau, des yeux, ou de la bouche. Utiliser les tampons uniquement à des fins<br />
prévues et éviter le contact avec les acides. L’azoture de sodium peut réagir avec les conduites en plomb et en cuivre pour former<br />
des azides métalliques très explosifs. Lors de la mise au rebut, rincer à grande eau pour éviter une accumulation d’azoture.<br />
10. Le tampon de substrat contient du 2-amino-2-méthyl-1-propanol et peut causer des irritations des yeux et/ou de la peau en<br />
cas de contact prolongé. Porter un vêtement, des gants et un appareil de protection des yeux /du visage appropriés. Les zones<br />
ayant été en contact avec le produit doivent être rincées immédiatement à l’eau et au savon.<br />
11. L’utilisation de pipettes multi-canaux ou de robots pippeteurs est recommandée pour assurer la distribution rapide des réactifs.<br />
12. Pour une mesure exacte des échantillons, ajouter les échantillons et les solutions étalon avec précision. Pipetter avec soin, en<br />
utilisant uniquement un équipement étalonné.<br />
32
13. Diluer les échantillons supérieurs à 140 U/L dans le tampon essai et tester à nouveau. Inclure le facteur de dilution dans le calcul final.<br />
14. Cet essai peut être effectué avec n’importe quelle méthode de lavage validée.<br />
PRÉPARATION DES RÉACTIFS<br />
Amener les réactifs et matériaux de l’essai à une température de 20 à 28 °C avant l’utilisation. Après avoir<br />
enlevé les réactifs et matériaux nécessaires, remettre les éléments inutilisés à une température de 2 à 8 °C.<br />
Plaques enduites<br />
Retirer le support des puits de la microplaque et le nombre nécessaire de plaques enduites de la poche (Se référer au tableau de la<br />
section PROCÉDURE DE L’ESSAI). S’assurer que la poche contenant toutes plaques inutilisées est complètement fermée.<br />
Tampon de lavage<br />
Préparer la quantité nécessaire de tampon de lavage 1X (voir tableau) en diluant 10X le concentré de lavage à 1/10 avec de l’eau<br />
dé-ionisée. Conserver entre 20 et 28 °C. Utiliser le tampon de lavage 1X dans un délai de 21 jours de préparation.<br />
Solution de substrat active<br />
Préparer la solution de substrat active dans un délai d’une heure d’utilisation. Placer un comprimé de substrat dans chaque flacon<br />
nécessaire de substrat tampon à température ambiante (voir tableau). Attendre 30 à 60 minutes jusqu’à dissolution du(des)<br />
comprimé(s). Secouer le(s) flacon(s) énergiquement pour mélanger complètement. Jeter le reste de la solution de substrat active<br />
après utilisation.<br />
CONSERVATION<br />
Conserver le trousseau à une température de 2 à 8 °C. Ne pas congeler. Conserver les réactifs inutilisés à une température de 2 à 8 °C.<br />
Equilibrer les réactifs à 20 – 28 °C avant utilisation. Conserver le concentré de lavage 1X (dilué 10X) à 20 – 28 °C.<br />
PRÉLÈVEMENT DE SPÉCIMENS ET CONSERVATION<br />
Prélever le sérum à l’aide de la technique de ponction veineuse standard. Les spécimens doivent être prélevés sans anticoagulant<br />
de manière à éviter l’hémolyse. Attendre que le sang coagule et séparer le sérum par centrifugation. Le sérum peut être conservé<br />
pendant 5 jours entre 2 et 8 °C, à ≤ -40 °C pendant 12 mois, ou à ≤ -80 °C pendant 36 mois. Ne pas soumettre les échantillons à<br />
plus de 3 cycles de congélation/décongélation.<br />
Le sérum « hors caillot », le sérum recueilli sur tube séparateur de sérum, le plasma recueilli sur héparine Na et le plasma recueilli<br />
sur héparine Li produisent des résultats essentiellement équivalents. Il est recommandé de ne pas préparer les échantillons de<br />
plasma à l’aide d’agents complexants tels que l’EDTA ou le citrate.<br />
PROCÉDÉ DU DOSAGE<br />
Lire la notice produit dans son intégralité avant de commencer l’essai.<br />
Voir PREPARATION DES REACTIFS avant de poursuivre.<br />
Déterminer la quantité de chaque réactif nécessaire pour le nombre de plaques à utiliser.<br />
Quantité de plaques 4 6 8 12<br />
Quantité d’échantillons (testés en double) 8 16 24 40<br />
Substrat (flacon) 1 1 2* 2*<br />
Tampon de lavage 1X (ml) 100 150 200 300<br />
*Lorsque plus d’un flacon ou d’une fiole est utilisé, associé les contenus et mélanger avant d’utiliser.<br />
Incubation d’échantillon<br />
1. Retirer le support des puits de la plaque de microtitration et le nombre nécessaire de plaques enduites de la poche (voir tableau)<br />
avant utilisation. S’assurer que la poche en aluminium contenant toutes les plaques inutilisées est complètement fermée.<br />
2. Placer le nombre désiré de plaques enduites dans le support des puits. Libeller les plaques pour éviter de les confondre en cas de<br />
retrait accidentel du support des puits.<br />
3. Ajouter 125 µL de tampon essai à chaque puits.<br />
4. Ajouter 20 µL de solution étalon, de solution témoin ou d’échantillon à chaque puits. Ne pas mélanger au tampon essai<br />
en pipettant à plusieurs reprises. Cette étape doit être réalisée dans un délai de 30 minutes. Brasser délicatement les<br />
plaques pour garantir le mélange de l’échantillon et du tampon.<br />
5. Incuber pendant 3 heures (± 10 minutes) à 20 – 28 °C.<br />
6. Préparer la solution de substrat active dans un délai d’une heure d’utilisation. Placer un comprimé de substrat dans chaque<br />
flacon nécessaire de substrat tampon à 20 – 28 °C (voir tableau). Attendre 30 à 60 minutes jusqu’à dissolution du(des)<br />
comprimé(s). Secouer le(s) flacon(s) énergiquement pour mélanger complètement.<br />
Etape du lavage<br />
7. Préparer la quantité nécessaire de tampon de lavage 1X (voir tableau) en diluant 10X le tampon de lavage à 1/10 avec de l’eau<br />
dé-ionisée. Conserver entre 20 et 28 °C. Utiliser le tampon de lavage 1X dans les 21 jours de préparation.<br />
8. Inverser/vider manuellement les plaques. Ajouter au moins 250 µL de tampon de lavage 1X à chaque puits, et inverser/vider<br />
manuellement les plaques. Répéter cette opération trois fois de plus pour arriver à un total de quatre lavages. Décanter<br />
énergiquement les plaques à sec sur des essuie-tout après le dernier lavage.<br />
Incubation du substrat<br />
9. Ajouter 150 µL de solution de substrat active à chaque puits. Jeter le reste de la solution de substrat active après utilisation.<br />
10. Incuber pendant 30 minutes (± 5 minutes) à 20 – 28 °C.<br />
33<br />
FRAN<strong>Ç</strong>A<strong>IS</strong>
Arrêt/Lecture<br />
11. Ajouter 100 µL de solution d’arrêt à chaque puits. Ajouter la solution d’arrêt selon le même modèle et les mêmes intervalles de<br />
temps que pour l’ajout de la solution de substrat.<br />
12. Lire la densité optique à 405 nm. S’assurer qu’aucune grosse bulle ne soit présente dans les puits et que les fonds de plaques<br />
soient propres. Les plaques doivent être lues dans les 15 minutes suivant l’ajout de la solution d’arrêt.<br />
13. Un logiciel de quantification avec une équation d’ajustement des courbes à étalonnage quadratique doit être utilisé pour<br />
analyser les résultats de la phosphatase alcaline osseuse de l’essai Metra BAP.<br />
Équation : y = A + Bx + Cx 2<br />
CONTRÔLE DE QUALITÉ<br />
Le certificat d’analyse compris dans ce trousseau est spécialement conçu pour le lot et doit être utilisé pour vérifier que les résultats<br />
obtenus par votre laboratoire sont semblables à ceux obtenus par Quidel. Les valeurs de densité optique sont fournies, et elles<br />
doivent être utilisées comme référence uniquement. Les résultats obtenus par votre laboratoire peuvent être différents.<br />
Les plages de contrôle de qualité sont fournies. Les valeurs de contrôle sont destinées à vérifier la validité du tracé et les résultats<br />
de l’échantillon. Chaque laboratoire devrait établir ces propres paramètres en matière de limites d’essais acceptables. Si les valeurs<br />
de contrôle ne sont PAS dans les limites d’acceptation de votre laboratoire, résultats de l’essai doivent être remis en question, et les<br />
prélèvements recommencés.<br />
Si la densité optique de la solution étalon F de phosphatase alcaline Metra BAP est inférieure à 1,0, les résultats doivent être remis en<br />
question, et les prélèvements recommencés.<br />
INTERPRÉTATION DES RÉSULTATS<br />
Les résultats des prélèvements sont exprimés en U/L et n’ont pas besoin d’être corrigés pour la dilution (à moins que l’échantillon<br />
n’ait été dilué avant le test).<br />
Dans le dosage de la phosphatase alcaline osseuse Metra BAP, 1 unité représente 1 µmol de pNPP hydrolysée par minute à 25 °C<br />
dans un tampon de 2-amino-2-méthyl-1-propanol.<br />
Courbe de concordance représentative<br />
Taux standard de phosphatase alcaline osseuse : 0, 2, 20, 50, 80, 140 U/L<br />
LIM<strong>ITA</strong>TIONS DU PROCÉDÉ<br />
Interférences HAMA<br />
Certaines personnes ont des anticorps humains anti-souris (HAMA), qui peuvent provoquer des interférences dans les immunoessais<br />
employant des anticorps dérivés de souris. Il a notamment été signalé que les prélèvements de sérum de patients ayant subit un<br />
traitement ou des procédés de diagnostic comprenant l’infusion d’anticorps monoclonaux de souris peuvent être à l’origine de<br />
résultats erronés. Les résultats de la phosphatase alcaline osseuse Metra BAP de tels patients doivent par conséquent être utilisés<br />
uniquement en conjonction avec les résultats d’un autre procédé de diagnostic, et avec les informations provenant de l’évaluation<br />
clinique du patient.<br />
Les prélèvements présentant des élévations marquées de l’activité de la phosphatase alcaline hépatique peuvent provoquer des<br />
résultats élevés aberrants dans le dosage de la phosphatase alcaline Metra BAP.<br />
Les patients qui sont atteints de la maladie de <strong>Page</strong>t et présentent de faibles taux de maladie peuvent avoir des taux de phosphatase<br />
alcaline d’origine osseuse dans la plage de référence de la phosphatase alcaline Metra BAP.<br />
VALEURS D’ÉCHANTILLON<br />
Les plages de référence de la phosphatase alcaline ont été établies pour des hommes normaux âgés de plus de 25 ans (n = 126),<br />
des femmes non ménopausées normales âgées de 25 à 44 ans (n = 178), et des femmes ménopausées normales (n = 107). Dans<br />
l’optique d’établir des plages de référence, les sujets normaux furent définis comme :<br />
34<br />
Densité optique (405 nm)<br />
3,0<br />
2,0<br />
1,0<br />
0,0<br />
0 25 50 75 100 125 150<br />
Phosphatase alcaline osseuse (U/L)
� Fondamentalement sains, sans trouble osseux, endocrinien, ou chronique<br />
� Cycles menstruels réguliers (femmes non ménopausées)<br />
� Pas enceinte ou allaitant (femmes)<br />
� Ne prenant actuellement aucun médicament connu pour son influence sur le métabolisme.<br />
Les valeurs peuvent être influencées par des facteurs tels qu’une faible production d’œstrogènes, un faible apport en calcium<br />
ou une activité physique limitée. 8 La carence en œstrogènes chez la femme ménopausée peut entraîner une vitesse élevée de<br />
renouvellement osseux. 3,4 Chaque laboratoire devrait établir sa propre plage de référence standard. Les plages sont exprimées en<br />
tant qu’intervalles de référence non paramétriques (IC de 90 %).<br />
Age (An) Plage (U/L) Moyenne<br />
FEMMES 25 – 44 non ménopausées 11,6 – 29,6 18,3<br />
FEMMES ≥ 45 ménopausées 14,2 – 42,7 25,0<br />
Hommes ≥ 25 15,0 – 41,3 23,2<br />
CARACTÉR<strong>IS</strong>TIQUES DE PERFORMANCE<br />
Spécifications anticorps<br />
L’anticorps de la phosphatase alcaline d’origine osseuse fait preuve d’affinités spécifiques importantes pour l’isoforme de la<br />
phosphatase alcaline d’origine osseuse, d’une réactivité croisée faible envers la forme hépatique de la phosphatase alcaline,<br />
et d’une liaison négligeable des isoenzymes du placenta et des intestins.<br />
Isoenzyme AP % de réactivité<br />
Os 100<br />
Foie 3 – 8<br />
Placenta 0<br />
Intestins 0,4<br />
Sensibilité<br />
La limite de détection minimale du dosage de la phosphatase alcaline Metra BAP, déterminée par la limite supérieure à 3 SD d’un<br />
essai de précision utilisant zéro comme étalon, est de 0,7 U/L.<br />
Récupération - Récupération maximale<br />
La récupération maximale a été déterminée par l’ajout d’une quantité connue de phosphatase alcaline osseuse purifiée aux<br />
prélèvements de sérum à différents niveaux de phosphatase alcaline osseuse d’origine endogène. Les résultats types sont fournis<br />
après avoir surchargé les prélèvements de sérum avec des concentrations faibles, moyennes, et élevées de phosphatase alcaline<br />
osseuse et avoir fait des essais en trois exemplaires.<br />
Endogène (U/L) Ajouté (U/L) Observé (U/L) Récupération (%)<br />
13,4 15,7 29,1 99<br />
17,6 37,5 55,3 99<br />
27,2 57,2 88,1 106<br />
Récupération - Linéarité<br />
La linéarité a été déterminée en diluant des échantillons en série et en comparant les valeurs observées avec les valeurs anticipées.<br />
Des résultats types sont fournis ci-dessous.<br />
Echantillon Facteur de dilution Observé (U/L) Anticipé (U/L) Récupération (%)<br />
1 pur 108,5 - -<br />
1:2 51,1 54,2 94<br />
1:4 25,8 27,1 99<br />
1:6 18,0 18,1 99<br />
2 pur 39,1 - -<br />
1:2 20,1 19,5 103<br />
1:4 10,3 9,8 105<br />
1:6 6,7 6,5 103<br />
3 pur 58,4 - -<br />
1:2 29,9 29,2 102<br />
1:4 15,7 14,6 108<br />
1:6 9,7 9,7 100<br />
Précision<br />
En cours de phase, on a déterminé la précision en testant un minimum de 21 réplicats de 3 prélèvements sur 3 plaques provenant<br />
de chacun des 3 lots de kit (soit 9 plaques au total). Entre les phases, la précision a été établie par l’analyse de 3 prélèvements sur 6<br />
plaques différentes provenant de chacun des 3 lots de kit (soit 18 plaques au total). Les résultats types sont fournis ci-dessous.<br />
35<br />
FRAN<strong>Ç</strong>A<strong>IS</strong>
phosphatase alcaline osseuse En cours de phase 1 CV % Entre les phases 2 CV %<br />
(U/L de phosphatase alcaline osseuse)<br />
12 5,8 5,2<br />
35 3,9 7,6<br />
100 5,2 5,0<br />
1 n = 21 2 n = 6 phases<br />
Substances interférantes<br />
Les substances suivantes furent testées aux concentrations spécifiées, et se sont révélées ne pas interférer avec l’essai.<br />
Substance Concentration<br />
Hémoglobine 500 mg/dL<br />
Bilirubine 25 mg/dL<br />
Triglycérides 1420 mg/dL<br />
Protéine totale 6,0 g/dL<br />
Protéine totale 15,6 g/dL<br />
Protéine totale 6,0 g/dL<br />
Protéine totale 15,6 g/dL<br />
† Protein with water<br />
‡ Protéine avec phosphatase alcaline osseuse (concentration en phosphatase alcaline osseuse = 43,6 U/L)<br />
Interférences médicamenteuses<br />
Diverses concentrations de médicaments ont été ajoutées à trois différents pools de sérum contenant environ 35, 70, et 105 U/L de<br />
phosphatase alcaline osseuse, testés en trois exemplaires. Les médicaments et les concentrations les plus élevées testées étaient :<br />
Substance Concentration<br />
la plus élevée<br />
Etidronate 350 µg/ml<br />
œstrogène 100 µg/ml<br />
Ibuprofène 150 µg/ml<br />
Acetominophène 350 µg/ml<br />
Aspirine 350 µg/ml<br />
Calcitonine - Humaine 80 µg/ml<br />
Calcitonine - Saumon 80 µg/ml<br />
Calcium 500 µg/ml<br />
Norethindrone / mélange d’Ethynil Oestradiol (contraceptif oral) 3 mg/ml<br />
Vitamine D 400 IU/ml<br />
Exactitude<br />
Des essais comparatifs ont été effectués pour évaluer les corrélations entre la mesure de la phosphatase alcaline d’origine<br />
osseuse obtenue par le dosage de la phosphatase alcaline osseuse Metra BAP et les résultats obtenus à l’aide des trois méthodes<br />
actuellement commercialisées pour la mesure de la phosphatase alcaline totale (PAT) ou la phosphatase alcaline osseuse. Les essais<br />
ont été menés dans un centre de recherches clinique indépendant, à l’aide du sérum de 114 patients atteints de la maladie de <strong>Page</strong>t<br />
et de 464 sujets sains. La première méthode comparative était une technique colorimétrique pour la mesure de la PAT. Le cœfficient<br />
de corrélation (r) obtenu entre cette méthode colorimétrique et le dosage de la phosphatase alcaline osseuse Metra BAP était de<br />
0,99. La deuxième méthode comparative était une méthode par électrophorèse pour la détermination des taux d’isoenzymes de la<br />
phosphatase alcaline osseuse (r = 0,99). La troisième méthode comparative était un dosage immunoradiométrique pour la mesure<br />
de la phosphatase alcaline osseuse (r = 0,99). Sur les 114 patients diagnostiqués atteints de la maladie de <strong>Page</strong>t, 101 patients<br />
avaient des valeurs supérieures à la limite maximale des plages de référence du dosage de phosphatase alcaline osseuse Metra BAP.<br />
Treize patients avaient des valeurs inférieures à la limite maximale des plages de référence.<br />
ESSA<strong>IS</strong> CLINIQUES<br />
Utilisation de la phosphatase alcaline osseuse Metra BAP pour la surveillance de l’efficacité du traitement<br />
par inhibiteurs de la résorption osseuse dans le cas de l’ostéoporose<br />
Un essai randomisé multicentrique a prouvé la fiabilité et l’efficacité du dosage de phosphatase alcaline osseuse Metra BAP en<br />
matière de surveillance des changements de concentrations sériques de la phosphatase alcaline osseuse associée au traitement par<br />
aminobisphosphonates, des inhibiteurs de la résorption osseuse (alendronate). Les sujets, tirés d’un essai de plus grande envergure<br />
sur l’efficacité de l’alendronate dans le traitement de l’ostéoporose, 7 étaient des femmes ménopausées, âgées de 45 à 84 ans (en<br />
moyenne de 64 ± 7 ans), chez lesquelles on a détecté l’ostéoporose (en se basant sur un tableau clinique ou une densité minérale<br />
osseuse [DMO] de la colonne lombaire initiale, plus de 2,5 écarts type en dessous de la moyenne pour les femmes d’âge mûr non<br />
ménopausées). A la ligne de base, on a randomisé les sujets admissibles, et administré, soit 10 mg d’alendronate et 500 mg de<br />
calcium par jour (ALN), soit un placebo et 500 mg de calcium pour jour (CTL). Les échantillons de sérum furent obtenus de tous les<br />
sujets à la ligne de base, à 3, 6 et 12 mois.<br />
36
La moyenne (± 1 écart type) initiale de base de la concentration en phosphatase alcaline osseuse (14,6 ± 5,4 vs. 14,6 ± 4,6,<br />
p = 0,900) et la DMO de la colonne lombaire (0,74 ± 0,10 vs. 0,75 ± 0,09, p = 0,751) avaient des valeurs d’ALN et de CTL<br />
semblables. La répartition des valeurs de départ de la phosphatase alcaline osseuse dans l’ALN et CTL est illustrée dans le schéma<br />
ci-après, proportionnellement avec la population étudiée.<br />
Proportion de la population (%)<br />
Répartition des taux de départ de la phosphatase alcaline osseuse<br />
La phosphatase alcaline osseuse était nettement plus faible pour l’ALN que pour le CTL à 3 (9,6 ± 3,5 vs. 13,4 ± 4,0, p
38<br />
Proportion de la population (%)<br />
Répartition du pourcentage de changement des taux de phosphatase alcaline<br />
osseuse après 12 mois traitement à l’alendronate (ALN) ou au calcium (CTL)<br />
< -70,0%<br />
-70,0 à -60,1%<br />
A 12 mois, la DMO de la colonne lombaire des sujets du groupe ALN avait augmenté par rapport au groupe CTL (p < 0,00001),<br />
comme l’indique le tableau suivant.<br />
Changements en DMO de la colonne lombaire (moyenne ± écart type)<br />
-60,0 à -50,1%<br />
-50,0 à -40,1%<br />
-40,0 à -30,1%<br />
n Ligne de base (g/cm 2 ) 12 mois (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 159 0,75 ± 0,09 0,74 ± 0,09 -0,6 ± 3,4<br />
ALN 121 0,74 ± 0,10 0,79 ± 0,10 5,5 ± 4,1<br />
Ces résultats indiquent que le dosage de phosphatase alcaline osseuse Metra BAP est fiable et efficace pour la surveillance de l’effet du<br />
traitement par inhibiteurs de la résorption de l’aminobisphosphonate (alendronate) parmi les sujets diagnostiqués souffrant d’ostéoporose.<br />
Utilisation de la phosphatase alcaline osseuse Metra BAP pour la surveillance du traitement hormonal par<br />
inhibiteurs de la résorption osseuse et prédiction de la réaction osseuse (densité minérale osseuse) chez<br />
les femmes ménopausées<br />
Traitement de surveillance :<br />
Un essai randomisé multicentrique a prouvé la fiabilité et l’efficacité du dosage de phosphatase alcaline osseuse Metra BAP en<br />
matière de surveillance des changements des concentrations sériques de la phosphatase alcaline osseuse associée au traitement<br />
par œstrogènes/progestatifs, des inhibiteurs de la résorption osseuse. L’augmentation de la vitesse de renouvellement osseux et la<br />
déminéralisation importante sont souvent associées à la carence en œstrogènes suivant la ménopause. La substitution d’œstrogènes s’est<br />
révélée accroître considérablement la vitesse de renouvellement osseux et protéger la masse osseuse existante. 3,6 Les sujets étaient des<br />
femmes ménopausées, âgées de 45 à 64 ans (en moyenne de 56 ± 4 ans), qui avaient subit une ménopause naturelle ou chirurgicale au<br />
cours des 10 dernières années. A la ligne de base, les sujets admissibles ont été randomisés, soit dans un groupe de traitement actif (THS)<br />
: Premarin® (0,625 mg par jour) avec un progestatif placebo, Premarin® (0,625 mg par jour) et un progestatif actif (Provera® 2,5 mg/jour<br />
en continu, Provera® 10 mg/jour en alternance, ou une progestérone micronisée 200 mg/jour en alternance) ; soit dans le groupe témoin<br />
(CTL) : œstrogène placebo et progestatif placebo. Les échantillons sérum furent obtenus de tous les sujets à la ligne de base et à 12 mois.<br />
La moyenne (± 1 écart type) initiale de base de la concentration en phosphatase alcaline osseuse (20,7 ± 7,6 vs. 20,3 ± 6,8, U/L<br />
p = 0,704) et la DMO de la colonne lombaire (0,97 ± 0,17 vs. 0,97 ± 0,15 g/cm 2 , p = 0,970) étaient semblables pour ALN et<br />
CTL. La répartition des valeurs de départ de la phosphatase alcaline osseuse dans le THS et CTL est illustrée dans le schéma suivant,<br />
proportionnellement à la population étudiée.<br />
Proportion de la population (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
Vitesse de renouvellement<br />
osseux décroissante<br />
Répartition des taux de départ de la phosphatase alcaline osseuse<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
11,1 – 13<br />
13,1 – 15<br />
Vitesse de renouvellement<br />
osseux décroissante<br />
15,1 – 17<br />
-30,0 à -20,1%<br />
-20,0 à -10,1%<br />
% de changement<br />
17,1 – 19<br />
19,1 – 21<br />
21,1 – 23<br />
Phosphatase alcaline<br />
osseuse U/L<br />
-10,0 à -0,1%<br />
0,0 à 9,9%<br />
CTL à12 mois<br />
ALN à 12 mois<br />
10,0 à 19,9%<br />
≥ 20,0%<br />
Vitesse de renouvellement<br />
osseux croissante<br />
23,1 – 25<br />
25,1 – 27<br />
27,1 – 29<br />
CTL<br />
THS<br />
> 29<br />
Vitesse de renouvellement<br />
osseux croissante
La phosphatase alcaline osseuse était nettement inférieure pour le THS que le CTL à 12 mois (13,3 ± 5,0 vs. 21,9 ± 7,9 U/L,<br />
p < 0,00001). La répartition des valeurs de phosphatase alcaline osseuse après 12 mois dans les groupes THS et CTL est illustrée<br />
dans le schéma suivant.<br />
Proportion de la population (%)<br />
Répartition des taux de phosphatase alcaline osseuse après 12 mois<br />
Traitement par œstrogènes/progestatifs (THS) ou placebo (CTL)<br />
La concentration moyenne (± 1SD) en phosphatase alcaline osseuse chez les sujets sous CTL a légèrement augmenté de + 9,8 %<br />
(± 33,2 %) par rapport à la valeur initiale de base à 12 mois (p = 0,08), alors que les concentrations chez les sujets du groupe THS<br />
ont diminué de - 32,4 (± 21,5 %) par rapport à la ligne de base à 12 mois. Les sujets du groupe THS étaient plus susceptibles que<br />
les sujets CTL de faire preuve de pertes en phosphatase alcaline osseuse supérieures au pourcentage de changement minimum 12 ,<br />
avec une diminution ≥ 25 % de 73,3 %, des personnes sous THS et de 3,4 % des personnes sous CTL à 12 mois. La répartition du<br />
pourcentage de changement des valeurs de la phosphatase alcaline osseuse par rapport à la ligne de base après 12 mois dans les<br />
groupes THS et CTL est illustrée dans le schéma ci-après.<br />
Répartition du pourcentage de changement des taux de phosphatase alcaline osseuse après<br />
12 mois traitement par œstrogènes/progestatifs (THS) ou placebo (CTL)<br />
Proportion de la population (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
11,1 – 13<br />
A 12 mois, la DMO de la colonne lombaire des sujets du groupe ALN avait augmenté par rapport au groupe CTL (p < 0,00001),<br />
comme l’indique le tableau suivant.<br />
Changements en DMO de la colonne lombaire (moyenne ± écart type)<br />
13,1 – 15<br />
Vitesse de renouvellement<br />
osseux décroissante<br />
< -70,0%<br />
-70,0 à -60,1%<br />
-60,0 à -50,1%<br />
Vitesse de renouvellement<br />
osseux décroissante<br />
-50,0 à -40,1%<br />
15,1 – 17<br />
n Ligne de base (g/cm 2 ) 12 mois (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 58 0,97 ± 0,17 0,95 ± 0,16 -1,6 ± 2,8<br />
THS 262 0,97 ± 0,15 1,00 ± 0,15 +3,5 ± 2,8<br />
17,1 – 19<br />
Ces résultats indiquent que le dosage de phosphatase alcaline osseuse Metra BAP est fiable et efficace pour la surveillance de l’effet<br />
inhibiteur de la résorption du traitement hormonal de substitution chez les femmes ménopausées.<br />
19,1 – 21<br />
21,1 – 23<br />
Phosphatase alcaline<br />
osseuse U/L<br />
-40,0 à -30,1%<br />
-30,0 à -20,1%<br />
-20,0 à -10,1%<br />
% de changement<br />
-10,0 à -0,1%<br />
23,1 – 25<br />
25,1 – 27<br />
27,1 – 29<br />
CTL<br />
THS<br />
> 29<br />
Vitesse de renouvellement<br />
osseux croissante<br />
0,0 à 9,9%<br />
10,0 à 19,9%<br />
THS<br />
≥ 20,0% CTL<br />
Vitesse de renouvellement<br />
osseux croissante<br />
39<br />
FRAN<strong>Ç</strong>A<strong>IS</strong>
Prédiction de la réaction osseuse :<br />
Le schéma ci-après illustre la diminution en % des valeurs de la phosphatase alcaline osseuse par rapport à la ligne de base à 12<br />
mois par quartile pour le groupe traité par THS. Sujets du quartile le plus élevé (Q1 : diminution en % la plus forte) ont fait preuve<br />
de la plus forte augmentation en DMO de la colonne lombaire en réaction au THS.<br />
40<br />
Groupe THS - Valeurs de % de changement de la phosphatase alcaline osseuse à 12 mois stratifiée<br />
par % de changement quartile et correspondant de la DMO de la colonne lombaire à 12 mois<br />
% de changement de DMO de la colonne<br />
lombaire sur 12 mois (+/- SEM)<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
1<br />
0<br />
Q1 (-66,5 à -45,9) Q2 (-45,9 à -36,0)<br />
p < 0,001<br />
Le schéma suivant fournit une analyse de régression linéaire (y = -0,060x + 0,011, r = -0,51, p < 0,001) du pourcentage de<br />
changement par rapport à la ligne de base à 12 mois de phosphatase alcaline osseuse et du pourcentage de changement par<br />
rapport à la ligne de base à 12 mois de BMD pour tous les sujets de l’essai (sous placebo et traitement).<br />
Pourcentage de changement de la DMO<br />
de la colonne lombaire à 12 mois<br />
Essai de THS - Régression linéaire du % de changement dans DMO de la<br />
colonne lombaire et phosphatase alcaline osseuse, de la ligne de base à 12 mois<br />
Le tableau d’étude de sensibilité aux hypothèses a démontré que l’augmentation de ≥ 25 % de phosphatase alcaline osseuse à<br />
12 mois était nettement associée (p < 0,0001) à une réaction osseuse positive au THS (gain de BMD) à 12 mois. Les intervalles<br />
de confiance binomiaux (approximation de deuxième ordre) de sensibilité et spécificité de 85 % relatifs à l’utilisation d’une<br />
augmentation de 25 % de la phosphatase alcaline pour prédire une réaction au THS sont :<br />
Sensibilité = 77 % (IC de 95 %, 75 %, 82 %) ; Spécificité = 61 % (IC de 95 % 41 %, 78 %).<br />
Ces résultats indiquent que le % de changement de la concentration en phosphatase alcaline osseuse peut être utilisé pour prédire le<br />
degré de réaction osseuse (BMD) au traitement THS.<br />
ASS<strong>IS</strong>TANCE<br />
Pour passer une commande ou pour une assistance technique, veuillez contacter un représentant Quidel au +1 408-616-4301,<br />
du lundi au vendredi, entre 8 h et 17 h, heure du Pacifique. Les commandes peuvent également être effectuées par télécopie au<br />
+1 408-616-4310.<br />
Pour des services en dehors des Etats-Unis, veuillez contacter votre distributeur local.<br />
Q3 (-36,0 à -23,8) Q4 (-23,8 à 167,3)<br />
Quartiles par % de changement de la phosphatase alcaline osseuse sur 12 mois<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-5,0%<br />
-10,0%<br />
-15,0%<br />
-60,0% -40,0% -20,0%<br />
y = -0,060x + 0,011<br />
r = 0,51<br />
p < 0,001<br />
0,0% 20,0% 40,0% 60,0%<br />
Pourcentage de changement de la phosphatase<br />
alcanine osseuse à 12 mois
GUÍA RÁPIDA DE LOS PASOS DEL ENSAYO<br />
1. Añadir 125 µl de tampón de análisis.<br />
2. Añadir 20 µl de patrones, controles y muestras; remover.<br />
3. Incubar durante 3 horas ± 10 minutos a 20–28 °C.<br />
4. Lavar 4 veces con tampón de lavado 1X.<br />
5. Añadir 150 µl de solución de sustrato de trabajo a 20–28 °C.<br />
6. Incubar durante 30 ± 5 minutos a 20–28 °C.<br />
7. Añadir 100 µL de solución de parada y leer la densidad óptica a 405 nm.<br />
USO PREV<strong>IS</strong>TO<br />
El inmunoensayo Metra BAP proporciona una medición cuantitativa de la actividad de la fosfatasa alcalina específica de los huesos<br />
(BAP) en el suero como indicador de la actividad osteoblástica. La medición de la BAP está concebida para su uso como ayuda en:<br />
� el tratamiento de la osteoporosis posmenopáusica y de la enfermedad de <strong>Page</strong>t;<br />
� el control de mujeres posmenopáusicas en tratamiento hormonal o con bisfosfonatos;<br />
� la predicción de la respuesta esquelética a la terapia hormonal en mujeres posmenopáusicas.<br />
RESUMEN Y EXPLICACIÓN<br />
La isoforma esquelética, o específica de los huesos, de la fosfatasa alcalina es una glucoproteína tetrámera que se encuentra en la<br />
superficie celular de los osteoblastos. 1 Los osteoblastos son las células responsables de la síntesis de la nueva matriz ósea y de su<br />
mineralización. La función de la BAP no se ha determinado plenamente, aunque se ha confirmado su papel en la mineralización<br />
esquelética. 1,2,3<br />
El hueso experimenta un proceso metabólico constante denominado remodelación. 3,4 La remodelación consiste en un proceso de<br />
degradación, la reabsorción ósea, que está mediada por la acción de los osteoclastos, y un proceso de construcción, la formación<br />
ósea, que está mediada por la acción de los osteoblastos. 3,4 La remodelación es necesaria para el mantenimiento y la salud general<br />
de los huesos y es un proceso estrechamente acoplado, es decir, la reabsorción y la formación se encuentran en perfecto equilibrio. 3,4<br />
En estados anómalos del metabolismo óseo, este proceso se desacopla y, cuando la reabsorción excede a la formación, provoca una<br />
pérdida neta de hueso, lo cual puede inducir osteoporosis 3,4 o el tejido óseo desordenado de las lesiones pagéticas. 5 La medición<br />
de los marcadores bioquímicos específicos de estos episodios de remodelación proporciona datos analíticos relativos a la tasa de<br />
metabolismo óseo o “recambio”. 3,4<br />
La osteoporosis es una enfermedad ósea metabólica caracterizada por una remodelación ósea anómala. Se trata de una<br />
enfermedad esquelética sistémica caracterizada por una baja masa ósea y un deterioro microarquitectónico del tejido óseo, con el<br />
consiguiente incremento de la posibilidad de experimentar fracturas. 6 El tipo más habitual de osteoporosis se produce en mujeres<br />
posmenopáusicas como consecuencia de la deficiencia de estrógenos producida por la discontinuidad de la función ovárica. 3<br />
El restablecimiento de los niveles de estrógenos premenopáusicos mediante terapia de reposición impide la pérdida ósea y la<br />
osteoporosis. 3,6 Los estrógenos y una clase de compuestos conocidos como bisfosfonatos constituyen terapias de antirreabsorción<br />
que pueden utilizarse para evitar la pérdida ósea o tratar la osteoporosis. 3,6,7<br />
La osteoporosis también puede ser consecuencia de alcanzar una masa ósea máxima inadecuada durante los años de crecimiento,<br />
un desequilibrio de la remodelación ósea, con un exceso neto de reabsorción, relacionado con la edad y una serie de dolencias<br />
clínicas y terapias inductoras de pérdida ósea o desequilibrios de la remodelación ósea. 3 Entre estas últimas se cuentan<br />
enfermedades endocrinas, como el hipogonadismo, el hipertiroidismo, el hiperparatiroidismo y el hipercorticalismo, insuficiencia<br />
renal, cánceres con metástasis óseas; enfermedades gastrointestinales relacionadas con el metabolismo nutricional y mineral,<br />
enfermedades del tejido conjuntivo, mieloma múltiple, inmovilización crónica, alcoholismo, tabaquismo y terapia crónica con<br />
heparina o corticoesteroides. 3<br />
La enfermedad ósea de <strong>Page</strong>t es un trastorno focal que provoca dolor y deformidad esquelética en pacientes sintomáticos. 5 Las<br />
lesiones pagéticas se caracterizan por una matriz ósea con estructura muy anómala provocada por tasas excesivas de actividad de<br />
remodelación. Las lesiones se producen principalmente en el cráneo, la columna vertebral, la pelvis y los huesos largos, y pueden<br />
tener como consecuencia fracturas y deterioro neurológico. 5 La etiología de la enfermedad de <strong>Page</strong>t es desconocida pero las hipótesis<br />
que suponen factores genéticos y víricos son convincentes. 5 Actualmente se utilizan bisfosfonatos y calcitonina para reducir el<br />
elevado grado de actividad bioquímica a los niveles normales, lo que permite el restablecimiento de la estructura ósea normal. 9<br />
Como determinación cuantitativa de un marcador de remodelación ósea, la BAP proporciona información útil sobre la remodelación<br />
ósea en la osteoporosis y en la enfermedad de <strong>Page</strong>t, así como sobre los cambios producidos por el tratamiento antirreabsortivo<br />
en la actividad de la enfermedad . 10-12 En el análisis Metra BAP, se empleó tecnología de anticuerpos para producir un anticuerpo<br />
monoclonal que demostrara especificidad por la BAP. 10 La especificidad del anticuerpo monoclonal utilizado en el análisis permite<br />
una cuantificación sencilla, cómoda, reproducible y directa de la actividad de la BAP en el suero.<br />
PRINCIPIO DEL PROCEDIMIENTO<br />
Metra BAP es un inmunoanálisis en formato de tira de microtítulación en el que se utiliza un anticuerpo monoclonal anti-BAP<br />
recubierto en la tira para capturar la BAP de la muestra. La actividad enzimática de la BAP capturada se detecta con un sustrato pNPP.<br />
41<br />
ESPAÑOL
REACTIVOS Y MATERIALES PROPORCIONADOS<br />
96 análisiss para fosfatasa alcalina específica de los huesos<br />
Metra BAP EIA contiene lo siguiente:<br />
A Patrones de BAP A - F Refs. 4395 a 4400 0,3 ml cada uno<br />
B (A = 0, B = 2, C = 20, D = 50, E = 80, F = 140 U/L BAP)<br />
C BAP purificada de células SAOS-2 de osteosarcoma en una solución tamponada que contiene cloruro de magnesio, sulfato de<br />
D zinc, agente tensoactivo, proteína transportadora, colorante azul y azida sódica (0,05%) como conservante.<br />
E<br />
F<br />
L Controles bajo/alto Refs. 4401, 4402 0,3 ml cada uno<br />
H BAP purificada de células SAOS-2 de osteosarcoma en una solución tamponada que contiene cloruro de magnesio, sulfato de<br />
zinc, agente tensoactivo, proteína transportadora, colorante azul y azida sódica (0,05%) como conservante.<br />
q Tiras recubiertas Ref. 4660 12 cada uno<br />
Anticuerpo anti-BAP IgG monoclonal de ratón purificado adsorbido en pocillos en tiras.<br />
w Solución de parada Ref. 4702 15 mL<br />
NaOH 0,5N<br />
e Tampón de lavado 10X Ref. 4703 55 mL<br />
Detergente no iónico en una solución tamponada que contiene azida sódica (0,05%) como conservante.<br />
r Tampón de análisis Ref. 4403 27 mL<br />
Solución tamponada que contiene cloruro de magnesio, sulfato de zinc, agente tensoactivo y azida sódica (0,05%) como<br />
conservante.<br />
t Tampón del sustrato Ref. 4404 3 x 10 mL<br />
Solución de 2-amino-2-metil-1-propanol que contiene HEDTA, cloruro de magnesio, sulfato de zinc y azida sódica (0,05%)<br />
como conservante.<br />
y Pastillas de sustrato Ref. 0012 3 x 20 mg<br />
Fosfato de p-nitrofenil.<br />
MATERIALES NECESARIOS PERO NO PROPORCIONADOS<br />
Micropipetas de 20 µL y 100–300 µL<br />
Material adecuado para medir 100-300 mL de líquidos<br />
Recipiente para dilución del tampón de lavado<br />
Agua desionizada o destilada<br />
Lector de placas capaz de efectuar lecturas de densidad óptica a A405 > 2,0<br />
Software de ajuste de curva de calibración cuadrática<br />
ADVERTENCIAS Y PRECAUCIONES<br />
1. Para uso Diagnóstico in vitro.<br />
2. Trate las muestras como material potencialmente biopeligroso. Respete las precauciones universales al manipular el contenido<br />
de este kit y las muestras de los pacientes.<br />
3. Deseche los recipientes y el contenido no utilizado de acuerdo con la normativa internacional, nacional y local.<br />
4. Use los reactivos suministrados como una unidad integral antes de la fecha de caducidad indicada en la etiqueta del envase.<br />
5. Almacene los reactivos de análisis según lo indicado.<br />
6. No emplee las tiras recubiertas si la bolsa está pinchada.<br />
7. Analice cada muestra por duplicado.<br />
8. El NaOH 0,5N se considera corrosivo y puede provocar quemaduras graves. No lo ingiera. Evite el contacto con la piel, los ojos y<br />
la ropa. En caso de contacto, lave con agua. En caso de ingestión, solicite asistencia médica.<br />
9. La azida sódica se utiliza como conservante. El contacto o la ingestión accidentales de tampones que contienen azida sódica<br />
pueden provocar irritación en la piel, los ojos o la boca. Emplee únicamente los tampones para los fines previstos y evite<br />
el contacto con ácidos. La azida sódica puede reaccionar con las tuberías de plomo y cobre y formar azidas metálicas muy<br />
explosivas. Después de desecharlo, enjuague con agua abundante para evitar la acumulación de la azida.<br />
10. El tampón de sustrato contiene 2-amino-2-metil-1-propanol y puede causar irritación en los ojos y en la piel con el contacto<br />
prolongado. Use ropa protectora adecuada, guantes y protección ocular/facial. Las áreas que entren en contacto con el tampón<br />
deben lavarse de inmediato con agua y jabón.<br />
11. Diluya las muestras superiores a 140 U/L en tampón de análisis y repita la prueba. Incluya el factor de dilución en el cálculo final.<br />
12. Se recomienda utilizar pipetas multicanal o pipeteros de repetición para garantizar una administración oportuna de los<br />
reactivos.<br />
13. Para una medición exacta de las muestras, añada las muestras y los patrones con precisión. Pipetee cuidadosamente utilizando<br />
sólo equipo calibrado.<br />
14. Este análisis puede realizarse con cualquier método de lavado homologado.<br />
42
PREPARACIÓN DE LOS REACTIVOS<br />
Ponga los reactivos y los materiales para el análisis a 20–28 °C antes de su uso. Tras retirar los reactivos y<br />
materiales necesarios, vuelva a poner los elementos no utilizados a 2–8 °C.<br />
Tiras recubiertas<br />
Extraiga la estructura de pocillos en tiras y el número necesario de tiras recubiertas de la bolsa (véase la sección PROCEDIMIENTO DE<br />
ANÁ<strong>L<strong>IS</strong></strong><strong>IS</strong>). Asegúrese de que la bolsa que contenga las tiras no utilizadas quede perfectamente sellada.<br />
Tampón de lavado<br />
Prepare la cantidad necesaria de tampón de lavado 1X (véase la tabla) diluyendo un concentrado 10X de tampón de lavado con<br />
agua desionizada en una proporción 1:10. Guárdelo a 20–28 °C. Utilice el tampón de lavado 1X en las 21 días siguientes a su<br />
preparación.<br />
Solución sustrato de trabajo<br />
Prepare la solución sustrato de trabajo en la hora anterior a su uso. Introduzca una pastilla de sustrato en cada frasco necesario<br />
de tampón de sustrato a 20–28 °C (véase la tabla). Deje disolver las pastillas durante 30 y 60 minutos. Agite vigorosamente las<br />
botellas para mezclar completamente. Deseche la solución de sustrato de trabajo restante tras su uso.<br />
AMACENAMIENTO<br />
Guarde el conjunto a 2–8 °C. No congele. Guarde los reactivos no utilizados a 2–8 °C. Equilibre los reactivos a 20–28 °C antes<br />
de su uso. Guarde el tampón de lavado 1X (10X diluido) a 20–28 °C.<br />
RECOGIDA Y ALMACENAMIENTO DE MUESTRAS<br />
Recoja el suero utilizando una técnica de venopunción normalizada. Las muestras deben recogerse sin anticoagulantes y de tal<br />
modo que se evite la hemólisis. Deje que la sangre coagule y separe el suero mediante centrifugado. El suero puede guardarse<br />
durante 5 días a 2–8 °C, a ≤ -40 °C durante 12 meses o a ≤ -80 °C durante 36 meses. No someta las muestras a más de 3 ciclos de<br />
congelación/descongelación.<br />
El suero “separado del coágulo”, el suero de las probetas separadoras de suero, el plasma con heparina sódica y el plasma con<br />
heparina de litio producen resultados sustancialmente equivalentes. Se recomienda no preparar las muestras de plasma utilizando<br />
quelantes como el EDTA o el citrato.<br />
PROCEDIMIENTO DE ANÁ<strong>L<strong>IS</strong></strong><strong>IS</strong><br />
Lea todo el prospecto del producto antes de iniciar el análisis.<br />
Vea PREPARACIÓN DE REACTIVOS antes de continuar.<br />
Determine la cantidad necesaria de cada reactivo para el número de tiras que se vayan a utilizar.<br />
Nº de tiras 4 6 8 12<br />
Nº de muestras (analizadas por duplicado) 8 16 24 40<br />
Sustrato (frasco) 1 1 2* 2*<br />
Tampón de lavado 1X (mL) 100 150 200 300<br />
*Cuando se vaya a utilizar más de un frasco o vial, combine el contenido y mezcle antes de usarlo.<br />
INCUBACIÓN DE LAS MUESTRAS<br />
1. Extraiga la estructura de pocillos de tiras y el número necesario de tiras recubiertas de la bolsa (véase la tabla) antes de usarlos.<br />
Asegúrese de que la bolsa de papel de aluminio que contenga las tiras no utilizadas quede perfectamente sellada.<br />
2. Introduzca el número deseado de tiras recubiertas en la estructura de pocillos en tiras. Etiquete las tiras para evitar la mezcla en<br />
caso de extracción accidental de la estructura de pocillos.<br />
3. Añada 125 µL de tampón de análisis a cada pocillo.<br />
4. Añada 20 µL de patrón, control o muestra a cada pocillo. No mezcle con tampón de análisis volviendo a pipetear. Este paso<br />
debe completarse en 30 minutos. Remueva suavemente las tiras para garantizar la mezcla de la muestra<br />
y el tampón.<br />
5. Incube durante 3 horas (± 10 minutos) a 20–28 °C.<br />
6. Prepare la solución de sustrato de trabajo como máximo 1 hora antes de su uso. Introduzca una pastilla de sustrato en cada<br />
frasco necesario de tampón de sustrato a 20–28 °C (véase la tabla). Deje disolver las pastillas durante 30 y 60 minutos. Agite<br />
vigorosamente las botellas para mezclar completamente.<br />
Paso de lavado<br />
7. Prepare la cantidad necesaria de tampón de lavado 1X (véase la tabla) diluyendo de tampón de lavado 10X con agua<br />
desionizada en una proporción 1:10. Guárdelo a 20–28 °C. Utilice el tampón de lavado 1X en las 21 días siguientes a su<br />
preparación.<br />
8. Invierta/vacíe manualmente las tiras. Añada como mínimo 250 µL de tampón de lavado 1X a cada pocillo e invierta/vacíe<br />
manualmente las tiras. Repita tres veces más hasta un total de cuatro lavados. Seque vigorosamente las tiras sobre toallitas<br />
de papel después del último lavado.<br />
Incubación del sustrato<br />
9. Añada 150 µL de solución sustrato de trabajo a cada pocillo. Deseche la solución de sustrato de trabajo restante tras su uso.<br />
10. Incube durante 30 horas (± 5 minutos) a 20–28 °C.<br />
43<br />
ESPAÑOL
Parada/lectura<br />
11. Añada 100 µL de solución de parada a cada pocillo. Añada solución de parada de la misma forma y en los mismos intervalos<br />
de tiempo que en el caso de la solución sustrato.<br />
12. Lea la densidad óptica a 405 nm. Asegúrese de que no hay burbujas grandes en los pocillos y que el fondo de las tiras está<br />
limpia. Las tiras debe leerse en los 15 minutos siguientes a la adición de la solución de parada.<br />
13. Debe utilizarse software de cuantificación con una ecuación de ajuste de curva de calibración cuadrática para analizar los<br />
resultados del análisis Metra BAP.<br />
Equación: y = A + Bx + Cx 2<br />
CONTROL DE CALIDAD<br />
El certificado de análisis incluido en este kit es específico de lote y ha de emplearse para verificar que los resultados obtenidos<br />
por su laboratorio son similares a los obtenidos en Quidel. Se proporcionan los valores de densidad óptica, pero deberán utilizarse<br />
únicamente a efectos orientativos. Los resultados obtenidos por su laboratorio pueden ser diferentes.<br />
Se proporcionan los intervalos de control de calidad. Los valores de control están concebidos para verificar la validez de la curva y los<br />
resultados de las muestras. Cada laboratorio debe establecer sus propios parámetros para límites de análisis aceptables. Si los valores<br />
de control NO están dentro de los límites de aceptación de su laboratorio, los resultados del análisis deben considerarse cuestionables<br />
y las muestras tendrán que repetirse.<br />
Si la densidad óptica del patrón F de Metra BAP es inferior a 1,0, los resultados deberán considerarse cuestionables y habrán de<br />
repetirse las muestras.<br />
INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS<br />
Los resultados de las muestras se expresan como U/L y no tienen que corregirse por dilución (a menos que la muestra se diluyera<br />
antes del análisis).<br />
En el análisis Metra BAP, 1 unidad representa 1 µmol de pNPP hidrolizado por minuto a 25 °C en tampón 2-amino-2-metil-1propanol.<br />
Curva patrón representativa<br />
Niveles de patrón de BAP: 0, 2, 20, 50, 80, 140 U/L<br />
LIM<strong>ITA</strong>CIONES DEL PROCEDIMIENTO<br />
Interferencia de HAMA<br />
Algunas personas tienen anticuerpos contra anticuerpos de ratón (HAMA), que pueden causar interferencia en los inmunoanálisis<br />
que emplean anticuerpos procedentes de ratón. En particular, se ha publicado que muestras de suero de pacientes que han sido<br />
sometidos a procedimientos terapéuticos o diagnósticos que incluyen la infusión de anticuerpos monoclonales de ratón pueden<br />
producir resultados erróneos. Por consiguiente, para dichos pacientes, sólo deben utilizarse los resultados de Metra BAP junto con<br />
los resultados de algún otro procedimiento diagnóstico y con información procedente de la evaluación clínica del paciente.<br />
Muestras con elevaciones significativas de la actividad de la fosfatasa alcalina hepática pueden causar resultados anormalmente<br />
elevados en el análisis Metra BAP.<br />
Los pacientes con enfermedad de <strong>Page</strong>t que tienen niveles bajos de esta dolencia pueden presentar niveles de fosfatasa alcalina<br />
específica de los huesos que entren dentro del intervalo de referencia de Metra BAP.<br />
VALORES DE LA MUESTRA<br />
Los intervalos de referencia de BAP se han establecido para varones normales mayores de 25 años (n = 126), mujeres<br />
premenopáusicas normales con edades de 25 a 44 años (n = 178) y mujeres posmenopáusicas normales (n = 107).<br />
A efectos de establecer los intervalos de referencia, las personas normales se definieron como:<br />
� Básicamente sanos, sin trastornos óseos, endocrinos ni crónicos<br />
� Ciclos menstruales regulares (mujeres premenopáusicas)<br />
� Sin embarazo ni en período de lactancia (mujeres)<br />
� Sin estar tomando en la actualidad ningún medicamento con influencia conocida en el metabolismo óseo.<br />
44<br />
Densidad óptica (405 nm)<br />
3,0<br />
2,0<br />
1,0<br />
0,0<br />
0 25 50 75 100 125 150<br />
BAP (U/L)
Los valores pueden verse influidos por factores como una baja producción de estrógenos, una escasa ingesta de calcio o poca<br />
actividad física. 8 La carencia de estrógenos en mujeres posmenopáusicas puede tener provocar una elevada remodelación ósea. 3,4<br />
Cada laboratorio deberá establecer su propio intervalo de referencia normal. Los intervalos se expresan como intervalos de referencia<br />
no paramétricos (IC del 90%).<br />
Edad (Años) Rango (U/L) Mediana<br />
Mujeres 25 – 44 Premenopáusicas 11,6 – 29,6 18,3<br />
Mujeres ≥ 45 Posmenopáusicas 14,2 – 42,7 25,0<br />
Varones ≥ 25 15,0 – 41,3 23,2<br />
CARACTERÍSTICAS DE RENDIMIENTO<br />
Especificaciones del anticuerpo<br />
El anticuerpo contra la fosfatasa alcalina específica de los huesos tiene una afinidad elevada y selectiva por la isoforma de la fosfatasa<br />
alcalina específica de los huesos, baja reactividad cruzada con la forma hepática de la fosfatasa alcalina y una unión insignificante a<br />
las isoenzimas intestinal y placentaria.<br />
Isoenzima de FA % Reactividad<br />
Ósea 100<br />
Hepática 3 – 8<br />
Placentaria 0<br />
Intestinal 0,4<br />
Sensibilidad<br />
El límite de detección mínimo del análisis Metra BAP es de 0,7 U/L, determinado por el límite superior de 3 DE en un estudio de<br />
precisión de patrón cero.<br />
Recuperación - Recuperación de concentración máxima<br />
La recuperación de las concentraciones máximas se determinó añadiendo una cantidad conocida de BAP purificada a muestras de<br />
suero con diferentes niveles de BAP endógena. Se presentan los resultados habituales después de cromatografiar muestras séricas<br />
con concentraciones bajas, medias y bajas de BAP y analizarlas por triplicado.<br />
Endógena (U/L) Añadida (U/L) Observada (U/L) Recuperación (%)<br />
13,4 15,7 29,1 99<br />
17,6 37,5 55,3 99<br />
27,2 57,2 88,1 106<br />
Recuperación - Linealidad<br />
La linealidad se determinó diluyendo en serie las muestras y comparando los valores observados con los valores esperados. A<br />
continuación se muestran los resultados típicos.<br />
Muestra Factor de dilución Observada (U/L) Esperado (U/L) Recuperación (%)<br />
1 pura 108,5 - -<br />
1:2 51,1 54,2 94<br />
1:4 25,8 27,1 99<br />
1:6 18,0 18,1 99<br />
2 pura 39,1 - -<br />
1:2 20,1 19,5 103<br />
1:4 10,3 9,8 105<br />
1:6 6,7 6,5 103<br />
3 pura 58,4 - -<br />
1:2 29,9 29,2 102<br />
1:4 15,7 14,6 108<br />
1:6 9,7 9,7 100<br />
Precisión<br />
La precisión intra-análisis se determinó analizando ≥ 21 repeticiones de 3 muestras en 3 placas de cada uno de los tres lotes del kit<br />
(total, 9 placas). La precisión inter-análisis se determinó para 3 muestras analizadas en 6 placas independientes de cada uno de los<br />
tres lotes del kit (18 placas en total). A continuación se muestran los resultados típicos.<br />
BAP (U/L BAP) Intra-análisis 1 VC % Inter-análisis 2 VC %<br />
12 5,8 5,2<br />
35 3,9 7,6<br />
100 5,2 5,0<br />
1 nº = 21 2 nº = 6 análisis<br />
45<br />
ESPAÑOL
Sustancias que interfieren<br />
Se analizaron las siguientes sustancias a las concentraciones especificadas, y no se observó interferencia en el análisis.<br />
Sustancia Concentración<br />
Hemoglobina 500 mg/dL<br />
Bilirrubina 25 mg/dL<br />
Triglicéridos 1.420 mg/dL<br />
Proteínas totales 6,0 g/dL †<br />
Proteínas totales 15,6 g/dL †<br />
Proteínas totales 6,0 g/dL ‡<br />
Proteínas totales 15,6 g/dL ‡<br />
† Proteína con agua<br />
‡ Proteína con BAP (concentración de BAP = 43,6 U/L)<br />
Interferencias de medicamentos<br />
Se añadieron varias concentraciones de medicamentos a tres mezclas séricas independientes que contenían aproximadamente 35,<br />
70 y 105 U/L de BAP y se analizaron por triplicado. Los medicamentos y las concentraciones mayores analizadas fueron:<br />
Sustancia Concentración más elevada<br />
Etidronato 350 µg/ml<br />
Estrógeno 100 µg/ml<br />
Ibuprofeno 150 µg/ml<br />
Paracetamol 350 µg/ml<br />
Aspirina 350 µg/ml<br />
Calcitonina - Humana 80 µg/ml<br />
Calcitonina - Salmón 80 µg/ml<br />
Calcio 500 µg/ml<br />
Mezcla de noretindrona/etinilestradiol (anticonceptivo oral) 3 mg/ml<br />
Vitamina D 400 IU/ml<br />
Precisión<br />
Se realizaron estudios comparativos para evaluar las correlaciones entre las determinaciones de fosfatasa alcalina específica de<br />
los huesos (BAP) sérica obtenidas utilizando el análisis Metra BAP y los resultados obtenidos utilizando tres métodos existentes<br />
actualmente en el mercado para medir la fosfatasa alcalina total (Total Alkaline Phosphatase - TAP) o BAP. Los estudios se efectuaron<br />
en un centro de investigación clínica independiente utilizando suero de 114 pacientes con la enfermedad de <strong>Page</strong>t y 464 personas<br />
sanas. El primer método comparativo fue una técnica colorimétrica para la medición de la TAP. El coeficiente de correlación (r)<br />
obtenido entre dicho método colorimétrico y el análisis Metra BAP fue de 0,99. El segundo método comparativo fue un método<br />
electroforético para la determinación de los niveles de isoenzimas de BAP (r = 0,99). El tercer método comparativo consistió en un<br />
análisis inmunorradiométrico para la determinación de la BAP (r = 0,99). De los 114 pacientes diagnosticados con la enfermedad de<br />
<strong>Page</strong>t, 101 pacientes presentaron valores superiores al límite superior de los intervalos de referencia para el análisis Metra BAP. Trece<br />
pacientes tuvieron valores inferiores al límite superior de los intervalos de referencia.<br />
ESTUDIOS CLÍNICOS<br />
Uso de Metra BAP para el control de la eficacia de la terapia antirreabsortiva en la osteoporosis<br />
Se llevó a cabo con éxito un ensayo aleatorizado, controlado y multicéntrico con objeto de establecer la seguridad y la eficacia del<br />
análisis Metra BAP para controlar los cambios de las concentraciones séricas de BAP asociados con la terapia antirreabsortiva de<br />
aminobisfosfonato (alendronato). Los pacientes, procedentes de un estudio más extenso para determinar la eficacia del alendronato<br />
en el tratamiento de la osteoporosis, 7 fueron mujeres posmenopáusicas de 45 a 84 años (media de 64 ± 7 años), diagnosticadas<br />
de osteoporosis (en función de la presentación clínica o de una densidad mineral ósea de la columna lumbar [Lumbar Spine<br />
Bone Mineral Density - LSBMD] inicial más de 2,5 desviaciones estándar por debajo de la media para mujeres premenopáusicas<br />
maduras). Al comienzo, se aleatorizaron las pacientes idóneas a recibir o bien 10 mg de alendronato y 500 mg de calcio al día (ALN)<br />
o bien placebo y 500 mg de calcio al día (CTL). Se obtuvieron muestras de suero de todas las pacientes al comienzo y a los 3, 6 y<br />
12 meses.<br />
La concentración iniciales medias de BAP (± 1 DE) (14,6 ± 5,4 frente a 14,6 ± 4,6; p = 0,900) y la LSBMD (0,74 ± 0,10 frente<br />
a 0,75 ± 0,09; p = 0,751) presentaron valores similares para ALN y CTL. En la siguiente figura se muestran las distribuciones de<br />
valores iniciales de BAP con ALN y CTL por proporción de la población estudiada.<br />
46
Proporción de población (%)<br />
Distribución de los niveles iniciales de BAP<br />
La BAP fue significativamente inferior para ALN que para CTL a los 3 (9,6 ± 3,5 frente a 13,4 ± 4,0; p < 0,00001), a los 6 (8,0 ± 3,0<br />
frente a 13,2 ± 3,8; p < 0,00001) y a los 12 meses (7,8 ± 2,6 frente a 13,3 ± 3,9; p < 0,00001). En la siguiente figura se presentan<br />
las distribuciones de los valores de BAP al cabo de 12 meses en los grupos de ALN y CTL.<br />
Proporción de población (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
40,0%<br />
35,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
< 4,0<br />
4,0 – 5,9<br />
6,0 – 7,9<br />
8,0 – 9,9<br />
10,0 – 11,9<br />
12,0 – 13,9<br />
Remodelación ósea decreciente U/L BAP<br />
Remodelación ósea creciente<br />
< 4,0<br />
Distribución de los niveles de BAP al cabo de 12 meses<br />
Tratamiento con alendronato (ALN) o calcio (CTL)<br />
4,0 – 5,9<br />
6,0 – 7,9<br />
8,0 – 9,9<br />
10,0 – 11,9<br />
12,0 – 13,9<br />
La concentración media de BAP (± 1 DE) en las pacientes tratadas con CTL descendió modestamente desde el valor inicial hasta un<br />
-5,4% (± 19,1%) a los 12 meses (p = 0,00004), lo que puede reflejar el limitado efecto limitado ahorrador de hueso del calcio. 13<br />
Las concentraciones medias de BAP en todas las pacientes tratadas con ALN se redujeron un 30,5 ± 24,6% a los 3 meses, un 42,8<br />
± 17,3% a los 6 meses y un 42,2 ± 19,2% a los 12 meses. Las pacientes tratadas con ALN fueron más propensas que las tratadas<br />
con CTL a mostrar pérdidas de BAP que sobrepasaran el cambio porcentual mínimo 14 , presentando una reducción ≥ 25% el 68,5%,<br />
83,9% y 86,1% de las pacientes de ALN y el 9,5%, 15,9% y 9.0% de las pacientes tratadas con CTL a los 3, 6 y 12 meses. En la<br />
siguiente figura se presentan las distribuciones del cambio porcentual respecto a los valores iniciales de BAP al cabo de 12 meses en<br />
los grupos de ALN y CTL.<br />
14,0 – 15,9<br />
14,0 – 15,9<br />
16,0 – 17,9<br />
16,0 – 17,9<br />
18,0 – 19,9<br />
18,0 – 19,9<br />
20,0 – 21,9<br />
20,0 – 21,9<br />
Comienzo CTL<br />
Comienzo ALN<br />
22,0 – 23,9<br />
22,0 – 23,9<br />
24,0 – 25,9<br />
12 meses CTL<br />
12 meses ALN<br />
Remodelación ósea decreciente U/L BAP<br />
Remodelación ósea creciente<br />
24,0 – 25,9<br />
47<br />
ESPAÑOL
48<br />
Proporción de población (%)<br />
Distribución del cambio porcentual en los niveles de BAP al cabo de 12 meses<br />
Tratamiento con alendronato (ALN) o calcio (CTL)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
< -70,0%<br />
-70,0 a -60,1%<br />
A los 12 meses, las pacientes del grupo de ALN habían ganado LSBMD en comparación con las de CTL (p < 0,00001) según se<br />
muestra en la tabla siguiente.<br />
Cambios en la LSBMD (Media ± DE)<br />
-60,0 a -50,1%<br />
-50,0 a -40,1%<br />
n Inicial (g/cm 2 ) 12 meses (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 159 0,75 ± 0,09 0,74 ± 0,09 -0,6 ± 3,4<br />
ALN 121 0,74 ± 0,10 0,79 ± 0,10 5,5 ± 4,1<br />
-40,0 a -30,1%<br />
Estos resultados indican que el análisis Metra BAP es seguro y eficaz para el control del efecto antirreabsortivo del tratamiento con<br />
aminobisfosfonato (alendronato) entre las personas diagnosticadas de osteoporosis.<br />
Uso de Metra BAP para el control del tratamiento antirreabsortivo hormonal y la previsión de la respuesta<br />
esquelética (densidad mineral ósea) en mujeres posmenopáusicas<br />
Control del tratamiento:<br />
Se llevó a cabo con éxito un ensayo aleatorizado, controlado y multicéntrico con objeto de establecer la seguridad y la eficacia del<br />
análisis Metra BAP para controlar los cambios de las concentraciones séricas de BAP asociados con la terapia antirreabsortiva con<br />
estrógenos/progestina. El incremento de la remodelación ósea y la pérdida significativa de hueso suelen estar asociadas con una<br />
carencia estrogénica posmenopáusica. Se ha demostrado que la reposición de estrógenos reduce con eficacia la remodelación ósea<br />
y protege la masa ósea existente. 3,6 Las pacientes eran mujeres posmenopáusicas, con una edad de 45 a 64 años (media de 56 ± 4<br />
años), que habían experimentado menopausia natural o quirúrgica en los últimos 10 años. Al comienzo, las pacientes idóneas fueron<br />
aleatorizadas a uno de los siguientes grupos de tratamiento activo (HRT): Premarin® (0,625 mg diarios) con progestina placebo,<br />
Premarin® (0,625 mg diarios) y progestina activa (Provera® 2,5 mg/día continuos, Provera® 10 mg/día cíclicos o progesterona<br />
micronizada 200 mg/día cíclicos); o grupo de control (CTL): estrógeno placebo y progestina placebo. Se obtuvieron muestras<br />
séricas iniciales y a los 12 meses de todas las pacientes.<br />
La concentración inicial media de BAP (± 1 DE) (20,7 ± 7,6 frente a 20,3 ± 6,8 u/l; p = 0,704) y la LSBMD (0,97 ± 0,17 frente a<br />
0,97 ± 0,15 g/cm2 ; p = 0,970) presentaron valores similares para CTL y HRT. En la siguiente figura se muestran las distribuciones<br />
de los valores iniciales de BAP en el tratamiento con HRT y CTL por proporción de la población estudiada.<br />
Distribución de los niveles iniciales de BAP<br />
CTL<br />
HRT<br />
30,0%<br />
Proporción de población (%)<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-30,0 a -20,1%<br />
Remodelación ósea decreciente Cambio<br />
porcentual<br />
Remodelación ósea creciente<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
11,1 – 13<br />
13,1 – 15<br />
15,1 – 17<br />
17,1 – 19<br />
19,1 – 21<br />
-20,0 a -10,1%<br />
21,1 – 23<br />
-10,0 a -0,1%<br />
23,1 – 25<br />
0,0 a 9,9%<br />
25,1 – 27<br />
12 meses CTL<br />
12 meses ALN<br />
Remodelación ósea decreciente U/L BAP<br />
Remodelación ósea creciente<br />
10,0 a 19,9%<br />
27,1 – 29<br />
≥ 20,0%<br />
> 29
La BAP fue significativamente inferior para la HRT que para el tratamiento con CTL a los 12 meses (13,3 ± 5,0 frente a 21,9 ±<br />
7,9 u/l; p < 0,00001). En la siguiente figura se presentan las distribuciones de los valores de BAP al cabo de 12 meses en los grupos<br />
de HRT y CTL.<br />
Proporción de población (%)<br />
Distribución de los niveles de BAP al cabo de 12 meses<br />
Terapia con estrógeno/progestina (HRT) o placebo (CTL)<br />
La concentración media de BAP (± 1 DE) en pacientes tratados con CTL aumentó ligeramente desde el valor inicial hasta el +9,8%<br />
(± 33,2%) a los 12 meses (p = 0,08) mientras que las concentraciones de BAP en pacientes tratadas con HRT descendieron desde<br />
los valores iniciales hasta -32,4 (± 21,5%) a los 12 meses (p < 0,00001). Las pacientes tratadas con HRT presentaron una mayor<br />
tendencia que las de de CTL a mostrar pérdidas de BAP que sobrepasaran el cambio porcentual mínimo 12 ; el 73,3% de pacientes<br />
de HRT y el 3,4% de las pacientes tratadas con CTL presentaron una reducción ≥ 25% a los 12 meses. En la siguiente figura se<br />
presentan las distribuciones del cambio porcentual de los valores de BAP respecto al valor inicial al cabo de 12 meses en los grupos<br />
de HRT y CTL.<br />
Proporción de población (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
11,1 – 13<br />
Distribución del cambio porcentual en los niveles de BAP al cabo de 12 meses<br />
Terapia con estrógeno/progestina (HRT) o placebo (CTL)<br />
CTL<br />
HRT<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
Al cabo de 12 meses, las pacientes tratadas con HRT habían ganado LSBMD en comparación con las de CTL (p < 0,00001),<br />
como se muestra en la siguiente tabla.<br />
Cambios en la LSBMD (Media ± DE)<br />
13,1 – 15<br />
15,1 – 17<br />
n Inicial (g/cm 2 ) 12 meses (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 58 0,97 ± 0,17 0,95 ± 0,16 -1,6 ± 2,8<br />
HRT 262 0,97 ± 0,15 1,00 ± 0,15 +3,5 ± 2,8<br />
Estos resultados indican que el análisis Metra BAP es seguro y eficaz para controlar el efecto antirreabsortivo de la terapia de<br />
reposición hormonal en mujeres posmenopáusicas.<br />
17,1 – 19<br />
19,1 – 21<br />
Remodelación ósea decreciente U/L BAP<br />
Remodelación ósea creciente<br />
< -70,0%<br />
-70,0 a -60,1%<br />
-60,0 a -50,1%<br />
-50,0 a -40,1%<br />
-40,0 a -30,1%<br />
-30,0 a -20,1%<br />
-20,0 a -10,1%<br />
21,1 – 23<br />
-10,0 a -0,1%<br />
23,1 – 25<br />
25,1 – 27<br />
0,0 a 9,9%<br />
27,1 – 29<br />
10,0 a 19,9%<br />
CTL<br />
HRT<br />
Remodelación ósea decreciente Cambio<br />
porcentual<br />
Remodelación ósea creciente<br />
> 29<br />
≥ 20,0%<br />
49<br />
ESPAÑOL
Previsión de la respuesta esquelética:<br />
En la siguiente figura se describe la reducción porcentual de los valores de BAP desde el comienzo hasta los 12 meses por cuartil para<br />
el grupo tratado con HRT. Las pacientes del cuartil más alto (C1: mayor reducción porcentual) presentaron la mayor ganancia de<br />
LSBMD en respuesta al tratamiento con HRT.<br />
50<br />
Cambio porcentual de LSBMD a los 12 meses (+/- DEM)<br />
Grupo de HRT - Valores de cambio porcentual en la BAP hasta los 12 meses estratificados por<br />
cuartil y cambio porcentual correspondiente en la LSBMD a los 12 meses<br />
En la siguiente figura se proporciona el análisis de regresión lineal (y = -0,060x + 0,011, r = -0,51; p < 0,001) del cambio<br />
porcentual de la BAP desde el comienzo hasta los 12 meses y del cambio porcentual de la BMD desde el comienzo hasta los 12<br />
meses para todas las pacientes del estudio (con placebo y tratadas).<br />
Cambio porcentual de LSBMD a los 12 meses<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
1<br />
0<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
C1 (-66,5 a -45,9) C2 (-45,9 a -36,0)<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-5,0%<br />
-10,0%<br />
p < 0,001<br />
Estudio de HRT - Regresión lineal del cambio porcentual en<br />
LSBMD y BAP desde el comienzo hasta los 12 meses<br />
El análisis mediante tablas de contingencia demostró que una reducción ≥ 25% de la BAP a los 12 meses estaba significativamente<br />
asociada (p < 0,0001) con una respuesta esquelética positiva al HRT (ganancia de la densidad mineral ósea) a los 12 meses.<br />
Los intervalos de confianza binómicos de un 85% (aproximación de segundo orden) para la sensibilidad y la especificidad de utilizar<br />
una reducción del 25% en la BAP para predecir una respuesta al HRT son:<br />
Sensibilidad = 77% (IC del 95%, 75%, 82%); Especificidad = 61% (IC del 95%, 41%, 78%).<br />
Estos resultados indican que el cambio porcentual en la concentración de BAP puede utilizarse para predecir el grado de respuesta<br />
esquelética (BMD) al tratamiento con HRT.<br />
AS<strong>IS</strong>TENCIA<br />
Para realizar pedidos u obtener asistencia técnica, póngase en contacto con un representante de Quidel llamando a los teléfonos<br />
+1 408-616-4301 de lunes a viernes entre las 8:00 a.m. y las 5:00 p.m., hora del Pacífico. También pueden efectuarse pedidos por<br />
fax al número +1 408-616-4310.<br />
Para servicios fuera de EE.UU., póngase en contacto con su distribuidor local.<br />
C3 (-36,0 a -23,8) C4 (-23,8 a 167,3)<br />
Cuartiles por cambio porcentual de BAP a los 12 meses<br />
-15,0%<br />
-60,0% -40,0% -20,0%<br />
y = -0,060x + 0,011<br />
r = 0,51<br />
p < 0,001<br />
0,0% 20,0% 40,0% 60,0%<br />
Cambio porcentual de BAP a los 12 meses
GUIA DE CONSULTA RÁPIDA PARA OS PASSOS DO ENSAIO<br />
1. Adicionar 125 µL de tampão de análise.<br />
2. Adicionar 20 µL de padrões, controlos e amostras; agitar.<br />
3. Incubar 3 horas ± 10 minutos à 20–28°C.<br />
4. Lavar 4 vezes com tampão de lavagem 1X.<br />
5. Adicionar 150 µL de solução de substrato de trabalho à 20–28°C.<br />
6. Incubar 30 ± 5 minutos à 20–28°C.<br />
7. Adicionar 100 µL de solução de paragem da reacção e ler a densidade óptica a 405 nm.<br />
FINALIDADE<br />
O imunoensaio Metra BAP proporciona uma medida quantitativa da actividade da fosfatase alcalina específica do osso (BAP)<br />
no soro como um indicador da actividade osteoblástica. A medição da BAP destina-se a ser utilizada como auxiliar nas seguintes<br />
situações:<br />
� tratamento da osteoporose pós-menopausa e da doença de <strong>Page</strong>t;<br />
� monitorização das mulheres depois da menopausa submetidas a terapêutica hormonal ou com bifosfonatos;<br />
� previsão da resposta óssea à terapêutica hormonal nas mulheres depois da menopausa.<br />
RESUMO E EXPLICA<strong>Ç</strong>ÃO<br />
A isoforma esquelética, ou específica do osso, da fosfatase alcalina é uma glicoproteína tetramérica que se encontra na superfície das<br />
células dos osteoblastos. 1 Os osteoblastos são as células responsáveis pela síntese da nova matriz óssea e pela sua mineralização.<br />
A função da BAP não foi ainda completamente elucidada, embora o seu papel na mineralização óssea tenha sido confirmado. 1,2,3<br />
O osso está constantemente sujeito a um processo metabólico designado por renovação. 3,4 Tal inclui um processo de degradação,<br />
reabsorção óssea, mediado pela acção dos osteoclastos, e um processo de construção, formação óssea, mediado pela acção dos<br />
osteoblastos. 3,4 A renovação é necessária para a manutenção e saúde geral do osso e está bem interligada; ou seja, a reabsorção e<br />
a formação estão em equilíbrio. 3,4 Nos estados anormais do metabolismo ósseo este processo deixa de estar interligado e, quando<br />
a reabsorção supera a formação, o resultado é uma perda líquida de osso que pode conduzir à osteoporose 3,4 ou a perturbações do<br />
tecido ósseo nas lesões pagéticas. 5 A medição de marcadores bioquímicos específicos destes eventos de renovação proporciona<br />
dados analíticos sobre a velocidade do metabolismo ósseo ou “renovação”. 3,4<br />
A osteoporose é uma doença metabólica óssea caracterizada por uma renovação óssea anómala. É uma doença sistémica do<br />
esqueleto caracterizada por uma baixa massa óssea e deterioração microarquitectónica do tecido ósseo, com o consequente<br />
aumento da susceptibilidade às fracturas. 6 O tipo mais frequente de osteoporose ocorre nas mulheres após a menopausa como<br />
resultado da deficiência de estrogénios produzida pela cessação da função dos ovários. 3 A reposição dos níveis de estrogénios<br />
anteriores à menopausa pela terapêutica de substituição impede a perda óssea e a osteoporose. 3,6 A utilização de estrogénios e de<br />
uma classe de compostos conhecidos como bifosfonatos constitui uma terapêutica que inibe a reabsorção e que pode ser utilizada<br />
para impedir a perda óssea ou tratar a osteoporose. 3,6,7<br />
A osteoporose pode também resultar do facto de não ser atingida uma massa óssea máxima durante os anos de crescimento, de<br />
um desequilíbrio da renovação óssea relacionado com a idade, com um excesso líquido de reabsorção, e de uma série de situações<br />
clínicas e terapêuticas que induzem a perda óssea ou desequilíbrios na renovação óssea. 3 Estas incluem doenças endócrinas como o<br />
hipogonadismo, o hipertiroidismo, o hiperparatiroidismo e o hipercortisolismo; insuficiência renal; cancros com metástases ósseas;<br />
doenças gastrointestinais relacionadas com a nutrição e o metabolismo dos minerais; doenças do tecido conjuntivo; mieloma<br />
múltiplo; imobilização crónica, alcoolismo ou tabagismo; e terapêutica crónica com heparina ou corticosteróides. 3<br />
A doença óssea de <strong>Page</strong>t é uma perturbação focal associada a dores e a deformações ósseas nos doentes sintomáticos. 5 As lesões<br />
pagéticas caracterizam-se por uma matriz óssea de estrutura altamente anómala resultante da velocidade excessiva da actividade<br />
de renovação. As lesões ocorrem predominantemente no crânio, na coluna, na bacia e nos ossos compridos, podendo provocar<br />
fracturas e lesões a nível neurológico. 5 A etiologia da doença de <strong>Page</strong>t é desconhecida, mas as hipóteses que envolvem factores<br />
genéticos e virais são convincentes. 5 Os bifosfonatos e a calcitonina são actualmente utilizados para reduzir a elevada taxa de<br />
actividade bioquímica aos níveis normais, permitindo a reposição da estrutura óssea normal. 9<br />
Como medida quantitativa de um marcador da renovação óssea, a BAP proporciona informações úteis sobre a renovação óssea<br />
na osteoporose e na doença de <strong>Page</strong>t, e sobre as alterações na actividade da doença produzidas pela terapêutica que inibe a<br />
reabsorção. 10-12 Para o ensaio Metra BAP recorreu-se a uma tecnologia de anticorpos para produzir um anticorpo monoclonal que<br />
demonstra especificidade pela BAP. 10 A especificidade do anticorpo monoclonal utilizado no ensaio permite a quantificação simples,<br />
conveniente, reprodutível e directa da actividade da BAP no soro.<br />
PRINCÍPIO DO PROCEDIMENTO<br />
O ensaio Metra BAP é um imunoensaio num formato de tira de microtitulação que utiliza um anticorpo monoclonal anti-BAP<br />
revestido na tira para captar a BAP na amostra. A actividade enzimática da BAP captada é detectada com um substrato de pNPP.<br />
51<br />
PORTUGUÊS
REAGENTES E MATERIA<strong>IS</strong> FORNECIDOS<br />
96 ensaios para fosfatase alcalina específica do osso<br />
O kit Metra BAP EIA contém o seguinte:<br />
A BAP Standards A - F Peças 4395 a 4400 0,3 mL cada<br />
B (A = 0, B = 2, C = 20, D = 50, E = 80, F = 140 U/L BAP)<br />
C BAP purificada proveniente de células SAOS-2 de osteossarcoma numa solução tamponada contendo cloreto de magnésio,<br />
D sulfato de zinco, surfactante, proteína transportadora, corante azul e azida de sódio (0,05%) como conservante.<br />
E<br />
F<br />
L Controlos inferiores/superiores Peças 4401, 4402 0,3 mL cada<br />
H BAP purificada proveniente de células SAOS-2 de osteossarcoma numa solução tamponada contendo cloreto de magnésio,<br />
sulfato de zinco, surfactante, proteína transportadora, corante azul e azida de sódio (0,05%) como conservante.<br />
q Tiras revestidas Peça 4660 12 de cada<br />
Anticorpo de IgG anti-BAP monoclonal murínico purificado absorvido em tiras de poços.<br />
w Solução de paragem da reacção Peça 4702 15 mL<br />
NaOH 0,5N<br />
e Tampão de lavagem 10X Peça 4703 55 mL<br />
Detergente não-iónico numa solução tamponada contendo azida de sódio (0,05%) como conservante.<br />
r Tampão de análise Peça 4403 27 mL<br />
Uma solução tamponada contendo cloreto de magnésio, sulfato de zinco, surfactante e azida de sódio (0,05%) como<br />
conservante.<br />
t Tampão de substrato Peça 4404 3 x 10 mL<br />
Uma solução de 2-amino-2-metil-1-propanol contendo HEDTA, cloreto de magnésio, sulfato de zinco e azida de sódio (0,05%)<br />
como conservante.<br />
y Comprimidos de substrato Peça 0012 3 x 20 mg<br />
p-nitrofenil fosfato.<br />
MATERIA<strong>IS</strong> NECESSÁRIOS MAS NÃO FORNECIDOS<br />
Micropipetas para distribuição de 20 µL e 100 a 300 µL<br />
Itens adequados para medição de líquidos de 100 a 300 mL<br />
Recipiente para diluição do tampão de lavagem<br />
Água desionizada ou destilada<br />
Leitor de microplacas com capacidade de efectuar leituras da densidade óptica a A405 > 2,0<br />
Software adequado a regressão da curva de calibração quadrática<br />
ADVERTÊNCIAS E PRECAU<strong>Ç</strong>ÕES<br />
1. Para diagnóstico in vitro.<br />
2. Tratar as amostras como material que possa constituir perigo biológico. Seguir as precauções universais ao manusear o conteúdo<br />
deste kit e quaisquer amostras dos doentes.<br />
3. Eliminar os recipientes e o conteúdo não utilizado de acordo com os requisitos regulamentares federais, estaduais e locais.<br />
4. Utilizar os reagentes fornecidos como uma unidade inteira antes da data de validade inscrita na etiqueta da embalagem.<br />
5. Conservar os reagentes do ensaio conforme indicado.<br />
6. Não utilizar as tiras revestidas se a bolsa estiver perfurada.<br />
7. Analisar cada amostra em duplicado.<br />
8. NaOH 0,5N é considerado corrosivo e pode provocar queimaduras graves. Não ingerir. Evitar o contacto com a pele, os olhos ou o<br />
vestuário. Se houver contacto, lavar com água. Em caso de ingestão, consultar um médico.<br />
9. A azida de sódio é utilizada como conservante. O contacto ou ingestão acidental de tampões contendo azida de sódio pode<br />
provocar irritação na pele, nos olhos ou na boca. Utilizar os tampões apenas para os fins previstos e evitar o contacto com ácidos.<br />
A azida de sódio pode reagir com as canalizações de chumbo e de cobre, formando azidas metálicas altamente explosivas.<br />
Aquando da sua eliminação, deixe correr muita água de modo a evitar uma acumulação deste produto.<br />
10. O tampão de substrato contém 2-amino-2-metil-1-propanol e poderá provocar irritação nos olhos e/ou pele em caso de<br />
contacto prolongado. Utilizar vestuário de protecção, luvas e protecção ocular/facial adequados. As zonas que tenham estado<br />
em contacto com este produto deverão ser imediatamente lavadas com água e sabão.<br />
11. Diluir as amostras superiores a 140 U/L em tampão de análise e analisar novamente. Incluir o factor de diluição no cálculo final.<br />
12. Para assegurar o fornecimento atempado dos reagentes, recomenda-se a utilização de pipetas multicanal ou de repetição.<br />
13. Para uma medição precisa de amostras, adicionar as amostras e os padrões com precisão. Utilizar a pipeta com cuidado<br />
recorrendo apenas a equipamento calibrado.<br />
14. Este ensaio pode ser efectuado com qualquer método de lavagem validado.<br />
52
PREPARA<strong>Ç</strong>ÃO DOS REAGENTES<br />
Colocar os reagentes e os materiais destinados ao ensaio à temperatura de 20–28°C antes de os utilizar.<br />
Depois de retirar os reagentes e materiais necessários, volte a colocar os materiais não usados à<br />
temperatura de 2–8°C.<br />
Tiras revestidas<br />
Remover a armação das tiras de poços e retirar o número necessário de tiras revestidas da bolsa (ver quadro na secção<br />
PROCEDIMENTO DE ENSAIO). Verificar se a bolsa que contém as tiras não usadas fica perfeitamente selada.<br />
Tampão de lavagem<br />
Preparar a quantidade necessária de tampão de lavagem 1X (ver quadro) diluindo o tampão de lavagem 10X concentrado na<br />
proporção de 1:10 com água desionizada. Conservar a 20–28°C. Utilizar o tampão de lavagem 1X nas 21 dias seguintes à preparação.<br />
Solução de substrato de trabalho<br />
Preparar a solução de substrato de trabalho 1 hora antes da sua utilização. Colocar um comprimido de substrato em cada frasco<br />
de tampão de substrato necessário à 20–28°C (ver quadro). Deixar os comprimidos dissolver durante 30 a 60 minutos. Agitar<br />
vigorosamente os frascos para misturar completamente. Eliminar a solução de substrato de trabalho restante após a utilização.<br />
ARMAZENAMENTO<br />
Conservar o kit a 2–8°C. Não congelar. Conservar os reagentes não utilizados a 2–8°C. Equilibrar os reagentes até 20–28°C antes de<br />
utilizar. Conservar o tampão de lavagem 1X (10X diluído) a 20–28°C.<br />
COLHE<strong>ITA</strong> E CONSERVA<strong>Ç</strong>ÃO DE AMOSTRAS<br />
Efectuar a colheita do soro utilizando uma técnica de venipunctura padrão. As amostras devem ser colhidas sem anticoagulantes e<br />
de forma a evitar a hemólise. Deixar o sangue coagular e separar o soro por centrifugação. O soro pode ser conservado durante 5 dias<br />
a 2–8°C, a ≤ -40°C durante 12 meses ou a ≤ -80°C durante 36 meses. Não sujeitar as amostras a mais de 3 ciclos de congelação<br />
e descongelação.<br />
O soro “do coágulo”, o soro do tubo de separação do soro, o plasma de heparina Na e o plasma de heparina Li produzem resultados<br />
substancialmente equivalentes. Recomenda-se que as amostras de plasma não sejam preparadas utilizando agentes de quelação<br />
como o EDTA ou o citrato.<br />
PROCEDIMENTO DE ENSAIO<br />
Ler o folheto informativo completo antes de iniciar o ensaio.<br />
Ver PREPARA<strong>Ç</strong>ÃO DOS REAGENTES antes de prosseguir.<br />
Determine a quantidade de cada reagente necessário para o número de tiras que vão ser utilizadas.<br />
N.º de tiras 4 6 8 12<br />
N.º de amostras (analisadas em duplicado) 8 16 24 40<br />
Substrato (frasco) 1 1 2* 2*<br />
Tampão de lavagem 1X (mL) 100 150 200 300<br />
*Quando se vai utilizar mais do que um frasco, combinar o conteúdo e misturar antes de utilizar.<br />
Incubação da amostra<br />
1. Remover a armação das tiras de poços e retirar o número necessário de tiras revestidas da bolsa (ver quadro) imediatamente<br />
antes de utilizar. Verificar se a bolsa de papel de alumínio que contém as tiras não usadas fica perfeitamente selada.<br />
2. Colocar o número pretendido de tiras revestidas na armação das tiras de poços. Rotular as tiras para evitar que se misturem em<br />
caso de remoção acidental da armação das tiras de poços.<br />
3. Adicionar 125 µL de tampão de análise a cada poço.<br />
4. Adicionar 20 µL de padrão, controlo ou amostra a cada poço. Não misturar com tampão de análise por meio de pipetagem de<br />
repetição. Este passo deverá estar concluído em 30 minutos. Agitar suavemente as tiras para assegurar a mistura<br />
da amostra e do tampão.<br />
5. Incubar durante 3 horas (± 10 minutos) a 20–28°C.<br />
6. Preparar a solução de substrato de trabalho 1 hora antes da sua utilização. Colocar um comprimido de substrato em cada frasco<br />
de tampão de substrato necessário à 20–28°C (ver quadro). Deixar os comprimidos dissolver durante 30 a 60 minutos. Agitar<br />
vigorosamente os frascos para misturar completamente.<br />
Passo de lavagem<br />
7. Preparar a quantidade necessária de tampão de lavagem 1X (ver quadro) diluindo o tampão de lavagem 10X na proporção de<br />
1:10 com água desionizada. Conservar a 20–28°C. Utilizar o tampão de lavagem 1X nas 21 dias seguintes à preparação.<br />
8. Inverter/esvaziar manualmente as tiras. Adicionar pelo menos 250 µL de tampão de lavagem 1X a cada poço e inverter/esvaziar<br />
manualmente as tiras. Repetir mais três vezes para um total de quatro lavagens. Secar as tiras comprimindo-as bem sobre<br />
toalhas de papel após a última lavagem.<br />
Incubação do substrato<br />
9. Adicionar 150 µL de solução de substrato de trabalho a cada poço. Eliminar a solução de substrato de trabalho restante após a<br />
utilização.<br />
10. Incubar durante 30 minutos (± 5 minutos) a 20–28°C.<br />
53<br />
PORTUGUÊS
Parar/Ler<br />
11. Adicionar 100 µL de solução de paragem a cada poço. Adicionar a solução de paragem seguindo o mesmo padrão e os mesmos<br />
intervalos de tempo utilizados na adição da solução de substrato.<br />
12. Ler a densidade óptica a 405 nm. Assegurar que não existem bolhas de grandes dimensões nos poços e que o fundo das tiras<br />
está limpo. As tiras devem ser lidas 15 minutos depois da adição da solução de paragem da reacção.<br />
13. É necessário utilizar software de quantificação com uma equação de regressão adequada a uma curva de calibração<br />
quadrática para analisar os resultados do ensaio Metra BAP.<br />
Equação: y = A + Bx + Cx 2<br />
CONTROLO DE QUALIDADE<br />
O Certificado de Análise incluído neste kit é específico do lote e deve ser utilizado para verificar se os resultados obtidos pelo seu<br />
laboratório são semelhantes aos obtidos na Quidel Corporation. Os valores da densidade óptica são fornecidos e devem ser utilizados<br />
apenas como linha de orientação. Os resultados obtidos pelo seu laboratório podem ser diferentes.<br />
São fornecidos intervalos para o controlo de qualidade. Os valores de controlo destinam-se a verificar a validade da curva e os<br />
resultados das amostras. Cada laboratório deve definir os seus próprios parâmetros para os limites aceitáveis dos ensaios. Se<br />
os valores de controlo NÃO estiverem dentro dos limites de aceitação do seu laboratório, os resultados dos ensaios devem ser<br />
considerados questionáveis e as amostras devem ser repetidas.<br />
Se a densidade óptica do Metra BAP Standard F for inferior a 1,0, os resultados devem ser considerados questionáveis e as amostras<br />
devem ser repetidas.<br />
INTERPRETA<strong>Ç</strong>ÃO DOS RESULTADOS<br />
Os resultados das amostras são expressos como U/L e não necessitam de ser corrigidos para a diluição (a não ser que a amostra<br />
tenha sido diluída antes das análises).<br />
No ensaio Metra BAP, 1 unidade representa 1 µmol de pNPP hidrolizado por minuto a 25°C em tampão de 2-amino-2-metil-1-propanol.<br />
Curva padrão representativa<br />
Níveis padrão da BAP: 0, 2, 20, 50, 80, 140 U/L<br />
LIM<strong>ITA</strong><strong>Ç</strong>ÕES DO PROCEDIMENTO<br />
Interferência da HAMA<br />
Algumas pessoas têm anticorpos à proteína do rato (HAMA), que podem causar interferência nos imunoensaios que empregam<br />
anticorpos derivados de ratos. Foi referido, em particular, que as amostras de soro de doentes que foram submetidos a terapêutica ou<br />
a procedimentos de diagnóstico que incluem a perfusão de anticorpo monoclonal de rato podem produzir resultados erróneos. Por<br />
este motivo, os resultados obtidos com o ensaio Metra BAP devem ser utilizados apenas em conjunto com os resultados de qualquer<br />
outro procedimento de diagnóstico e com as informações disponíveis provenientes da avaliação clínica do doente.<br />
As amostras com aumentos significativos da actividade da fosfatase alcalina hepática podem causar resultados aberrantemente<br />
elevados no ensaio Metra BAP.<br />
As pessoas com doença de <strong>Page</strong>t que têm baixos níveis da doença podem ter níveis de fosfatase alcalina específica do osso situados<br />
dentro do intervalo de referência do ensaio Metra BAP.<br />
VALORES DA AMOSTRA<br />
Os intervalos de referência da BAP foram estabelecidos para homens normais com mais de 25 anos de idade (n = 126), mulheres<br />
normais antes da menopausa com idades compreendidas entre os 25 e os 44 anos (n=178) e mulheres normais depois da<br />
menopausa (n = 107). Para efeitos do estabelecimento dos intervalos de referência, os participantes normais foram definidos como:<br />
� Basicamente saudáveis, sem distúrbios ósseos, endócrinos ou crónicos<br />
� Ciclos menstruais regulares (mulheres antes da menopausa)<br />
� Nem grávidas nem em fase de aleitamento (mulheres)<br />
� Sem estarem actualmente a tomar qualquer medicação conhecida por influenciar o metabolismo ósseo<br />
54<br />
Densidade Óptica (405 nm)<br />
3,0<br />
2,0<br />
1,0<br />
0,0<br />
0 25 50 75 100 125 150<br />
BAP (U/L)
Os valores podem ser influenciados por factores como a baixa produção de estrogénio, baixa ingestão de cálcio ou actividade física<br />
reduzida. 8 A deficiência de estrogénio nas mulheres após a menopausa pode ter como resultado uma renovação óssea aumentada. 3,4<br />
Cada laboratório deve definir os seus próprios intervalos de referência normais. Os limites são expressos como intervalos de referência<br />
não paramétricos (IC de 90%).<br />
Idade (anos) Intervalos (U/L) Média<br />
Mulheres 25 - 44 Antes da menopausa 11,6 – 29,6 18,3<br />
Mulheres ≥ 45 Depois da menopausa 14,2 – 42,7 25,0<br />
Homens ≥ 25 15,0 – 41,3 23,2<br />
CARACTERÍSTICAS DE DESEMPENHO<br />
Especificações do anticorpo<br />
O anticorpo da fosfatase alcalina específica do osso tem uma elevada afinidade selectiva pela isoforma da fosfatase alcalina<br />
específica do osso, uma baixa reactividade cruzada com a forma de fosfatase alcalina do fígado e uma ligação negligenciável das<br />
isoenzimas intestinais e placentárias.<br />
Isoenzima AP % Reactividade<br />
Osso 100<br />
Fígado 3 – 8<br />
Placenta 0<br />
Intestino 0,4<br />
Sensibilidade<br />
O limite de detecção mínimo do ensaio Metra BAP é 0,7 U/L, determinado pelo limite superior de 3 DP num estudo de precisão de<br />
padrão zero.<br />
Recuperação – Recuperação por fortificação<br />
A recuperação por fortificação foi determinada adicionando uma quantidade conhecida de BAP purificada a amostras de soro com<br />
diferentes níveis de BAP endógena. Os resultados típicos são fornecidos após a fortificação das amostras de soro com concentrações<br />
baixas, médias e elevadas de BAP seguida de análise em triplicado.<br />
Endógena (U/L) Adicionada (U/L) Observada (U/L) Recuperação (%)<br />
13,4 15,7 29,1 99<br />
17,6 37,5 55,3 99<br />
27,2 57,2 88,1 106<br />
Recuperação – Linearidade<br />
A linearidade foi determinada diluindo amostras em série e comparando os valores observados com os valores esperados.<br />
Os resultados típicos são apresentados a seguir.<br />
Amostra Factor de diluição Observado (U/L) Esperado (U/L) Recuperação (%)<br />
1 razão 108,5 - -<br />
1:2 51,1 54,2 94<br />
1:4 25,8 27,1 99<br />
1:6 18,0 18,1 99<br />
2 razão 39,1 - -<br />
1:2 20,1 19,5 103<br />
1:4 10,3 9,8 105<br />
1:6 6,7 6,5 103<br />
3 razão 58,4 - -<br />
1:2 29,9 29,2 102<br />
1:4 15,7 14,6 108<br />
1:6 9,7 9,7 100<br />
Precisão<br />
A precisão intra ensaios e entre ensaios foi determinada analisando 3 amostras de soro em 9 ensaios. Os resultados típicos são<br />
apresentados a seguir.<br />
BAP (U/L BAP) Intra ensaios 1 CV% Entre ensaios 2 CV%<br />
12 5,8 5,2<br />
35 3,9 7,6<br />
100 5,2 5,0<br />
1 n=21 2 n=6 ensaios<br />
55<br />
PORTUGUÊS
Substâncias interferentes<br />
As substâncias seguintes foram analisadas às concentrações especificadas, tendo sido concluído que não interferem com a análise.<br />
Substância Concentração<br />
Hemoglobina 500 mg/dL<br />
Bilirrubina 25 mg/dL<br />
Triglicéridos 1420 mg/dL<br />
Proteína total 6,0 g/dL †<br />
Proteína total 15,6 g/dL†<br />
Proteína total 6,0 g/dL ‡<br />
Proteína total 15,6 g/dL ‡<br />
† Proteína com água<br />
56<br />
‡ Proteína com BAP (concentração de BAP = 43,6 U/L)<br />
Interferências de fármacos<br />
Foram adicionadas diversas concentrações de fármacos a três “pools” de soro separados contendo aproximadamente 35, 70 e 105<br />
U/L de BAP e analisadas em triplicado. Os fármacos e as concentrações mais elevadas analisadas foram os seguintes:<br />
Substância Concentração mais elevada<br />
Etidronato 350 µg/mL<br />
Estrogénio 100 µg/mL<br />
Ibuprofeno 150 µg/mL<br />
Acetominofeno 350 µg/mL<br />
Aspirina 350 µg/mL<br />
Calcitonina - Humana 80 µg/mL<br />
Calcitonina - Salmão 80 µg/mL<br />
Cálcio 500 µg/mL<br />
Mistura de noretindrona/etinilestradiol (contraceptivo oral) 3 mg/mL<br />
Vitamina D 400 IU/mL<br />
Exactidão<br />
Foram realizados estudos comparativos para avaliar as correlações entre as medições da fosfatase alcalina específica do osso (BAP)<br />
no soro, obtidas utilizando o ensaio Metra BAP, e os resultados obtidos utilizando três métodos actualmente comercializados para<br />
medir a fosfatase alcalina total (TAP) ou a BAP. Os estudos foram realizados num centro de investigação clínica independente,<br />
utilizando soros de 114 doentes com doença de <strong>Page</strong>t e 464 participantes saudáveis. O primeiro método comparativo foi uma<br />
técnica colorimétrica para a medição da TAP. O coeficiente de correlação (r) obtido entre este método colorimétrico e o ensaio Metra<br />
BAP foi de 0,99. O segundo método comparativo foi um método de electroforese para a determinação dos níveis isoenzimáticos<br />
de BAP (r = 0,99). O terceiro método comparativo foi um ensaio imunorradiométrico para a medição da BAP (r = 0,99). Dos 114<br />
doentes diagnosticados com doença de <strong>Page</strong>t, 101 doentes apresentavam valores superiores ao limite superior dos intervalos de<br />
referência do ensaio Metra BAP. Treze doentes apresentavam valores inferiores ao limite superior dos intervalos de referência.<br />
ESTUDOS CLÍNICOS<br />
Utilização do ensaio Metra BAP para monitorização da eficácia da terapêutica anti-reabsorção na<br />
osteoporose<br />
Foi realizado com sucesso um estudo randomizado multicêntrico para estabelecer a segurança e a eficácia do ensaio Metra BAP<br />
para monitorizar as alterações nas concentrações séricas de BAP associadas à terapêutica anti-reabsorção com amino-bifosfonato<br />
(alendronato). As participantes, retiradas de um estudo de maior dimensão sobre a eficácia do alendronato no tratamento da<br />
osteoporose, 7 eram mulheres depois da menopausa, com idades compreendidas entre os 45 e os 84 anos (média 64 ± 7 anos),<br />
diagnosticadas com osteoporose (com base na apresentação clínica ou na densidade mineral óssea basal na coluna lombar [LSBMD]<br />
com mais de 2,5 desvios padrão abaixo da média para mulheres maduras antes da menopausa). Na linha basal, as participantes<br />
elegíveis foram randomizadas para receberem 10 mg de alendronato e 500 mg de cálcio por dia (ALN) ou placebo e 500 mg de<br />
cálcio por dia (CTL). Foram obtidas amostras de soro de todas as participantes na linha basal, aos 3, 6 e 12 meses.<br />
A concentração média (± 1DP) de BAP na linha basal (14,6 ± 5,4 vs. 14,6 ± 4,6, p = 0,900) e LSBMD (0,74 ± 0,10 vs.<br />
0,75 ± 0,09, p = 0,751) apresentaram valores semelhantes para o ALN e o CTL. As distribuições dos valores da BAP na linha basal<br />
no ALN e no CTL estão ilustradas na figura seguinte, por proporção da população do estudo.
Proporção da População (%)<br />
Distribuição dos níveis de BAP na linha basal<br />
A BAP foi significativamente menor para o ALN do que para o CTL ao fim de 3 (9,6 ± 3,5 vs. 13,4 ± 4,0, p
58<br />
Proporção da População (%)<br />
Distribuição da alteração percentual dos níveis de BAP ao fim de 12 meses<br />
Terapêutica com alendronato (ALN) ou cálcio (CTL)<br />
< -70,0%<br />
-70,0 to -60,1%<br />
Ao fim de 12 meses, as participantes do ALN tinham ganho LSBMD em comparação com o CTL (p < 0,00001), conforme indicado<br />
no quadro seguinte.<br />
Alterações na LSBMD (média ± DP)<br />
-60,0 to -50,1%<br />
-50,0 to -40,1%<br />
n Linha basal (g/cm 2 ) 12 meses (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 159 0,75 ± 0,09 0,74 ± 0,09 -0,6 ± 3,4<br />
ALN 121 0,74 ± 0,10 0,79 ± 0,10 5,5 ± 4,1<br />
-40,0 to -30,1%<br />
Estes resultados indicam que o ensaio Metra BAP é seguro e eficaz na monitorização do efeito anti-reabsorção da terapêutica com<br />
amino-bifosfonato (alendronato) entre as participantes diagnosticadas com osteoporose.<br />
Utilização do ensaio Metra BAP na monitorização da terapêutica hormonal anti-reabsorção e na previsão<br />
da resposta óssea (densidade mineral óssea) em mulheres depois da menopausa<br />
Terapêutica de monitorização:<br />
Foi realizado com sucesso um estudo randomizado multicêntrico para estabelecer a segurança e a eficácia do ensaio Metra BAP para<br />
monitorizar as alterações nas concentrações séricas de BAP associadas à terapêutica anti-reabsorção com estrogénio/progestina.<br />
O aumento da renovação óssea e a perda significativa de osso estão frequentemente associados à deficiência de estrogénio depois<br />
da menopausa. Foi demonstrado que a substituição do estrogénio reduz eficazmente a renovação óssea e protege a massa óssea<br />
existente. 3,6 As participantes eram mulheres depois da menopausa, com idades compreendidas entre os 45 e os 64 anos (média<br />
56 ± 4 anos), que tinham atingido a menopausa natural ou cirúrgica nos últimos 10 anos. Na linha basal, as participantes elegíveis<br />
foram randomizadas para um grupo de tratamento activo (terapêutica hormonal de substituição ou THS): Premarin® (0,625 mg<br />
por dia) com progestina placebo, Premarin® (0,625 mg por dia) e uma progestina activa (Provera® 2,5 mg/dia contínua, Provera®<br />
10 mg/dia cíclica ou progesterona micronizada 200 mg/dia cíclica); ou para o grupo de controlo (CTL): estrogénio placebo e<br />
progestina placebo. Foram obtidas amostras de soro de todas as participantes na linha basal e aos 12 meses.<br />
A concentração média (± 1DP) de BAP na linha basal (20,7 ± 7,6 vs. 20,3 ± 6,8 U/L, p = 0,704) e a LSBMD (0,97 ± 0,17 vs. 0,97<br />
± 0,15 g/cm 2 , p = 0,970) foram semelhantes para o CTL e a THS. As distribuições dos valores da BAP na linha basal na THS e no CTL<br />
estão ilustradas na figura seguinte, por proporção da população do estudo.<br />
Proporção da População (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-30,0 to -20,1%<br />
Diminuição da renovação óssea % alteração Aumento da renovação óssea<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
-20,0 to -10,1%<br />
-10,0 to -0,1%<br />
Distribuição dos níveis de BAP na linha basal<br />
11,1 – 13<br />
13,1 – 15<br />
15,1 – 17<br />
17,1 – 19<br />
19,1 – 21<br />
21,1 – 23<br />
23,1 – 25<br />
0,0 to 9,9%<br />
25,1 – 27<br />
12 meses CTL<br />
12 meses ALN<br />
Diminuição da renovação óssea U/L BAP<br />
Aumento da renovação óssea<br />
10,0 to 19,9%<br />
27,1 – 29<br />
≥ 20,0%<br />
CTL<br />
THS<br />
> 29
A BAP foi significativamente menor na THS do que no CTL ao fim de 12 meses (13,3 ± 5,0 vs. 21,9 ± 7,9 U/L, p < 0,00001). As<br />
distribuições dos valores da BAP ao fim de 12 meses nos grupos de THS e de CTL estão ilustradas na figura seguinte.<br />
Proporção da População (%)<br />
Distribuição dos níveis de BAP ao fim de 12 meses<br />
Terapêutica com estrogénio/progestina (THS) ou placebo (CTL)<br />
A concentração média (± 1DP) de BAP nas participantes do CTL aumentou ligeiramente da linha basal para +9,8% (± 33,2%) aos<br />
12 meses (p=0,08), enquanto as concentrações de BAP nas participantes da THS diminuíram da linha basal para –32,4 (± 21,5%)<br />
aos 12 meses (p < 0,00001). As participantes da THS demonstraram maior probabilidade do que as participantes do CTL para sofrer<br />
perdas de BAP superiores à alteração percentual mínima 12 , com 73,3% das participantes da THS e 3,4% das participantes do CTL a<br />
diminuir em ≥ 25% ao fim do período de 12 meses. As distribuições da alteração percentual em relação à linha basal nos valores da<br />
BAP ao fim de 12 meses nos grupos de THS e de CTL estão ilustradas na figura seguinte.<br />
Proporção da População (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
11,1 – 13<br />
Distribuição da alteração percentual dos níveis de BAP ao fim de 12 meses<br />
Terapêutica com estrogénio/progestina (THS) ou placebo (CTL)<br />
Ao fim de 12 meses, as participantes da THS tinham ganho LSBMD em comparação com o CTL (p < 0,00001), conforme indicado<br />
no quadro seguinte.<br />
Alterações na LSBMD (média ± DP)<br />
13,1 – 15<br />
15,1 – 17<br />
n Linha basal (g/cm 2 ) 12 meses (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 58 0,97 ± 0,17 0,95 ± 0,16 -1,6 ± 2,8<br />
THS 262 0,97 ± 0,15 1,00 ± 0,15 +3,5 ± 2,8<br />
Estes resultados indicam que o ensaio Metra BAP é seguro e eficaz na monitorização do efeito anti-reabsorção da terapêutica<br />
hormonal de substituição (THS) nas mulheres depois da menopausa.<br />
17,1 – 19<br />
Diminuição da renovação óssea U/L BAP Aumento da renovação óssea<br />
< -70,0%<br />
-70,0 to -60,1%<br />
-60,0 to -50,1%<br />
-50,0 to -40,1%<br />
-40,0 to -30,1%<br />
Previsão da resposta óssea:<br />
A figura seguinte ilustra a % de diminuição dos valores da BAP em relação à linha basal até 12 meses por quartil para o grupo<br />
tratado com THS. As participantes no quartil mais elevado (Q1: maior % de diminuição) revelaram o maior ganho em LSBMD em<br />
resposta à THS.<br />
-30,0 to -20,1%<br />
19,1 – 21<br />
-20,0 to -10,1%<br />
21,1 – 23<br />
-10,0 to -0,1%<br />
23,1 – 25<br />
0,0 to 9,9%<br />
25,1 – 27<br />
27,1 – 29<br />
10,0 to 19,9%<br />
CTL<br />
THS<br />
Diminuição da renovação óssea % Change Aumento da renovação óssea<br />
> 29<br />
CTL<br />
THS<br />
≥ 20,0%<br />
59<br />
PORTUGUÊS
60<br />
Percentagem de alteração na LSBMD até 12 meses<br />
Grupo da THS – Valores da % de alteração na BAP até 12 meses estratificados<br />
por quartil e correspondente % de alteração na LSBMD aos 12 meses<br />
A figura seguinte apresenta a análise de regressão linear (y = -0,060x + 0,011, r = -0,51, p < 0,001) da alteração percentual em<br />
relação à linha basal até 12 meses da BAP e da alteração percentual em relação à linha basal até 12 meses da densidade mineral<br />
óssea (BMD) para todas as participantes do estudo (placebo e tratadas).<br />
Percentagem de alteração na LSBMD até 12 meses<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
1<br />
0<br />
Q1 (-66,5 to -45,9) Q2 (-45,9 to -36,0)<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-5,0%<br />
-10,0%<br />
Estudo da THS – Regressão linear da % de alteração na<br />
LSBMD e na BAP em relação à linha basal até 12 meses<br />
A análise do quadro de contingência revelou que uma diminuição ≥ 25% na BAP aos 12 meses estava significativamente associada<br />
(p < 0,0001) a uma resposta óssea positiva à THS (ganho em BMD) aos 12 meses. Os intervalos de confiança de 85% binómicos<br />
(aproximação de segunda ordem) para a sensibilidade e a especificidade de utilizar uma diminuição de 25% na BAP para prever a<br />
resposta à THS são:<br />
Sensibilidade = 77% (IC de 95%, 75%, 82%); Especificidade = 61% (IC de 95%, 41%, 78%).<br />
Estes resultados indicam que a % de alteração na concentração de BAP pode ser utilizada para prever o grau de resposta óssea<br />
(BMD) ao tratamento com THS.<br />
ASS<strong>IS</strong>TÊNCIA<br />
Para fazer uma encomenda ou obter assistência técnica, contacte um Representante Quidel ligando para +1 408-616-4301,<br />
de Segunda a Sexta-feira, entre as 8:00 e as 17:00, hora do Pacífico. As encomendas podem também ser feitas por fax para<br />
+1 408-616-4310.<br />
Para serviços fora dos EUA, contacte o seu distribuidor local.<br />
p < 0,001<br />
Q3 (-36,0 to -23,8) Q4 (-23,8 to 167,3)<br />
Quartil por % alteração na BAP até 12 meses<br />
-15,0%<br />
-60,0% -40,0% -20,0%<br />
y = -0,060x + 0,011<br />
r = 0,51<br />
p < 0,001<br />
0,0% 20,0% 40,0% 60,0%<br />
Quartil por % alteração na BAP até 12 meses
HURTIG VEJLEDNING I ANALYSENS TRIN<br />
1. Tilsæt 125 µl analysebuffer.<br />
2. Tilsæt 20 µl standarder, kontroller og prøvesubstans; omrystes.<br />
3. Inkubér 3 timer ± 10 minutter ved 20–28°C.<br />
4. Vask 4 gange med 1X vaskebuffer.<br />
5. Tilsæt 150 µl brugssubstratopløsning ved 20–28°C.<br />
6. Inkubér 30 ± 5 minutter ved 20–28°C.<br />
7. Tilsæt 100 µl stopopløsning og aflæs optisk densitet ved 405 nm.<br />
TILSIGTET ANVENDELSE<br />
Metra BAP-immunoanalysen giver en kvantitativ måling af knoglespecifik alkalisk fosfatase (BAP)-aktivitet i serum som en<br />
indikator for osteoblastaktiviteten. Målingen af BAP er beregnet som en hjælp til:<br />
� behandling af postklimakteriel osteoporose og <strong>Page</strong>ts sygdom;<br />
� overvågning af postklimakterielle kvinder i hormon- eller bisfosfonatbehandling;<br />
� forudsigelse af skeletrespons på hormonbehandling i postklimakterielle kvinder.<br />
OPSUMMERING OG FORKLARING<br />
Den skeletale eller knoglespecifkke isoform af alkalisk fosfatase er et tetramert glykoprotein, der findes på celleoverfladen af<br />
osteoblaster. 1 Osteoblaster er celler, der er ansvarlige for syntetiseringen af ny knoglematrix samt mineraliseringen af denne.<br />
Funktionen af BAP er ikke fuldt belyst, men dens rolle i knoglernes mineralisering er blevet bekræftet. 1,2,3<br />
Knogler gennemgår konstant en metabolisk proces, der kaldes remodellering. 3,4 Denne indbefatter en nedbrydningsproces<br />
– knogleresorption - der medieres af osteoclasternes aktivitet, og en opbygningsproces, knogledannelsen, der medieres af<br />
aktiviteten af osteoblasterne. 3,4 Remodellering er nødvendig for knoglevedligeholdelse og opretholdelse af knoglernes generelle<br />
sundhedstilstand, og foregår i tæt sammenkædede processer, således at resorption og knogledannelse er i balance. 3,4 I anormale<br />
knoglemetabolismetilstande er denne proces ikke sammenkædet, og når resorptionen overskrider knogledannelsen, resulterer det<br />
i et nettotab af knoglemasse, hvilket kan føre til osteoporose, 3,4 eller til en tilstand med ødelagt knoglevæv forårsaget af ”<strong>Page</strong>trelaterede”<br />
læsioner. 5 Måling af specifikke biokemiske markører, der indgår i disse remodelleringshændelser, tilvejebringer en række<br />
analytiske data vedr. knoglens metabolisme eller ”omsætningshastighed”. 3,4<br />
Osteoporose er en metabolisk knoglesygdom, der er karakteriseret ved abnorm knogleremodellering. Det er en systemisk<br />
skeletsygdom der er karakteriseret ved lav knoglemasse og mikroarkitektonisk nedbrydning af knoglevæv med en tilhørende<br />
stigende risiko for pådragelse af fraktur. 6 Den mest almindelige form for osteoporose forekommer i postklimakterielle kvinder som<br />
følge af den østrogenmangel, der skyldes ophøret af den ovariale funktion. 3 Gendannelsen af det præklimakterielle østrogenniveau<br />
ved hjælp af substitutionsterapi forhindrer knoglesvind og osteoporose. 3,6 Østrogener og en stofgruppe kaldet bisfosfonater er<br />
antiresorptive behandlinger til forebyggelse af tab af knoglemasse eller til behandling af osteoporose. 3,6,7<br />
Osteroporose kan også skyldes, at der i opvækstårene er dannet en utilstrækkelig maksimal knoglemasse (peak bone mass)<br />
, en alders-relateret ubalance i knoglernes remodellering med en forhøjet nettoresorption og en række kliniske tilstande og<br />
behandlinger, som medfører knogletab eller ubalance i knoglernes remodellering. 3 Disse omfatter endokrine lidelser, f.eks.<br />
hypogonadisme, hyperthyreoidisme, hyperparathyreoidisme, og hypercortisolisme,nyresvigt, cancer med metastaser til knoglerne,<br />
gastrointestinale lidelser med relation til ernærings- og mineralmetabolismen, bindevævssygdomme, multipel myeloma; kronisk<br />
immobilisering, brug af tobak eller alkohol og kronisk behandling med heparin eller binyrebarkhormoner (kortikosteroider). 3<br />
<strong>Page</strong>t’s knoglesygdom er en fokal lidelse, der medfører smerter og knogledeformitet i symptomatiske patienter. 5 “<strong>Page</strong>tiske”<br />
læsioner er kendetegnet ved en knoglematrix, der har en yderst abnorm struktur som følge af en overdreven remodelleringsaktivitet.<br />
Læsionerne ses hovedsageligt i kraniet, columna, pelvis og de lange knogler og kan medfører frakturer og neurologisk svækkelse. 5<br />
Ætiologien for <strong>Page</strong>ts sygdom er ukendt, men hypoteser, der involverer genetiske og virale faktorer er overbevisende. 5 Bisfosfonater<br />
og kalcitonin anvendes for øjeblikket til at undertrykke det høje biokemiske aktivitetsniveau til et mere normalt niveau, hvilket<br />
muliggør gendannelse af normal knoglestruktur. 9<br />
Som en kvantitativ måling af en markør for knoglemassens omsætning, giver BAP nyttige oplysninger om knogleremodellering<br />
ved osteoporose og <strong>Page</strong>ts sygdom og ændringer i sygdomsforløbet ved antiresorptiv behandling. 10-12 Til Metra BAP-analysen<br />
er der anvendt antistofteknologi for at producere et monoklonalt antistof, der udviser specificitet over for BAP. 10 Specificiteten for<br />
det monoklonale antistof, der anvendes i analysen, muliggør en enkel, hensigtsmæssig, reproducérbar og direkte kvantificering af<br />
BAP-aktiviteten i serum.<br />
PROCEDURENS PRINCIP<br />
Metra-BAP er et immunoassay i mikrotiter-stripformat, der anvender et monoklonalt anti-BAP antistof coated på strippen til<br />
opsamling af BAP i prøven. Enzymaktiviteten på den opsamlede BAP bestemmes ved hjælp af et pNPP-substrat.<br />
61<br />
DANSK
LEVEREDE MATERIALER OG REAGENSER<br />
96 analyser til knoglespecifik alkalisk fosfatase<br />
Metra-BAP EIA indeholder følgende:<br />
A BAP standarder A - F Dele 4395 til 4400 0,3 ml hver<br />
B (A = 0, B = 2, C = 20, D = 50, E = 80, F = 140 U/L BAP)<br />
C BAP, der er oprenset fra osteosarkom SAOS-2-celler i en bufferopløsning indeholdende magnesiumklorid, zinksulfat,<br />
D overfladeaktivt stof, transportprotein, blå farve og natriumazid (0,05%) som konserveringsmiddel.<br />
E<br />
F<br />
L Lave/høje kontroller Delen 4401, 4402 0,3 ml hver<br />
H BAP, der er oprenset fra osteosarkom SAOS-2-celler i en bufferopløsning indeholdende magnesiumklorid, zinksulfat,<br />
overfladeaktivt stof, transportprotein, blå farve og natriumazid (0,05%) som konserveringsmiddel.<br />
q Coatede strips Del 4660 12 af hver<br />
Renset murin-monoklonalt Anti-BAP IgG antistof adsorberet på brøndstrips.<br />
w Stopopløsning Del 4702 15 ml<br />
0,5N NaOH<br />
e 10X vaskebuffer Del 4703 55 ml<br />
Nonionisk detergent i en bufferopløsning indeholdende natriumazid (0,05%) som konserveringsmiddel.<br />
r Analysebuffer Del 4403 27 ml<br />
En bufferopløsning indeholdende magnesiumklorid, zinksulfat, overfladeaktivt stof og natriumazid (0,05%) som<br />
konserveringsmiddel.<br />
t Substratbuffer Del 4404 3 x 10 ml<br />
En 2-amino-2-methyl-1-propanolopløsning indeholdende HEDTA, magnesiumklorid, zinksulfat og natriumazid<br />
(0,05%) som konserveringsmiddel.<br />
y Substrattabletter Del 0012 3 x 20 mg<br />
p-Nitrophenylphosphat.<br />
NØDVENDIGE, MEN IKKE MEDLEVEREDE MATERIALER<br />
Mikropipetter til levering af 20 µl og 100–300 µl<br />
Egnede enheder til væskemåling af 100–300 ml<br />
Beholder til vaskebufferfortynding<br />
Ionbyttet eller destilleret vand<br />
Pladelæser til optiske densitetsaflæsninger ved A405 > 2,0<br />
Kurvetilpasningssoftware til kvadratisk kalibrering<br />
ADVARSLER OG FORHOLDSREGLER<br />
1. Kun til In Vitro diagnostisk brug.<br />
2. Prøverne skal behandles som potentielt biologisk farligt materiale. Følg gældende retningslinier for omgang med biologisk<br />
risikomateriale ved håndtering af dette kit og alle patientprøver.<br />
3. Beholdere og ikke anvendt indhold bortskaffes i overensstemmelse med nationale, regionale og lokale bestemmelser.<br />
4. Brug de leverede reagenser som en integreret enhed, inden udløbsdatoen på pakningens etiket.<br />
5. Opbevar analysereagenserne, som anvist.<br />
6. Brug ikke coatede strips, hvis posen er punkteret.<br />
7. Test hver prøve i to eksemplarer.<br />
8. 0,5N NaOH anses for at være ætsende og kan medføre alvorlige forbrændinger. Må ikke indtages. Undgå kontakt med hud, øjne<br />
og tøj. Hvis der sker kontakt, skylles med vand. Ved indtagelse tilkaldes læge.<br />
9. Natriumazid anvendes som konserveringsmiddel. Tilfældig kontakt med eller indtagelse af buffer indeholdende natriumazid,<br />
kan medføre irritation af hud, øjne eller mund. Brug kun bufferne til det tilsigtede formål, og undgå kontakt med syrer.<br />
Natriumazid kan reagere med bly- og kobberinstallationer og danne højeksplosive metalazider. Efter bortskaffelse skylles med<br />
rigeligt vand for at undgå azidophobning.<br />
10. Substratbufferen indeholder 2-amino-2-methyl-1-propanol og kan forårsage irritation af øjne og/eller hud ved kontakt i længere<br />
tidsrum. Brug egnet beskyttelsestøj, handsker og øjen-/ansigtsværn. Berørte områder skal omgående vaskes med vand og sæbe.<br />
11. Brug af pipetter med flere kanaler eller repeat-pipetter anbefales for at sikre en rettidig tilsætning af reagenser.<br />
12. Tilsæt prøver og standarder præcist for at sikre en nøjagtig prøveudmåling. Foretag omhyggelig afpipettering og kun ved hjælp<br />
af kalibreret udstyr.<br />
13. Fortynd prøver større end 140 U/L i analysebuffer, og test igen. Inkludér fortyndingsfaktoren i den endelige beregning.<br />
14. Denne analyse kan udføres med enhver valideret vaskemetode.<br />
62
KLARGØRING AF REAGENS<br />
Reagenser og materialer til analysen skal bringes op på en temperatur på 20–28°C inden brug. Når de<br />
nødvendige reagenser og materialer er taget ud, skal ubrugte materialer bringes tilbage på 2–8°C.<br />
Coatede strips<br />
Fjern brøndstripholderen, og tag det nødvendige antal coatede strips ud af posen (se tabellen i afsnittet ANALYSEPROCEDUREN).<br />
Forvis dig om, at posen, der indeholder evt. ubrugte strips, lukkes fuldstændigt igen.<br />
Vaskebuffer<br />
Forbered den nødvendige mængde 1X vaskebuffer (se tabel) ved at fortynde 10X vaskebufferkoncentrat 1:10 med ionbyttet vand.<br />
Opbevar ved 20–28°C. Brug 1X vaskebuffer inden for 21 dage efter forberedelse.<br />
Brugssubstratopløsning<br />
Forbered en substratopløsning inden før en time for brugen. Tilsæt en substrattablet i hver flaske med substratbuffer, der har<br />
20–28°C (se tabel). Lad tabletten (erne) opløses i 30–60 minutter. Ryst flasken (erne) kraftigt for at sikre fuldstændig opblanding.<br />
Kassér den resterende substratopløsning efter brug.<br />
OPBEVARING<br />
Opbevar kittet ved 2–8°C. Må ikke fryses. Opbevar ubrugte reagenser ved 2–8°C. Afbalancér reagenserne til 20–28°C inden brug.<br />
Opbevar 1X vaskebuffer (10X fortyndet) ved 20–28°C.<br />
PRØVEUDTAGNING- OG OPBEVARING<br />
Udtag serum ved hjælp af standardteknik for venepunktur. Prøverne skal udtages uden antikoagulanter og på en sådan måde, at<br />
hæmolyse undgås. Lad blodet størkne, og udskil serum ved centrifugering. Serum kan opbevares i 5 dage ved 2–8°C, ved ≤ -40°C i<br />
12 måneder eller ved ≤ -80°C i 36 måneder. Udsæt ikke prøver for mere end 3 fryse/optøningscykler.<br />
Serum der er “�ernet fra clottet”, serum fra serumseparationsrør, Na-heparinplasma og Li-heparinplasma medfører stort set identiske<br />
resultater. Det anbefales, at plasmaprøver ikke præpareres ved brug af kelater, f.eks. EDTA eller citrat.<br />
ANALYSEPROCEDUREN<br />
Læs hele indlægssedlen inden analysen startes.<br />
Se KLARGØRING AF REAGENS, inden du fortsætter.<br />
Bestem hvor meget reagens der skal anvendes til det antal strips, der skal anvendes.<br />
antal strips 4 6 8 12<br />
antal prøver (testet i to eksemplarer) 8 16 24 40<br />
Substrat (flaske) 1 1 2* 2*<br />
1X vaskebuffer (ml) 100 150 200 300<br />
*Når der skal bruges mere end en flaske eller et hætteglas, skal indholdet kombineres og blandes inden brug.<br />
Inkubation af prøver<br />
1. Fjern brøndstrip-holderen, og udtag det nødvendige antal coatede strips fra posen (se tabellen) umiddelbart inden brug.<br />
Sørg for, at folieposen indeholdende ubrugte strips lukkes fuldstændigt igen.<br />
2. Anbring det ønskede antal coatede strips i brøndstrip-holderen. Navngiv stripsene for at forhindre en sammenblanding i<br />
tilfælde af, at de utilsigtet �ernes fra brøndstrip-holderen.<br />
3. Tilsæt 125 µl analysebuffer til hver prøve.<br />
4. Tilsæt 20 µl standard, kontrol eller prøve i hver brønd. Bland ikke med analysebuffer ved gentagen pipettering. Dette trin skal<br />
afsluttes inden for 30 minutter. Ryst forsigtigt stripsene for at sikre blanding af buffer og prøver.<br />
5. Inkubér i 3 timer ( ± 10 minutter) ved 20–28°C.<br />
6. Forbered en brugssubstratopløsning inden før en time for brugen. Tilsæt en substrattablet i hver flaske med substratbuffer, der<br />
har 20–28°C (se tabel). Lad tabletten (-erne) opløses i 30–60 minutter. Ryst flasken (-erne) kraftigt for at sikre fuldstændig<br />
opblanding.<br />
Vasketrin<br />
7. Forbered den nødvendige mængde 1X vaskebuffer (se tabel) ved at fortynde 10X vaskebuffer 1:10 med ionbyttet vand.<br />
Opbevar ved 20–28°C. Brug 1X vaskebuffer inden for 21 dage efter præparering.<br />
8. Vend op og ned/tøm stripsene manuelt. Tilsæt mindst 250 µl 1X vaskebuffer i hver brønd og vend op og ned/tøm stripsene<br />
manuelt. Gentag tre gange mere, så vaskeproceduren foretages fire gange i alt. Tør stripsene grundigt med papirservietter efter<br />
den sidste vask.<br />
Substratinkubation<br />
9. Tilføj 150 µl brugssubstratopløsning i hver brønd. Kassér den resterende substratopløsning efter brug.<br />
10. Inkubér i 30 minutter ( ± 5 minutter) ved 20–28°C.<br />
Stop/aflæs<br />
11. Tilsæt 100 µl stopopløsning i hver brønd. Tilsæt stopopløsning efter det samme mønster og tidsinterval som ved tilsætning af<br />
substratopløsning.<br />
12. Aflæs den optiske densitet ved 405 nm. Sørg for, at der ikke findes store bobler i brøndene, og at stripsene er rene. Stripsene skal<br />
aflæses inden for 15 minutter efter tilsætning af stopopløsningen.<br />
63<br />
DANSK
13. Kvantificeringssoftware med en ligning for kurvetilpasning ved kvadratisk kalibrering skal anvendes til analysering af<br />
resultaterne for Metra BAP-analysen.<br />
Ligning: y = A + Bx + Cx 2<br />
KVALITETSKONTROL<br />
Analysecertifikatet i dette kit er lotspecifikt og skal anvendes til at bekræfte, at resultater opnået i dit laboratorium er identiske<br />
med dem, der er opnået hos Quidel. De optiske densitetsværdier stilles til rådighed og skal alene anvendes som retningsgivende.<br />
Resultater opnået i dit laboratorium kan variere.<br />
Der medleveres kvalitetskontrolintervaller. Kontrolværdierne har til formål at verificere validiteten af kurve- og prøveresultaterne.<br />
Hvert laboratorium skal etablere egne parametre for acceptable analysegrænser. Hvis kontrolværdierne IKKE ligger inden for<br />
laboratoriets acceptable grænseværdier, skal analyseresultaterne betragtes som tvivlsomme, og prøverne skal gentages.<br />
Hvis den optiske densitet for Metra BAP Standard F er mindre end 1,0, anses prøverne for tvivlsomme, hvorefter prøverne bør gentages.<br />
FORTOLKNING AF RESULTATER<br />
Prøveresultater udtrykkes som U/l og skal ikke korrigeres for fortynding (med mindre prøven er fortyndet inden testning).<br />
I Metra BAP-analysen, repræsenterer 1 Unit 1 µmol pNPP hydrolyseret pr. minut ved 25°C i 2-amino-2-methyl-1-propanolbuffer.<br />
Repræsentativ standardkurve<br />
BAP standardniveauer: 0, 2, 20, 50, 80, 140 U/L<br />
PROCEDURENS BEGRÆNSNINGER<br />
HAMA-interferens<br />
Visse personer har antistoffer mod museantistoffer (HAMA), der kan forårsage interferens i immunoanalyser, som anvender<br />
antistoffer udvundet fra mus. Det har særligt været rapporteret, at serumprøver fra patienter, der har modtaget behandling<br />
eller diagnostiske procedurer omfattende infusion af monoklonalt museantistof, kan give fejlagtige resultater. Derfor bør Metra<br />
BAP-resultaterne for sådanne patienter kun anvendes i sammenhæng med resultaterne fra en anden diagnostisk procedure og<br />
tilgængelige resultater fra den kliniske evaluering af patienten.<br />
Prøver med signifikant forhøjet alkalisk leverfosfatase-aktivitet kan medføre fejlagtigt forhøjede resultater i Metra BAP-analysen.<br />
<strong>Page</strong>t-patienter med mild grad af sygdom, kan have knoglespecifikke alkaliske fosfatase-niveauer, der ligger inden for<br />
referenceintervallet for Metra BAP.<br />
PRØVEEKSEMPLAR VÆRDIER<br />
Der er etableret BAP-referenceintervaller for normale mænd over 25 år (n = 126), normale præklimakterielle kvinder mellem<br />
25 og 44 år (n = 178) og normale postklimakterielle kvinder (n = 107). Ved udarbejdelsen af referenceintervallerne blev normale<br />
individer defineret som:<br />
� Grundlæggende raske individer uden knogle-, endokrine-, eller kroniske lidelser.<br />
� Regelmæssig menstruation (præklimakterielle kvinder)<br />
� Ikke gravide eller ammende (kvinder)<br />
� Individer, der ikke aktuelt tager medicin, der vides at påvirke knoglemetabolismen.<br />
Værdierne kan påvirkes af faktorer som lav østrogenproduktion, lav kalciumindtagelse eller lav fysisk aktivitet. 8 Østrogenmangel i<br />
postklimakterielle kvinder kan medføre en forhøjet knogleomsætning. 3,4 Hvert laboratorium bør etablere sit eget referenceinterval.<br />
Intervallerne betegnes som nonparametriske referenceintervaller (90% CI).<br />
Alder (år) Interval (U/L) Median<br />
Kvinder 25 – 44 Præklimakterielle 11,6 – 29,6 18,3<br />
Kvinder ≥ 45 Postklimakterielle 14,2 – 42,7 25,0<br />
Mænd ≥ 25 15,0 – 41,3 23,2<br />
64<br />
Optisk Densitet (405 nm)<br />
3,0<br />
2,0<br />
1,0<br />
0,0<br />
0 25 50 75 100 125 150<br />
BAP (U/L)
PRÆSTATIONSKARAKTER<strong>IS</strong>TIKA<br />
Antistofspecifikationer<br />
Det knoglespecifikke alkaliske fosfatase-antistof har selektiv, høj affinitet for den knoglespecifikke alkaliske fosfatase-isoform, lav<br />
krydsreaktivitet med den alkaliske fosfatase, der findes i leveren, og en ubetydelig binding af intestinale og placenta-isoenzymer.<br />
AP Isoenzym % Reaktivitet<br />
Knogle 100<br />
Lever 3 – 8<br />
Placenta 0<br />
Intestinal 0,4<br />
Sensitivitet<br />
Minimumsdetektionsgrænsen for Metra BAP-analysen er 0,7 U/L, der bestemmes af den øvre 3 SD-grænse i et præcisionsstudie<br />
med en standard på nul.<br />
Recovery – Spike recovery<br />
Spike recovery blev bestemt ved at tilsætte en kendt mængde oprenset BAP i serumprøver med forskellige niveauer af endogent<br />
BAP. Typiske resultater opnås ved at ’spike’ serumprøverne med lave, mellemhøje og høje koncentrationer af BAP og foretage tre<br />
identiske analyser.<br />
Endogent (U/L) Tilsat (U/L) Observeret (U/L) Recovery (%)<br />
13,4 15,7 29,1 99<br />
17,6 37,5 55,3 99<br />
27,2 57,2 88,1 106<br />
Recovery-linearitet<br />
Lineariteten blev bestemt ved at foretage seriel fortynding af prøver og sammenligne konstaterede værdier med forventede værdier.<br />
Typiske resultater angives herunder.<br />
Prøve Fortyndingsfaktor Observeret (U/L) Forventet (U/L) Recovery (%)<br />
1 ublandet 108,5 - -<br />
1:2 51,1 54,2 94<br />
1:4 25,8 27,1 99<br />
1:6 18,0 18,1 99<br />
2 ublandet 39,1 - -<br />
1:2 20,1 19,5 103<br />
1:4 10,3 9,8 105<br />
1:6 6,7 6,5 103<br />
3 ublandet 58,4 - -<br />
1:2 29,9 29,2 102<br />
1:4 15,7 14,6 108<br />
1:6 9,7 9,7 100<br />
Præcision<br />
Præcision inden for kørsler blev bestemt ved ≥ 21 replikater af 3 prøver på 3 plader fra hver af 3 kitlots (i alt 9 plader). Præcision<br />
mellem kørsler blev bestemt ved 3 prøver på 6 separate plater fra hver af 3 kitlots (i alt 18 plader). Typiske resultater angives<br />
herunder.<br />
BAP (U/l BAP) Under kørsel 1 CV% Mellem kørsler 2 CV%<br />
12 5,8 5,2<br />
35 3,9 7,6<br />
100 5,2 5,0<br />
1 n=21 2 n=6 kørsler<br />
Interfererende substanser<br />
Følgende substanser blev testet ved de angivne koncentrationer og blev ikke fundet at interferere med analysen.<br />
Substans Koncentration<br />
Hæmoglobin 500 mg/dl<br />
Bilirubin 25 mg/dl<br />
Triglycerider 1420 mg/dl<br />
Totalprotein 6,0 g/dl †<br />
Totalprotein 15,6 g/dl †<br />
Totalprotein 6,0 g/dl ‡<br />
Totalprotein 15,6 g/dl ‡<br />
† Protein med vand<br />
‡ Protein med BAP (BAP-koncentration = 43,6 U/L)<br />
65<br />
DANSK
Lægemiddelinterferenser<br />
Diverse koncentrationer af lægemidler blev tilsat i tre separate pools af serum indeholdende ca. 35, 70 og 105 U/l BAP og analyseret<br />
ved tre identiske prøver. Lægemidlerne og de højeste koncentrationer, der blev testet, var:<br />
Substans Højeste koncentration<br />
Etidronat 350 µg/ml<br />
Østrogen 100 µg/ml<br />
Ibuprofen 150 µg/ml<br />
Acetominophen 350 µg/ml<br />
Aspirin 350 µg/ml<br />
Kalcitonin (human) 80 µg/ml<br />
Kalcitonin (laks) 80 µg/ml<br />
Kalcium 500 µg/ml<br />
Noretindron/ethynil-østradiol mikstur (oral antikonception) 3 mg/ml<br />
Vitamin D 400 IE/ml<br />
Præcision<br />
Der blev foretaget sammenlignende undersøgelser for at bedømme sammenhængen mellem målinger af serum med<br />
knoglespecifik alkalisk fosfatase (BAP), opnået vha. Metra BAP-analysen med resultaterne fra tre kommercielt tilgængelige metoder<br />
for måling af total alkalisk fosfatase (TAP) eller (BAP). Studierne blev udført på et uafhængigt laboratorium med anvendelse af<br />
sera fra 114 patienter med <strong>Page</strong>ts sygdom og 464 raske forsøgspersoner. Den første sammenlignende metode var en kolorimetrisk<br />
teknik til måling af TAP . Korrelationskoefficienten (r) mellem denne kolorimetriske metode og Metra BAP-analysen var 0,99. Den<br />
anden sammenlignende metode var en elektroforesemetode til bestemmelse af BAP-isoenzymniveauer (r = 0,99). Den tredje<br />
sammenlignende metode var en immun-radiometrisk analyse til måling af BAP (r = 0,99). Af de 114 personer med <strong>Page</strong>ts sygdom<br />
havde 101 patienter værdier, der var højere end den øvre grænseværdi for referenceintervallerne i Metra BAP-analysen. Tretten<br />
patienter havde værdier, der lå under den øvre grænse for referenceintervallerne.<br />
KLIN<strong>IS</strong>KE UNDERSØGELSER<br />
Brug af Metra BAP til overvågning af effektiviteten af antiresorptiv behandling ved osteoporose.<br />
En vellykket, randomiseret, kontrolleret undersøgelse er blevet gennemført med henblik på bestemmelse af sikkerheden og<br />
effektiviteten ved brug af Metra BAP-analysen til overvågning af ændringer i serum BAP-koncentrationerne i forbindelse med<br />
antiresportiv behandling med aminobisfosfonat (alendronat). Testpersoner valgt fra en større undersøgelse af effektiviteten<br />
af alendronat til behandling af osteoporese, 7 var postklimakterielle kvinder i alderen 45 til 84 år (gennemsnit 64 ± 7 år) med<br />
diagnosen osteoporosis (baseret på klinisk forekomst eller en knoglemineraldensitet i columna lumbalis [LSBMD] ved forsøgsstart,<br />
mere end 2,5 standardafvigelser under gennemsnittet for modne præklimakteriske kvinder). Ved forsøgsstart blev de egnede<br />
testdeltagere randomiseret til at modtage enten 10 mg alendronat og 500 mg kalcium pr. dag (ALN) eller placebo og 500 mg<br />
kalcium pr. dag (CTL) Der blev udtaget serumprøver fra deltagerne ved undersøgelsens start samt efter 3, 6 og 12 måneder.<br />
Gennemsnitlig (± 1SD) BAP koncentration ved undersøgelsens start (14,6 ± 5,4 vs. 14,6 ± 4,6, p = 0,900) og LSBMD (0,74 ± 0,10<br />
vs. 0,75 ± 0,09, p = 0,751) var tilsvarende for ALN og CTL. Fordelingen af BAP-værdier ved forsøgsstart i ALN og CTL er angivet i<br />
følgende figur efter andel af den undersøgte population.<br />
66<br />
Andel af population (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
< 4,0<br />
4,0 – 5,9<br />
Fordeling af BAP-niveauer ved forsøgsstart<br />
6,0 – 7,9<br />
8,0 – 9,9<br />
10,0 – 11,9<br />
12,0 – 13,9<br />
Faldende knogleomsætning U/L BAP<br />
Øget knogleomsætning<br />
BAP var væsentligt lavere for ALN end CTL ved 3 (9,6 ± 3,5 vs. 13,4 ± 4,0, p
Andel af population (%)<br />
Fordeling af BAP-niveauer efter 12 måneders<br />
behandling med alendronat (ALN) eller kalcium (CTL)<br />
12 mdr. CTL<br />
12 mdr. ALN<br />
Den gennemsnitlige (± 1SD) BAP-koncentration i CTL-forsøgsgruppen aftog moderat fra forsøgsstart til –5,4% (± 19,1%) ved<br />
12 måneder (p=0,00004), hvilket muligvis afspejler den begrænsede knoglesparende effekt for kalcium. 13<br />
Gennemsnitlige BAP-koncentrationer i ALN-forsøgspersonerne aftog 30,5 ± 24,6% ved 3 måneder, 42,8 ± 17,3% ved 6 måneder<br />
og 42,2 ± 19,2% ved 12 måneder. Deltagerne i ALN-testgruppen havde en større tendens end CTL-deltagerne til at udvise<br />
BAP-tab, der oversteg den procentvise minimumsændring med 14 68,5%, 83,9% og 86,1% for ALN, hvor 9,5%, 15,9% og 9,0% af<br />
CTL-deltagerne faldt med ≥ 25% ved henholdsvis 3, 6 og 12 måneder. Fordelingerne af den procentvise ændring fra forsøgsstart i<br />
BAP-værdier efter 12 måneder i ALN og CTL-grupperne er afbildet i følgende figur.<br />
Andel af population (%)<br />
40,0%<br />
35,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
< 4,0<br />
4,0 – 5,9<br />
6,0 – 7,9<br />
Fordelingen af den procentvise ændring i BAP-niveauer efter 12 måneder<br />
Behandling med alendronat (ALN) eller kalcium (CTL)<br />
12 mdr. CTL<br />
12 mdr. ALN<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
Ved 12 måneder, havde personerne i ALN øget LSBMD sammenlignet med CTL (p < 0.00001) som vist i nedenstående tabel.<br />
Ændringer i LSBMD (gennemsnit ± SD)<br />
8,0 – 9,9<br />
n Forsøgsstart (g/cm 2 ) 12 måneder (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 159 0,75 ± 0,09 0,74 ± 0,09 -0,6 ± 3,4<br />
ALN 121 0,74 ± 0,10 0,79 ± 0,10 5,5 ± 4,1<br />
Disse resultater antyder, at Metra BAP-analysen er sikker og effektiv til overvågning af den antiresorptive effekt<br />
af amino-bisfosfonat (alendronat) i personer med diagnosen osteoporose.<br />
10,0 – 11,9<br />
Brugen af Metra BAP til overvågning af hormonel antiresorptiv behandling og forudsigelse af<br />
skeletrespons (knoglemineraldensitet) i postklimakterielle kvinder<br />
12,0 – 13,9<br />
Faldende knogleomsætning U/L BAP<br />
Øget knogleomsætning<br />
< -70,0%<br />
-70,0 til -60,1%<br />
-60,0 til -50,1%<br />
-50,0 til -40,1%<br />
-40,0 til -30,1%<br />
-30,0 til -20,1%<br />
Faldende knogleomsætning % Ændring<br />
Øget knogleomsætning<br />
14,0 – 15,9<br />
-20,0 til -10,1%<br />
16,0 – 17,9<br />
-10,0 til -0,1%<br />
18,0 – 19,9<br />
20,0 – 21,9<br />
0,0 til 9,9%<br />
22,0 – 23,9<br />
10,0 til 19,9%<br />
24,0 – 25,9<br />
≥ 20,0%<br />
67<br />
DANSK
Overvågning af behandlingen:<br />
En vellykket, randomiseret, kontrolleret multicenterundersøgelse er blevet gennemført med henblik på bestemmelse af sikkerheden<br />
og effektiviteten ved brug af Metra BAP-analysen til overvågning af ændringer i serum BAP-koncentrationer i forbindelse med<br />
østrogen/gestagen antiresorptiv behandling. Forøget knogleomsætning og signifikant tab af knoglevæv er ofte associeret med<br />
postklimakteriel østrogenmangel . Det er vist, at østrogensubstitution er effektivt til at sænke knogleomsætningen og beskytte den<br />
eksisterende knoglemasse, 3,6 Testpersonerne var postklimakterielle kvinder i alderen 45 til 64 år (gennemsnit 56 ± 4 år), som havde<br />
gennemgået naturligt eller kirurgisk klimakterium inden for de sidste 10 år. Ved forsøgsstart blev egnede testdeltagere randomiseret<br />
til en aktiv behandlingsgruppe (HRT): Premarin® (0,625 mg dagligt) med placebogestagen. Premarin® (0,625 mg dagligt) og<br />
en aktiv gestagen (Provera® 2,5 mg/dag vedvarende, Provera® 10 mg/dag cyklisk eller mikroniseret progesteron 200 mg/dag<br />
cyklisk); eller til en kontrolgruppe (CTL): placeboøstrogen og placebogestagen. Der blev udtaget serumprøver fra deltagerne ved<br />
undersøgelsens start samt ved 12 måneder.<br />
Den gennemsnitlige (± 1SD) BAP koncentration ved undersøgelsens start (20,7 ± 7,6 vs. 20,3 ± 6,8 U/l, p = 0,704) og LSBMD<br />
(0,97 ± 0,17 vs. 0,97 ± 0,15 g/cm 2 , p = 0,970) var tilsvarende for CTL og HRT. Fordelingen af BAP-værdier ved forsøgsstart for ALN<br />
og CTL er afbildet i følgende figur efter andel af den undersøgte population.<br />
68<br />
Andel af population (%)<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
Fordeling af BAP-niveauer ved forsøgsstart<br />
11,1 – 13<br />
13,1 – 15<br />
15,1 – 17<br />
17,1 – 19<br />
BAP var væsentligt lavere for HRT end CTL ved 12 måneder (13,3 ± 5,0 vs. 21,9 ± 7,9 U/l, p < 0,00001) Fordelingerne af BAP-værdier<br />
efter 12 måneder i HRT og CTL-grupperne er afbildet i følgende figur.<br />
Andel af population (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
Faldende knogleomsætning U/L BAP<br />
Øget knogleomsætning<br />
≤ 9,0<br />
Fordeling af BAP-niveauer efter 12 måneders<br />
behandling med østrogen/gestagen (HRT) eller placebo (CTL)<br />
9,1 – 11<br />
11,1 – 13<br />
13,1 – 15<br />
15,1 – 17<br />
17,1 – 19<br />
Den gennemsnitlige (± 1SD) BAP-koncentration i CTL-forsøgsgruppen steg moderat fra forsøgsstart til +9,8% (± 33,2%) ved<br />
12 måneder (p=0,08), hvorimod BAP-koncentrationerne i HRT-forsøgspersonerne aftog fra forsøgsstart til –32,4 (± 21,5%)<br />
ved 12 måneder (p < 0,00001). Deltagerne i HRT-testgruppen havde en større tendens end CTL-deltagerne til at udvise BAP-tab,<br />
der oversteg den procentvise minimumsændring 12 , med 73,3% af HRT-deltagerne og 3,4% af CTL-deltagerne der udviste fald<br />
på ≥ 25% ved 12 måneder. Fordelingerne af den procentvise ændring fra forsøgsstart i BAP-værdier efter 12 måneder i ALN og<br />
CTL-grupperne er afbildet i følgende figur.<br />
19,1 – 21<br />
19,1 – 21<br />
21,1 – 23<br />
21,1 – 23<br />
23,1 – 25<br />
23,1 – 25<br />
25,1 – 27<br />
25,1 – 27<br />
27,1 – 29<br />
27,1 – 29<br />
CTL<br />
HRT<br />
Faldende knogleomsætning U/L BAP<br />
Stigende knogleomsætning<br />
> 29<br />
CTL<br />
HRT<br />
> 29
Fordeling af procentvis ændring i BAP-niveauer efter 12 måneders<br />
behandling med østrogen/gestagen (HRT) eller placebo (CTL)<br />
Ved 12 måneder havde deltagerne i HRT-gruppen øget LSBMD sammenlignet med CTL (p < 0.00001), som vist i følgende tabel:<br />
Ændringer i LSBMD (gennemsnit ± SD)<br />
n Forsøgsstart (g/cm 2 ) 12 måneder (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 58 0,97 ± 0,17 0,95 ± 0,16 -1,6 ± 2,8<br />
HRT 262 0,97 ± 0,15 1,00 ± 0,15 +3,5 ± 2,8<br />
Disse resultater antyder, at Metra BAP-analysen er sikker og effektiv til overvågning af den antiresorptive effekt af<br />
hormonbehandling af postklimakterielle kvinder.<br />
Forudsigelse af skeletrespons:<br />
I følgende figur afbildes %-faldet i BAP-værdierne fra forsøgsstart til 12 måneder efter kvartil for gruppen behandlet med HRT.<br />
Testpersoner i øvre kvartil (Q1): største procentvise fald) udviste den største stigning af LSBMD som reaktion på HRT.<br />
%Ændring LSBMD op til 12 mdr. (+/- SEM)<br />
Andel af population (%)<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
1<br />
0<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
< -70,0%<br />
-70,0 til -60,1%<br />
-60,0 til -50,1%<br />
-50,0 til -40,1%<br />
-40,0 til -30,1%<br />
HRT-gruppen – Værdier for %-ændring i BAP op til 12 måneder fordelt efter<br />
kvartil og tilsvarende %-ændring i LSBMD ved 12 måneder.<br />
På følgende figur angives den lineære regressionsanalyse (y = -0,060x + 0,011, r = -0,51, p < 0,001) for den procentvise ændring<br />
fra forsøgsstart op til 12 måneder med BAP og procentændringen fra forsøgsstart til 12 måneder for BMD for alle deltagerne i<br />
undersøgelsen (placebo og behandlede).<br />
-30,0 til -20,1%<br />
Faldende knogleomsætning % Ændring<br />
Øget knogleomsætning<br />
Q1 (-66,5 til -45,9) Q2 (-45,9 til -36,0)<br />
p < 0,001<br />
-20,0 til -10,1%<br />
-10,0 til -0,1%<br />
0,0 til 9,9%<br />
10,0 til 19,9%<br />
CTL<br />
HRT<br />
≥ 20,0%<br />
Q3 (-36,0 til -23,8) Q4 (-23,8 til 167,3)<br />
Kvartiler efter %-ændring i BAP til 12 måneder<br />
69<br />
DANSK
70<br />
LSBMD procentændring til 12 mdr..<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-5,0%<br />
-10,0%<br />
HRT-undersøgelsen – lineær regression for den procentvise ændring i<br />
LSBMD og BAP fra forsøgsstart op til 12 måneder.<br />
-15,0%<br />
-60,0% -40,0% -20,0%<br />
En kontingenstabelanalyse påviste, at der var væsentlig sammenhæng mellem et fald på ≥ 25% i BAP ved 12 måneder<br />
(p < 0,0001) og en positiv skeletrespons på HRT (stigning i BMD) ved 12 måneder De binominale (anden ordens approksimering)<br />
85% konfidensintervaller for sensitiviteten og specificiteten ved anvendelse af en 25% reduktion af BAP til forudsigelse af en<br />
reaktion på HRT er:<br />
Sensitivitet = 77% (95% CI 75%, 82%); Specificitet = 61% (95% CI 41%, 78%).<br />
Disse resultater antyder, at den procentvise ændring af BAP-koncentrationen kan anvendes til forudsigelse af skeletrespons (BMD)<br />
på HRT-behandling.<br />
+ASS<strong>IS</strong>TANCE<br />
Hvis du ønsker at afgive bestilling eller har tekniske spørgsmål, skal du rette henvendelse til en repræsentant for Quidel på<br />
+1 408-616-4301 fra mandag til fredag mellem klokken 8.00 og 17.00 (Pacific time). Bestilling kan også afgives pr. fax<br />
på +1 408-616-4310.<br />
For serviceydelser uden for USA kontaktes den lokale distributør.<br />
y = -0,060x + 0,011<br />
r = 0,51<br />
p < 0,001<br />
0,0% 20,0% 40,0% 60,0%<br />
BAP procentændr. til 12 mdr
SNABBGUIDE TILL ANALYSENS STEG<br />
1. Tillsätt 125 µl analysbuffert.<br />
2. Tillsätt 20 µl standarder, kontrollvätskor och prover; virvla runt.<br />
3. Inkubera tre timmar ±10 minuter vid 20–28 °C.<br />
4. Tvätta fyra gånger med 1x tvättbuffert.<br />
5. Tillsätt 150 µl 20–28 °C arbetssubstratlösning.<br />
6. Inkubera 30 ±5 minuter vid 20–28 °C.<br />
7. Tillsätt 100 µl stopplösning och avläs optisk densitet vid 405 nm.<br />
AVSETT ANVÄNDNINGSOMRÅDE<br />
Immunoanalysen Metra BAP ger ett kvantitativt mått på benspecifik alkalisk fosfatasaktivitet (BAP) i serum som en indikator på<br />
osteoblastisk aktivitet. BAP-mätningen är avsedd för:<br />
� användning som hjälpmedel vid postmenopausal osteoporos och <strong>Page</strong>ts sjukdom;<br />
� övervakning av postmenopausala kvinnor som behandlas med hormoner eller bisfosfonat;<br />
� prediktion av skelettets respons på hormonbehandling för postmenopausala kvinnor.<br />
SAMMANFATTNING OCH FÖRKLARING<br />
Skelettisoformen, eller den benspecifika isoformen av alkaliskt fosfatas är ett tetrameriskt glykoprotein som finns på cellytan i<br />
osteoblaster. 1 Osteoblaster är de celler som svarar för syntes av ny benvävnad och benmineralisering. Det benspecifika alkaliska<br />
fosfatasets funktion är inte helt klarlagd, men dess roll i benmineraliseringen har bekräftats. 1,2,3<br />
Ben genomgår konstant en metabolisk process som kallas benremodellering. 3,4 Den omfattar en nedbrytande process,<br />
benresorption, som utförs av osteoklaster, och en uppbyggande process, benformation, som utförs av osteoblaster. 3,4<br />
Benremodelleringen är nödvändig för skelettets fortlevnad och kondition, och är nära sammankopplad – dvs. benresorptionen och<br />
benformationen är i balans. 3,4 I abnorma fall av benmetabolism bryts balansen. Om resorptionen är större än formationen leder det<br />
till benförlust som kan orsaka osteoporos, 3,4 eller till oregelbunden benvävnad (<strong>Page</strong>ts sjukdom). 5 Mätning av specifika biokemiska<br />
värden för dessa remodelleringshändelser ger analytiska data angående benmetabolismens hastighet eller ”omsättning”. 3,4<br />
Osteoporos är en metabolisk bensjukdom som karakteriseras av abnorm benremodellering. Det är en systemisk skelettsjukdom<br />
som karakteriseras av låg benmassa och mikrostrukturell försvagning i benvävnaden, med ökad känslighet för benfrakturer som<br />
följd. 6 Den vanligaste typen av osteoporos drabbar postmenopausala kvinnor som resultat av östrogenbrist när äggstockarnas<br />
funktion upphör. 3 Hormonbehandling som återställer östrogennivåerna förhindrar benförlust och osteoporos. 3,6 Östrogener och en<br />
klass föreningar som kallas bisfosfonater är antiresorptiva behandlingar som kan användas för att förhindra benförlust eller för att<br />
behandla osteoporos. 3,6,7<br />
Osteoporos kan också orsakas av otillräcklig högsta benmassa under tillväxtåren, en åldersrelaterad obalans i benremodelleringen<br />
med nettoöverskott av resorption och ett antal kliniska tillstånd och behandlingar som leder till benförlust eller obalans i<br />
benremodelleringen. 3 De omfattar endokrina sjukdomar som hypogonadism, hypertyreoidism, hyperparatyreoidism och<br />
hyperkortisolism; njursvikt; metastatisk bencancer; gastrointestinala sjukdomar som är relaterade till näring och mineralmetabolism;<br />
besläktade vävnadssjukdomar; multipelt myelom; kronisk förlamning; alkoholism eller tobaksbruk; och kronisk behandling med<br />
heparin eller kortikosteroider. 3<br />
<strong>Page</strong>ts bensjukdom är en allvarlig sjukdom med smärta och bendeformation som symptom. 5 <strong>Page</strong>ts sjukdom karakteriseras av<br />
benvävnad med kraftigt abnorm struktur till följd av förhöjd benremodellering. Missbildningarna uppträder huvudsakligen i kraniet,<br />
ryggraden, bäckenet och de långa benen, och kan leda till frakturer och neurologisk försämring. 5 Etiologin för <strong>Page</strong>ts sjukdom är<br />
okänd, men trovärdiga hypoteser om ärftlighet och virus finns. 5 Bisfosfonat och kalcitonin används för närvarande för att dämpa den<br />
biokemiska aktiviteten till normala nivåer så att normal benstruktur kan återställas. 9<br />
Som ett kvantitativt mått på benomsättning ger BAP viktig information om benremodelleringen vid osteoporos och <strong>Page</strong>ts<br />
sjukdom, och om förändringar i sjukdomsaktivitet till följd av antiresorptiv behandling. 10-12 För Metra BAP-analysen användes<br />
antikroppteknik för att ge en monoklonal antikropp som visar specificiteten för BAP. 10 Specificiteten för den monoklonala<br />
antikroppen som används i analysen möjliggör enkel, praktisk, reproducerbar och direkt kvantifiering av BAP-aktivitet i serum.<br />
PROCEDURENS PRINCIP<br />
Metra BAP är en immunoanalys i mikrotiter-remsformat med en monoklonal anti-BAP-antikropp på remsan för att infånga BAP i<br />
provet. Enzymaktiviteten hos infångad BAP upptäcks med ett pNPP-substrat.<br />
71<br />
SVENSKA
MEDFÖLJANDE REAGENSER OCH MATERIAL<br />
96 analyser för benspecifikt alkaliskt fosfatas (BAP)<br />
Metra BAP EIA innehåller följande:<br />
A BAP-standard A till F Komponent 4395 till 4400 0,3 ml/st<br />
B (A = 0, B = 2, C = 20, D = 50, E = 80, F = 140 E/L BAP)<br />
C BAP som renats från osteosarkom SAOS-2-celler i en buffrad lösning med magnesiumklorid, zinksulfat, surfaktant,<br />
D bärarprotein, blått färgämne och natriumazid (0,05 %) som konserveringsmedel.<br />
E<br />
F<br />
L Låga/höga kontroller Komponent 4401, 4402 0,3 ml/st<br />
H BAP renat från osteosarkom SAOS-2-celler i en buffrad lösning med magnesiumklorid, zinksulfat, surfaktant, bärarprotein, blått<br />
färgämne och natriumazid (0,05 %) som konserveringsmedel.<br />
q Remsor med beläggning Komponent 4660 12 st<br />
Renad mus-monoklonal Anti-BAP IgG-antikropp på Stripwell-remsor.<br />
w Stopplösning Komponent 4702 15 ml<br />
0,5N NaOH<br />
e 10x tvättbuffert Komponent 4703 55 ml<br />
Nonjonaktivt rengöringsmedel i buffertlösning med natriumazid (0,05 %) som konserveringsmedel.<br />
r Analysbuffert Komponent 4403 27 ml<br />
Buffertlösning som innehåller magnesiumklorid, zinksulfat, surfaktant och natriumazid (0,05 %) som konserveringsmedel.<br />
t Substratbuffert Komponent 4404 3 x 10 ml<br />
2-amino-3-metyl-1-propanollösning innehållande HEDTA, magnesiumklorid, zinksulfat och natriumazid (0,05 %) som<br />
konserveringsmedel.<br />
y Substrattabletter Komponent 0012 3 x 20 mg<br />
p-nitrofenylfosfat.<br />
NÖDVÄNDIGT MATERIAL SOM INTE MEDFÖLJER<br />
Mikropipetter för 20 µl och 100 till 300 µl<br />
Lämpliga mätkärl för 100 till 300 ml<br />
Behållare för tvättbuffertspädning<br />
Avjoniserat eller destillerat vatten<br />
Plattläsare för avläsning av optisk densitet vid A405 > 2,0<br />
Programvara för kurvpassning med kvadratisk kalibrering<br />
VARNINGAR OCH FÖRSIKTIGHETSÅTGÄRDER<br />
1. För in vitro-diagnostik.<br />
2. Behandla prover som biologiskt riskmaterial. Hantera satsens innehåll och patientprover med försiktighet.<br />
3. Behållare och oanvänt innehåll ska kasseras i enlighet med gällande lagar och bestämmelser.<br />
4. Medföljande reagenser används som en enhet fram till det utgångsdatum som anges på förpackningen.<br />
5. Förvara analysreagenser enligt anvisningen.<br />
6. Använd inte remsor med beläggning om det finns hål på förpackningen.<br />
7. Dubbeltesta varje prov.<br />
8. 0,5N NaOH är frätande och kan orsaka svåra brännskador. Får inte förtäras. Undvik kontakt med hud, ögon eller kläder. Tvätta<br />
bort spilld 0,5N NaOH med vatten. Kontakta läkare vid förtäring.<br />
9. Natriumazid används som konserveringsmedel. Tillfällig kontakt med eller förtäring av buffertlösningar med natriumazid kan<br />
orsaka irritation på hud, ögon och i munnen. Använd bara buffertlösningarna för de avsedda ändamålen och undvik kontakt<br />
med syror. Natriumazid kan reagera med bly- och kopparrör och bilda högexplosiva metallazider. Spola stora mängder vatten<br />
när azider kasseras för att undvika azidansamling.<br />
10. Substratbufferten innehåller 2-amino-2-mehyl-1-propanol och kan irritera ögon och/eller hud vid längre kontakt. Bär lämpliga<br />
skyddskläder, handskar och ögon/ansiktsskydd. Kontaktade områden skall omedelbart tvättas med tvål och vatten.<br />
11. Multikanal- eller repeterpipetter bör användas vid uppmätning av reagenser.<br />
12. För korrekt provmätning ska exakta mängder prover och standarder tillsättas. Pipettera omsorgsfullt med kalibrerad utrustning.<br />
13. Späd prover som är större än 140 E/l i analysbufferten och testa om. Ta med spädningsfaktorn i slutberäkningen.<br />
14. Analysen utförs med någon validerad tvättmetod.<br />
REAGENSFÖRBEREDELSER<br />
Reagenser och material ska ha temperaturen 20–28 °C före analysen. När de reagenser och material som<br />
behövs avlägsnats ska oanvända artiklar återställas till 2–8 °C.<br />
72
Remsor med beläggning<br />
Ta ut Stripwell-ramen och det antal remsor med beläggning som behövs från förpackningen (se tabellen i avsnittet ANALYSPROCEDUR).<br />
Förpackningar med oanvända remsor måste återförslutas helt.<br />
Tvättbuffert<br />
Bered den rätta mängden 1x tvättbuffert (se tabell) genom att späda 10x tvättbuffertkoncentrat 1:10 med avjoniserat vatten.<br />
Förvara vid 20–28 °C. Använd 1x tvättbufferten inom 21 dagar från beredningen.<br />
Arbetssubstratlösning<br />
Bered arbetssubstratlösningen högst en timme innan den ska användas. Lägg en substrattablett i varje flaska 20–28 °C<br />
substratbuffert (se tabellen). Låt tabletten lösas upp i 30 till 60 minuter. Skaka flaskan/flaskorna kraftigt så att lösningen blandas<br />
helt. Kassera överbliven arbetssubstratlösning efter användning.<br />
FÖRVARING<br />
Förvara satsen vid 2–8 °C. Får inte frysas. Förvara oanvänd reagens vid 2–8 °C. Låt reagensens temperatur stabiliseras vid 20–28 °C<br />
före användning. Förvara 1x tvättbuffert (10x utspädd) vid 20–28 °C.<br />
PROVTAGNING OCH PROVFÖRVARING<br />
Ta serumprovet med vanlig venpunktion. Provet ska tas utan antikoagulant för att undvika hemolys. Låt blodet levra sig och avskilj<br />
serumet med centrifugering. Serum kan förvaras i fem dagar vid 2–8 °C, i tolv månader vid -40 °C eller kallare och i 36 månader vid<br />
-80 °C eller kallare. Prover får inte frysas och tinas mer än tre gånger.<br />
Serum direkt från koagulatet, serum från serumrör, Na-heparinplasma och Li-heparinplasma ger väsentligen likvärdiga resultat.<br />
Plasmaprover bör inte prepareras med kelatmedel (till exempel EDTA eller citrat).<br />
ANALYSPROCEDUR<br />
Läs hela produktbladet innan analysen påbörjas.<br />
Läs avsnittet REAGENSBEREDNING före analysen.<br />
Avgör hur mycket av varje reagens som behövs utifrån antalet remsor som ska användas.<br />
Antal remsor 4 6 8 12<br />
Antal prover (parprover) 8 16 24 40<br />
Substrat (flaska) 1 1 2* 2*<br />
1x tvättbuffert (ml) 100 150 200 300<br />
*Om mer än en flaska används ska innehållet blandas före användning.<br />
Provinkubering<br />
1. Ta ut Stripwell-ramen och det antal remsor med beläggning som behövs från förpackningen (se tabellen). Förpackningar med<br />
oanvända remsor måste återförslutas helt.<br />
2. Placera önskat antal remsor med beläggning i Stripwell-ramen. Märk remsorna för att undvika att de blandas ihop om de tas<br />
bort från Stripwell-ramen av misstag.<br />
3. Tillsätt 125 µl analysbuffert i varje brunn.<br />
4. Tillsätt 20 µl standard, kontrollvätska eller prov i varje brunn. Blanda inte med analysbuffert genom repeterpipettering. Detta<br />
steg ska slutföras inom 30 minuter. Virvla försiktigt runt remsorna så att provet blandas ordentligt med<br />
bufferten.<br />
5. Inkubera tre timmar (± tio minuter) vid 20–28 °C.<br />
6. Bered arbetssubstratlösningen högst en timme innan den ska användas. Lägg en substrattablett i varje flaska 20–28 °C<br />
substratbuffert (se tabellen). Låt tabletten lösas upp i 30 till 60 minuter. Skaka flaskan/flaskorna kraftigt så att lösningen<br />
blandas helt.<br />
Tvättning<br />
7. Bered rätt mängd 1x tvättbuffert (se tabell) genom att späda 10x tvättbuffert 1:10 med avjoniserat vatten. Förvara vid 20–28<br />
°C. Använd 1x tvättbufferten inom 21 dagar från beredningen.<br />
8. Vänd/töm remsorna för hand. Tillsätt minst 250 µl 1x tvättbuffert i varje brunn och vänd/töm remsorna för hand. Upprepa<br />
ytterligare tre gånger (totalt fyra tvättningar). Torka av remsorna ordentligt på pappershandukar efter den sista tvättningen.<br />
Substratinkubering<br />
9. Tillsätt 150 µl arbetssubstratlösning i varje brunn. Kassera överbliven arbetssubstratlösning efter användning.<br />
10. Inkubera 30 ± 5 minuter vid 20–28 °C.<br />
Stopp/avläs<br />
11. Tillsätt 100 µl stopplösning i varje brunn. Tillsätt stopplösningen i samma mönster och med samma tidsintervall som<br />
substratlösningen tillsattes.<br />
12. Avläs den optiska densiteten vid 405 nm. Kontrollera att det inte finns några stora bubblor i brunnarna och att remsornas<br />
undersidor är rena. Remsorna ska avläsas inom 15 minuter från att stopplösningen tillsatts.<br />
13. Kvantitativ programvara som använder en kurvpassningsekvation med kvadratisk kalibrering måste användas för att analysera<br />
testresultat från Metra BAP.<br />
Equation: y = A + Bx + Cx 2<br />
73<br />
SVENSKA
KVALITETSKONTROLL<br />
Analyscertifikatet som medföljer produkten är partispecifik och ska användas för att intyga att laboratoriets resultat liknar dem<br />
som erhålles på Quidel. De optiska densitetsvärdena är givna och ska endast användas som riktlinjer. Resultatet i ert laboratorium<br />
kan avvika.<br />
Kvalitetskontrollområden medföljer. Kontrollvärdena är avsedda att bekräfta kurvans och testresultatets giltighet. Varje laboratorium<br />
ska upprätta egna parametrar för vad som är acceptabla analysvärden. Om kontrollvärdena INTE ligger inom laboratoriets<br />
acceptansgränser, ska analysresultaten infrågasättas och proven ska upprepas.<br />
Om den optiska densiteten för Metra BAP standard F är mindre än 1,0, ska resultatet infrågasättas och proverna bör upprepas.<br />
RESULTATTOLKNING<br />
Testresultat uttrycks i E/L och behöver inte korrigeras för utspädning (om inte provet späddes före testet).<br />
I Metra BAP-analysen motsvarar en enhet en µmol pNPP-hydrolyserad per minut vid 25 °C i 2-amino-2-metyl-1-propanol-buffert.<br />
Representativ standardkurva<br />
BAP-standardnivåer: 0, 2, 20, 50, 80, 140 E/L<br />
PROCEDURENS BEGRÄNSNINGAR<br />
HAMA-interferens<br />
Vissa personer har antikroppar mot mus-antikroppar (HAMA), som kan orsaka interferens i immunoanalyser som använder<br />
antikroppar från möss. Det har framförallt rapporterats att serumprover från patienter som genomgått behandling eller diagnos<br />
omfattande infusion av monoklonala antikroppar från möss kan ge felaktiga resultat. Därför ska Metra BAP-resultat från<br />
sådana patienter bara användas i kombination med resultat från andra diagnosmetoder och med information från den kliniska<br />
utvärderingen av patienten.<br />
Prover med betydligt förhöjd alkalisk fosfatasaktivitet i levern kan orsaka felaktigt förhöjda resultat i Metra BAP-analysen.<br />
Patienter med låg nivå av <strong>Page</strong>ts sjukdom kan ha värden för alkaliskt fosfatas som faller inom referensområdet för Metra BAP.<br />
PROV VÄRDEN<br />
Referensområden för BAP har fastställts för normala män över 25 års ålder (n = 126), normala premenopausala kvinnor mellan 25<br />
och 44 års ålder (n = 178) och normala postmenopausala kvinnor (n = 107). För etableringen av referensområden definierades<br />
följande normalsubjekt:<br />
� friska, utan bensjukdomar eller endokrina eller kroniska sjukdomar<br />
� med regelbunden menstruationscykel (premenopausala kvinnor)<br />
� ej gravida eller ammande (kvinnor)<br />
� ingen medicinering med känd inverkan på benmetabolismen.<br />
Värdena kan påverkas av faktorer som låg östrogenproduktion, lågt kalciumintag eller låg fysisk aktivitet. 8 Östrogenbrist hos<br />
postmenopausala kvinnor kan ge förhöjd benomsättning. 3,4 Varje laboratorium bör fastställa egna normalreferensområden.<br />
Områdena uttrycks som icke-parametriska referensintervaller (90 % Cl).<br />
Ålder (år) Område (E/L) Median<br />
Kvinnor 25–44 Premenopausala 11,6–29,6 18,3<br />
Kvinnor ≥ 45 Postmenopausala 14,2–42,7 25,0<br />
Män ≥ 25 15,0–41,3 23,2<br />
PRESTANDASPECIFIKATIONER<br />
Antikroppspecifikationer<br />
Den benspecifika alkaliska fosfatasantikroppen har selektiv hög affinitet för den benspecifika alkaliska fosfatasisoformen, låg<br />
korsreaktivitet mot leverformen av alkaliskt fosfatas och försumbar bindning av intestinala och placentala isoenzymer.<br />
74<br />
Ooptisk densitet (405 nm)<br />
3,0<br />
2,0<br />
1,0<br />
0,0<br />
0 25 50 75 100 125 150<br />
BAP (E/L)
AP-isoenzym % reaktivitet<br />
Ben 100<br />
Lever 3–8<br />
Placental 0<br />
Intestin 0,4<br />
Känslighet<br />
Metra BAP-analysens minsta avkänningsgräns är 0,7 E/L, vilket avgörs av den övre 3-SD-gränsen i en precisionsstudie med<br />
nollstandard.<br />
Återhämtning – pik-återhämtning<br />
Pik-återhämtningen avgjordes genom att en känd mängd renat BAP tillsattes i serumprover med olika nivåer endogent BAP. Typiska<br />
resultat erhålls efter man taggat serumprover med låg, medelhög och hög koncentration av BAP och trippelanalyserat dessa.<br />
Endogent (E/L) Tillsatt (E/L) Observerat (E/L) Återhämtning (%)<br />
13,4 15,7 29,1 99<br />
17,6 37,5 55,3 99<br />
27,2 57,2 88,1 106<br />
Återhämtning – linjäritet<br />
Linjäriteten avgjordes genom att prover späddes seriellt. De observerade värdena jämfördes med förväntade värden. Typiska resultat<br />
visas nedan.<br />
Prov Spädnings-faktor Observerat (E/L) Förväntat (E/L) Återhämtning (%)<br />
1 konc. 108,5 - -<br />
1:2 51,1 54,2 94<br />
1:4 25,8 27,1 99<br />
1:6 18,0 18,1 99<br />
2 konc. 39,1 - -<br />
1:2 20,1 19,5 103<br />
1:4 10,3 9,8 105<br />
1:6 6,7 6,5 103<br />
3 konc. 58,4 - -<br />
1:2 29,9 29,2 102<br />
1:4 15,7 14,6 108<br />
1:6 9,7 9,7 100<br />
Precision<br />
Precision inom tester bestämdes för ≥ 21 replikat av 3 prov på 3 plattor från var och en av 3 partier (totalt 9 plattor). Precision<br />
mellan tester bestämdes för 3 prov, som körts i 6 separata plattor från var och en av 3 partier (totalt 18 plattor). Typiska resultat<br />
visas nedan.<br />
BAP (E/L BAP) CV % Inom test 1 CV % mellan tester 2<br />
12 5,8 5,2<br />
35 3,9 7,6<br />
100 5,2 5,0<br />
1 n = 21 2 n = sex tester<br />
Störande ämnen<br />
Följande ämnen testades vid angiven koncentration och befanns inte störa analysen.<br />
Ämne Koncentration<br />
Hemoglobin 500 mg/dl<br />
Bilirubin 25 mg/dl<br />
Triglycerider 1420 mg/dl<br />
Totalprotein 6,0 g/dl †<br />
Totalprotein 15,6 g/dl †<br />
Totalprotein 6,0 g/dl ‡<br />
Totalprotein 15,6 g/dl ‡<br />
† Protein med vatten<br />
‡ Protein med BAP (BAP-koncentration = 43,6 E/L)<br />
75<br />
SVENSKA
Läkemedelsinterferens<br />
Olika koncentrationer av läkemedel tillsattes i tre separata serumprover med ungefär 35, 70 och 105 E/L BAP och<br />
trippelanalyserades. De läkemedel och högsta koncentrationer som testades var:<br />
Ämne Högsta koncentration<br />
Etidronat 350 µg/ml<br />
Östrogen 100 µg/ml<br />
Ibuprofen 150 µg/ml<br />
Acetominophen 350 µg/ml<br />
Aspirin 350 µg/ml<br />
Kalcitonin – humant 80 µg/ml<br />
Kalcitonin – lax 80 µg/ml<br />
Kalcium 500 µg/ml<br />
Blandning av noretindron/etynilestradiol (oralt preventivmedel) 3 mg/ml<br />
Vitamin D 400 IU/ml<br />
Noggrannhet<br />
Komparativa studier utfördes för att utvärdera sambanden mellan mätningar av serumets benspecifika alkaliska fosfatas (BAP),<br />
som erhållits genom MetraBAP-analys, och resultat som erhållits med tre för närvarande tillgängliga metoder för mätning av<br />
totalt alkaliskt fosfatas (TAP) eller BAP. Studierna utfördes vid en oberoende klinisk undersökniningsanläggning med serum från<br />
114 patienter med <strong>Page</strong>ts sjukdom och 464 friska personer. Den första jämförelsen var en kolorimetrisk teknik för TAP-mätning.<br />
Korrelationskoefficienten (r), som fastställdes mellan den kolorimetriska metoden och Metra BAP-analysen, var 0,99. Den andra<br />
komparativa metoden var en elektroforesmetod för att avgöra isoenzymnivåerna för BAP (r = 0,99). Den tredje komparativa<br />
metoden var en immunoradiometrisk analys för att mäta BAP (r = 0,99). Av de 114 patienterna med diagnosen <strong>Page</strong>ts sjukdom<br />
hade 101 patienter värden som var högre än den övre gränsen för referensområdena för Metra BAP-analysen. Tretton patienter hade<br />
värden som var mindre än den övre gränsen för referensområdena.<br />
KLIN<strong>IS</strong>KA STUDIER<br />
Metra BAP-användning för övervakning av effekten av antiresorptiv behandling vid osteoporos<br />
Ett slumpmässigt kontrollerat multicenterförsök utfördes framgångsrikt för att fastställa Metra-BAP-analysens säkerhet och<br />
effektivitet att övervaka förändringar i BAP-koncentrationer i samband med antiresortptiv behandling med aminobisfosfonat<br />
(alendronat). Testpersonerna, som togs från en mer omfattande studie av alendronatets effekt för osteoporosbehandling, 7 var<br />
postmenopausala kvinnor mellan 45 och 84 års ålder (medel 64 ±7 år) med diagnosen osteoporos (utifrån en klinisk presentation<br />
eller om baslinjen för ländryggradens mineraltäthet [LSBMD] var mer än 2,5 standardavvikelser under medelvärdet för mogna<br />
premenopausala kvinnor). Vid baslinjen fick lämpliga testpersoner slumpmässigt antingen 10 mg alendronat och 500 mg kalcium<br />
per dag (ALN) eller ett placebo och 500 mg kalcium per dag (CTL). Serumprover togs vid baslinjen och efter tre, sex och tolv<br />
månader från alla testpersoner.<br />
Medelvärdet (±1 SD) för BAP-koncentrationen vid baslinjen 14,6 ± 5,4 jämfört med 14,6 ± 4,6, p = 0,900) och LSBMD<br />
(0,74 ± 0,10 jämfört med 0,75 ± 0,09, p = 0,751) hade liknande värden för ALN och CTL. Fördelningen av baslinjevärden för<br />
BAP-värden i ALN och CTL avbildas i följande figur i proportion till studiepopulationen.<br />
76<br />
Del av populationen (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
< 4,0<br />
4,0 – 5,9<br />
6,0 – 7,9<br />
Fördelning av BAP-nivåer vid baslinjen<br />
8,0 – 9,9<br />
10,0 – 11,9<br />
12,0 – 13,9<br />
Minskande benomsättning E/l BAP<br />
Ökande benomsättning<br />
BAP var avsevärt lägre för ALN än CTL vid tre (9,6 ± 3,5 jämfört med 13,4 ± 4,0, p < 0,00001), sex (8,0 ± 3,0 jämfört med 13,2<br />
± 3,8, p < 0,00001) och tolv månader (7,8 ± 2,6 jämfört med 13,3 ± 3,9, p < 0,00001). Fördelningen av BAP-värden efter tolv<br />
månader i ALN- och CTL-grupperna visas i följande figur.<br />
14,0 – 15,9<br />
16,0 – 17,9<br />
18,0 – 19,9<br />
20,0 – 21,9<br />
CTL, baslinje<br />
ALN, baslinje<br />
22,0 – 23,9<br />
24,0 – 25,9
Del av populationen (%)<br />
Fördelning av BAP-nivåer efter 12 månaders<br />
behandling med alendronat (ALN) eller kalcium (CTL)<br />
Medelvärdet (± 1 SA) för BAP-koncentrationen hos CTL-testpersoner hade minskat något från baslinjen till -5,4 % (± 19,1 %) vid<br />
tolv månader (p = 0,00004) vilket visar kalciumets begränsade bensparande effekt. 13<br />
Medelvärdet för BAP-koncentrationen hos ALN-testpersoner hade minskat 30,5 ± 24,6 % vid tre månader, 42,8 ± 17,3 %<br />
vid sex månader och 42,2 ± 19,2 % vid tolv månader. Testpersoner i ALN-gruppen var mer benägna än dem i CTL-gruppen att<br />
uppvisa BAP-förluster över den minsta procentförändringen 14 ; 68,5 %, 83,9 % och 86,1 % av ALN-personerna och 9,5 %, 15,9<br />
%, och 9,0 % av CTL-personerna hade en minskning som var 25 % eller större efter tre, sex och tolv månader. Fördelningen av<br />
procentförändringen av BAP-värden från baslinjen till tolv månader i ALN- och CTL-grupperna visas i följande figur.<br />
Del av populationen (%)<br />
40,0%<br />
35,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
< 4,0<br />
4,0 – 5,9<br />
Fördelning av procentförändring av BAP-nivåer efter 12 månaders<br />
behandling med alendronat (ALN) eller kalcium (CTL)<br />
Vid tolv månader hade testpersoner i ALN-gruppen förhöjd LSBMD jämfört med CTL-gruppen (p < 0,00001), vilket visas i följande<br />
tabell.<br />
Förändring i LSBMD (medel ± SD)<br />
6,0 – 7,9<br />
8,0 – 9,9<br />
10,0 – 11,9<br />
n Baslinje (g/cm 2 ) Tolv månader (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 159 0,75 ±0,09 0,74 ±0,09 -0,6 ±3,4<br />
ALN 121 0,74 ±0,10 0,79 ±0,10 5,5 ±4,1<br />
12,0 – 13,9<br />
Minskande benomsättning E/I BAP<br />
Ökande benomsättning<br />
< -70,0%<br />
-70,0 till -60,1%<br />
-60,0 till -50,1%<br />
-50,0 till -40,1%<br />
-40,0 till -30,1%<br />
Resultaten visar att Metra-BAP-analysen är ett säkert och effektivt sätt att övervaka den antiresorptiva effekten av behandling med<br />
aminobisfosfonat (alendronat) för testpersoner med diagnosen osteoporos.<br />
-30,0 till -20,1%<br />
14,0 – 15,9<br />
-20,0 till -10,1%<br />
16,0 – 17,9<br />
-10,0 till -0,1%<br />
18,0 – 19,9<br />
20,0 – 21,9<br />
0,0 till 9,9%<br />
12 mån CTL<br />
12 mån ALN<br />
22,0 – 23,9<br />
10,0 till 19,9%<br />
24,0 – 25,9<br />
12 mån CTL<br />
12 mån ALN<br />
Minskande benomsättning % förändring<br />
Ökande benomsättning<br />
≥ 20,0%<br />
77<br />
SVENSKA
Användning av Metra-BAP för övervakning av hormonell antiresorptiv behandling och prediktion av<br />
skelettets respons (benmineraltäthet) hos postmenopausala kvinnor<br />
Behandlingsövervakning:<br />
Ett slumpmässigt kontrollerat multicenterförsök utfördes framgångsrikt för att fastställa Metra-BAP-analysens säkerhet och<br />
effektivitet att övervaka förändringar i BAP-koncentrationer i samband med antiresorptiv behandling med östrogen/progestin.<br />
Ökad benomsättning och betydande benförlust hör ofta ihop med postmenopausal östrogenbrist. Östrogenersättning har visats<br />
minska benomsättningen effektivt och skydda befintlig benmassa. 3,6 Testpersonerna var postmenopausala kvinnor från 45 till<br />
64 års ålder (medel 56 ± 4 år) som genomgått naturlig eller kirurgisk menopaus de senaste tio åren. Vid baslinjen placerades<br />
lämpliga testpersoner slumpmässigt i en aktiv behandlingsgrupp (HRT): Premarin® (0,625 mg per dag) med placeboprogestin,<br />
Premarin® (0,625 mg per dag) och ett aktivt progestin (Provera® 2,5 mg per dag kontinuerligt, Provera® 10 mg per dag cykliskt<br />
eller mikroniserat progesteron 200 mg per dag cykliskt); eller i kontrollgruppen (CTL): placeboöstrogen och placeboprogestin.<br />
Serumprover togs vid baslinjen och efter tolv månader från alla testpersoner.<br />
Medelvärdet (±1 SD) för BAP-koncentrationen vid baslinjen (20,7 ±7,6 jämfört med 20,3 ±6,8 E/L, p = 0,704) och LSBMD<br />
(0,97 ±0,17 jämfört med 0,97 ± 0,15 g/cm 2 , p = 0,970) hade liknande värden för CTL och HRT. Fördelningen av baslinjevärden för<br />
BAP i HRT och CTL avbildas i följande figur i proportion till studiepopulationen.<br />
78<br />
Del av populationen (%)<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
Fördelning av BAP-nivåer vid baslinjen<br />
11,1 – 13<br />
13,1 – 15<br />
15,1 – 17<br />
BAP var avsevärt lägre för HRT än CTL vid tolv månader (13,3 ±5,0 jämfört med 21,9 ±7,9 E/L, p < 0,00001). Fördelningen av<br />
BAP-värden efter tolv månader i HRT- och CTL-grupperna visas i följande figur.<br />
Del av populationen (%)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
Fördelning av BAP-nivåer efter 12 månaders<br />
behandling med östrogen/progestin (HRT) eller placebo (CTL)<br />
Medelvärdet (±1 SD) för BAP-koncentrationen hos CTL-testpersonerna ökade något från baslinjen till 9,8 % (±33,2 %) vid tolv<br />
månader (p = 0,08) medan BAP-koncentrationen hos HRT-testpersoner minskade från baslinjen till -32,4 (±21,5 %) vid tolv<br />
månader (p < 0,00001). Testpersoner i HRT-gruppen var mer benägna än dem i CTL-gruppen att uppvisa BAP-förluster över<br />
den minsta procentförändringen 12 ; 73,3% av HRT-personerna och 3,4 % av CTL-personerna hade en minskning som var 25 %<br />
eller större efter tolv månader. Fördelningen av procentförändringen av BAP-värden från baslinjen till tolv månader i HRT- och<br />
CTL-grupperna visas i följande figur.<br />
17,1 – 19<br />
Minskande benomsättning E/I BAP<br />
Ökande benomsättning<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
11,1 – 13<br />
13,1 – 15<br />
15,1 – 17<br />
17,1 – 19<br />
19,1 – 21<br />
19,1 – 21<br />
21,1 – 23<br />
21,1 – 23<br />
23,1 – 25<br />
23,1 – 25<br />
25,1 – 27<br />
25,1 – 27<br />
27,1 – 29<br />
27,1 – 29<br />
CTL<br />
HRT<br />
Minskande benomsättning E/I BAP<br />
Ökande benomsättning<br />
> 29<br />
CTL<br />
HRT<br />
> 29
Del av populationen (%)<br />
Fördelning av procentförändring av BAP-nivåer efter 12 månaders<br />
behandling med östrogen/progestin (HRT) eller placebo (CTL)<br />
Vid tolv månader hade testpersoner i HRT-gruppen förhöjd LSBMD jämfört med CTL-gruppen (p < 0,00001), vilket visas i följande<br />
tabell.<br />
Förändring i LSBMD (medel ± SD)<br />
n Baslinje (g/cm 2 ) Tolv månader (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 58 0,97 ±0,17 0,95 ±0,16 -1,6 ±2,8<br />
HRT 262 0,97 ±0,15 1,00 ±0,15 +3,5 ±2,8<br />
Resultaten visar att Metra-BAP-analysen är ett säkert och effektivt sätt att övervaka den antiresorptiva effekten av behandling med<br />
hormonersättning hos postmenopausala kvinnor.<br />
Prediktion av skelettets respons:<br />
Följande figur visar den procentuella minskningen av BAP-värden från baslinjen till tolv månader efter kvartil för HRT-gruppen.<br />
Testpersoner i den högsta kvartilen (K1: största procentuella minskning) visade störst ökning i LSBMD efter HRT-behandling.<br />
% förändring LSBMD till 12 mån (+/- SEM)<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
< -70,0%<br />
-70,0 till -60,1%<br />
-60,0 till -50,1%<br />
-50,0 till -40,1%<br />
-40,0 till -30,1%<br />
HRT-gruppen – värden för procentuell förändring av BAP till tolv månader, sorterade<br />
efter kvartil och motsvarande procentuell förändring av LSBMD vid tolv månader<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
1<br />
0<br />
Följande figur visar linjär regressionsanalys (y = -0,060 x + 0,011, r = -0,51, p < 0,001) för den procentuella förändringen från<br />
baslinjen till tolv månader för BAP och för BMD för alla testpersoner i studien (placebo och behandlade).<br />
-30,0 till -20,1%<br />
Minskande benomsättning % förändring<br />
Ökande benomsättning<br />
K1 (-66,5 till -45,9) K2 (-45,9 till -36,0)<br />
p < 0,001<br />
-20,0 till -10,1%<br />
-10,0 till -0,1%<br />
0,0 till 9,9%<br />
10,0 till 19,9%<br />
CTL<br />
HRT<br />
≥ 20,0%<br />
K3 (-36,0 till -23,8) K4 (-23,8 till 167,3)<br />
Kvartiler efter % förändring i BAP till 12 månader<br />
79<br />
SVENSKA
80<br />
LSBMD % förändring till 12 mån<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-5,0%<br />
-10,0%<br />
HRT-studie – linjär regression för procentuell förändring i<br />
LSBMD och BAP från baslinjen till tolv månader<br />
-15,0%<br />
-60,0% -40,0% -20,0%<br />
Analys av kontingenstabell visade att en minskning på 25 % eller mer för BAP vid tolv månader hade ett starkt samband (p<br />
< 0,0001) med positiv skelettrespons på HRT (ökad BMD) vid tolv månader. De binomiala (andra gradens approximation)<br />
85-procentigakonfidensintervallerna för känsligheten och specificiteten med en 25-procentig minskning av BAP för prediktion av<br />
responsen på HRT är:<br />
Känslighet = 77 % (95 % CI 75 %, 82 %); Specificitet = 61 % (95 % CI 41 %, 78 %).<br />
Resultaten visar att den procentuella förändringen av BAP-koncentration kan användas för att förutse graden av skelettets respons<br />
(BMD) på HRT-behandling.<br />
SUPPORT<br />
Kontakta en Quidel-representant på +1 408-616-4301, vardagar mellan 08.00 och 17.00 Pacific Time (GMT +9) för att beställa<br />
eller för teknisk support. Beställning kan också göras via fax på +1 408-616-4310.<br />
Utanför USA: kontakta en lokal distributör för Quidel-produkter.<br />
y = -0,060x + 0,011<br />
r = 0,51<br />
p < 0,001<br />
0,0% 20,0% 40,0% 60,0%<br />
BAP % förändring till 12 mån
ΣΥΝΤΟΜΟΣ ΟΔΗΓΟΣ ΒΗΜΑΤΩΝ ΤΗΣ ΑΝΑΛΥΣΗΣ<br />
1. Προσθέστε 125 µL Assay Buffer (Ρυθμιστικό διάλυμα ανάλυσης).<br />
2. Προσθέστε 20 µL Standards (Πρότυπα), Controls (μάρτυρες) και δείγματα. Αναδεύστε.<br />
3. Επωάστε 3 ώρες ± 10 λεπτά σε 20–28°C.<br />
4. Πλύνετε 4 φορές με Wash Buffer (Ρυθμιστικό διάλυμα πλύσης) 1X.<br />
5. Προσθέστε 150 µL Working Substrate Solution σε 20–28°C.<br />
6. Επωάστε 30 ± 5 λεπτά σε 20–28°C.<br />
7. Προσθέστε 100 µL Stop Solution (∆ιάλυμα διακοπής) και διαβάστε την οπτική πυκνότητα στα 405 nm.<br />
ΠΡΟΟΡΙΖΟΜΕΝΗ ΧΡΗΣΗ<br />
Ο ανοσοπροσδιορισμός Metra BAP παρέχει ποσοτική μέτρηση της ενεργότητας της ειδικής για τα οστά αλκαλικής φωσφατάσης<br />
(BAP) στον ορό ως δείκτη της οστεοβλαστικής δραστηριότητας. Η μέτρηση της BAP προορίζεται να χρησιμοποιηθεί ως βοήθεια στη:<br />
� διαχείριση της μετεμμηνοπαυσικής οστεοπόρωσης και της νόσου <strong>Page</strong>t<br />
� παρακολούθηση των μετεμμηνοπαυσιακών γυναικών σε ορμονική θεραπεία ή θεραπεία διφωσφονικών.<br />
� πρόβλεψη της ανταπόκρισης του σκελετού σε ορμονική θεραπεία στις μετεμμηνοπαυσιακές γυναίκες<br />
ΠΕΡΙΛΗΨΗ ΚΑΙ ΕΞΗΓΗΣΗ<br />
Η σκελετική ή ειδική για το οστό ισομορφή της αλκαλικής φωσφατάσης είναι τετραμερής γλυκοπρωτεΐνη που βρίσκεται στην<br />
κυτταρική επιφάνεια των οστεοβλαστών. 1 Οι οστεοβλάστες είναι κύτταρα που ευθύνονται για τη σύνθεση νέας μεσοκυττάριας ουσίας<br />
των οστών και για την εναπόθεση ανόργανων αλάτων σε αυτά. Η λειτουργία της BAP δεν έχει διαλευκανθεί πλήρως, μολονότι ο ρόλος<br />
της στην εναπόθεση ανόργανων αλάτων στο σκελετό έχει επιβεβαιωθεί. 1,2,3<br />
Τα οστά υποβάλλονται διαρκώς σε μεταβολική διαδικασία που ονομάζεται ανάπλαση . 3,4 Αυτή συμπεριλαμβάνει την απορρόφηση,<br />
μία διαδικασία αποικοδόμησης του οστού, στην οποία μεσολαβεί η δράση των οστεοκλαστών, και την οστεογένεση, μία διαδικασία<br />
δόμησης, στην οποία μεσολαβεί η δράση των οστεοβλαστών. 3,4 Η ανάπλαση απαιτείται για τη συντήρηση και τη γενικότερη υγεία του<br />
οστού ενώ οι δύο διαδικασίες είναι στενά συνδεδεμένες, δηλαδή η απορρόφηση και η οστεογένεση βρίσκονται σε ισορροπία. 3,4 Σε μη<br />
φυσιολογικές καταστάσεις μεταβολισμού των οστών, η διαδικασία αυτή παύει να αποτελεί ζεύγος και όταν η απορρόφηση ξεπερνά<br />
την οστεογένεση το αποτέλεσμα είναι η καθαρή απώλεια οστού, η οποία μπορεί να οδηγήσει σε οστεοπόρωση 3,4 ή σε διαταραγμένο<br />
οστικό ιστό από κακώσεις της νόσου <strong>Page</strong>t. 5 Η μέτρηση ειδικών βιοχημικών δεικτών αυτών των διαδικασιών ανάπλασης παρέχει<br />
αναλυτικά δεδομένα σχετικά με το ρυθμό του μεταβολισμού των οστών ή της “ανακύκλωσης”. 3,4<br />
Η οστεοπόρωση είναι μία νόσος του μεταβολισμού των οστών, που χαρακτηρίζεται από παθολογική ανάπλαση. Είναι μία νόσος<br />
του περιφερικού σκελετού, που χαρακτηρίζεται από χαμηλή οστική μάζα και αποσύνθεση της μικροαρχιτεκτονικής του οστικού<br />
ιστού, η οποία έχει ως συνέπεια την αύξηση της ευαισθησίας σε κατάγματα. 6 Ο πιο κοινός τύπος οστεοπόρωσης εμφανίζεται σε<br />
μετεμμηνοπαυσιακές γυναίκες ως αποτέλεσμα της ανεπάρκειας οιστρογόνων που προέρχεται από την παύση λειτουργίας των<br />
ωοθηκών. 3 Η επιστροφή στα επίπεδα οιστρογόνων προ της εμμηνόπαυσης με θεραπεία αντικατάστασης παρεμποδίζει την απώλεια<br />
οστού και την οστεοπόρωση. 3,6 Τα οιστρογόνα και μία κατηγορία σκευασμάτων γνωστά ως διφωσφονικά είναι αντιαπορροφητικές<br />
θεραπείες, που μπορούν να χρησιμοποιηθούν για να παρεμποδίσουν την απώλεια οστού ή να θεραπεύσουν την οστεοπόρωση. 3,6,7<br />
Η οστεοπόρωση μπορεί επίσης να προκληθεί από την αδυναμία απόκτησης επαρκούς μέγιστης οστικής μάζας κατά τα χρόνια<br />
της ανάπτυξης, από μια ηλικιακά σχετιζόμενη διαταραχή της οστικής ανάπλασης, στην οποία παρατηρείται υπερβολική οστική<br />
απορρόφηση, και από μία σειρά κλινικών καταστάσεων και θεραπειών, οι οποίες προκαλούν απώλεια οστού ή διαταραχές στην<br />
ανάπλαση οστού. 3 Αυτές συμπεριλαμβάνουν ασθένειες του ενδοκρινικού συστήματος, όπως υπογοναδισμό, υπερθυρεοειδισμό,<br />
υπερπαραθυρεοειδισμό, νεφρική ανεπάρκεια, καρκίνους με μεταστάσεις στα οστά, γαστρεντερικές παθήσεις που σχετίζονται με<br />
τη διατροφή και το μεταβολισμό των ανόργανων αλάτων, ασθένειες του συνδετικού ιστού, πολλαπλά μυελώματα, χρονία ακινησία,<br />
αλκοολισμό ή χρήση καπνού και χρόνια θεραπεία με ηπαρίνη ή κορτικοστεροειδή. 3<br />
Η νόσος των οστών <strong>Page</strong>t είναι εστιακή διαταραχή, που προκαλεί πόνο και σκελετικές παραμορφώσεις σε συμπτωματικούς ασθενείς. 5<br />
Οι κακώσεις της νόσου <strong>Page</strong>t χαρακτηρίζονται από μεσοκυττάρια ουσία οστών με ιδιαίτερα παθολογική δομή, που οφείλεται στον<br />
υπερβολικό ρυθμό της αναπλαστικής δραστηριότητας. Οι κακώσεις εμφανίζονται κυρίως στο κρανίο, στη σπονδυλική στήλη, στην<br />
πύελο και στα επιμήκη οστά και μπορεί να έχουν ως αποτέλεσμα κατάγματα και νευρολογική αναπηρία. 5 Η αιτιολογία της νόσου <strong>Page</strong>t<br />
είναι άγνωστη αλλά υπάρχουν υποθέσεις που αφορούν γενετικούς και ιογενείς παράγοντες. 5 Επί του παρόντος, χρησιμοποιούνται<br />
διφωσφονικά και καλσιτονίνη για την καταστολή του υψηλού ρυθμού βιοχημικής δραστηριότητας σε φυσιολογικά επίπεδα, γεγονός<br />
που καθιστά εφικτή την αποκατάσταση της φυσιολογικής δομής του οστού. 9<br />
Ως ποσοτική μέτρηση ενός δείκτη οστικής ανακύκλωσης, η BAP παρέχει χρήσιμες πληροφορίες σχετικά με την ανάπλαση<br />
οστών στην οστεοπόρωση και στη νόσο <strong>Page</strong>t και σχετικά με τις μεταβολές της δραστηριότητας της νόσου, που προκαλούνται<br />
από αντιαπορροφητική θεραπεία. 10-12 Η ανάλυση της BAP με τη μέθοδο Metra χρησιμοποιεί τεχνολογία αντισωμάτων για την<br />
παραγωγή μονοκλωνικού αντισώματος, που δείχνει ειδικότητα έναντι της BAP. 10 Η ειδικότητα του μονοκλωνικού αντισώματος που<br />
χρησιμοποιείται στην ανάλυση επιτρέπει την απλή, εύκολη, άμεση και επαναλήψιμη ποσοτική εκτίμηση της ενεργότητας της BAP<br />
στον ορό.<br />
ΑΡΧΗ ΤΗΣ ΔΙΑΔΙΚΑΣΙΑΣ<br />
Η Metra BAP είναι ανοσοπροσδιορισμός σε μορφή ταινίας μικροτίτλου που χρησιμοποιεί μονοκλωνικά anti-BAP αντισώματα τα<br />
οποία βρίσκονται επιχρισμένα στην ταινία για να λάβει τη BAP του δείγματος. Η δραστικότητα του ενζύμου της ληφθείσας BAP<br />
ανιχνεύεται με υπόστρωμα pNPP.<br />
81
ΠΑΡΕΧΟΜΕΝΑ ΑΝΤΙΔΡΑΣΤΗΡΙΑ ΚΑΙ ΥΛΙΚΑ<br />
96 Αναλύσεις για ειδική για τα οστά αλκαλική φωσφατάση<br />
Η Metra BAP EIA περιέχει τα παρακάτω:<br />
A BAP Standards A - F Μέρη 4395 έως 4400 0,3 mL το καθένα<br />
B (A = 0, B = 2, C = 20, D = 50, E = 80, F = 140 U/L BAP)<br />
C BAP απομονωμένη από κύτταρα οστεοσαρκώματος SAOS-2 σε ρυθμιστικό διάλυμα που περιέχει ως χλωριούχο μαγνήσιο, θειικό<br />
D ψευδάργυρο, τασιενεργό παράγοντα, πρωτεΐνη-φορέα, μπλε χρωστική και αζίδιο του νατρίου (0,05%) ως συντηρητικό.<br />
E<br />
F<br />
L Low/High Controls Μέρη 4401, 4402 0,3 mL το καθένα<br />
H (Μάρτυρες Low/High)<br />
BAP απομονωμένη από κύτταρα οστεοσαρκώματος SAOS-2 σε ρυθμιστικό διάλυμα, που περιέχει χλωριούχο μαγνήσιο, θειικό<br />
ψευδάργυρο, τασιενεργό παράγοντα, πρωτεΐνη-φορέα, μπλε χρώση και αζίδιο του νατρίου (0,05%) ως συντηρητικό.<br />
q Coated Strips Μέρος 4660 12 τεμάχια<br />
(Επιχρισμένες ταινίες)<br />
Καθαρισμένο μονοκλωνικό αντίσωμα Anti-BAP IgG ποντικιού προσροφημένο στις ταινίες.<br />
w Stop Solution Μέρος 4702 15 mL<br />
NaOH 0,5N<br />
e 10X Wash Buffer Μέρος 4703 55 mL<br />
Μη ιοντικό απορρυπαντικό σε ρυθμιστικό διάλυμα που περιέχει αζίδιο του νατρίου (0,05%) ως συντηρητικό.<br />
r Assay Buffer Μέρος 4403 27 mL<br />
Ρυθμιστικό διάλυμα που περιέχει χλωριούχο μαγνήσιο, θειικό ψευδάργυρο, τασιενεργό παράγοντα και αζίδιο του νατρίου<br />
(0,05%) ως συντηρητικό.<br />
t Substrate Buffer Μέρος 4404 3 x 10 mL<br />
∆ιάλυμα 2-αμινο-2-μεθυλ-1-προπανόλης που περιέχει χλωριούχο μαγνήσιο, θειικό ψευδάργυρο και αζίδιο του νατρίου (0,05%)<br />
ως συντηρητικό.<br />
y Substrate Tablets Μέρος 0012 3 x 20 mg<br />
(∆ισκία υποστρώματος)<br />
p-φωσφορικό νιτροφαινύλιο<br />
ΥΛΙΚΑ ΠΟΥ ΑΠΑΙΤΟΥΝΤΑΙ ΑΛΛΑ ΔΕΝ ΠΑΡΕΧΟΝΤΑΙ<br />
Μικροπιπέττες για χορήγηση 20 µL και 100–300 µL<br />
Αντικείμενα κατάλληλα για μέτρηση υγρών όγκου 100–300 mL<br />
∆οχείο για αραίωση ρυθμιστικού διαλύματος πλύσης<br />
Απιονισμένο ή αποσταγμένο νερό<br />
Συσκευή για ανάγνωση οπτικής πυκνότητας πλακών στα A405 > 2,0<br />
Λογισμικό με ικανότητα χάραξης δευτεροβάθμιας καμπύλης βαθμονόμησης<br />
ΠΡΟΕΙΔΟΠΟΙΗΣΗ ΚΑΙ ΠΡΟΦΥΛΑΞΕΙΣ<br />
1. Για διαγνωστική χρήση In Vitro.<br />
2. Αντιμετωπίστε τα αντιπροσωπευτικά δείγματα ως ενδεχομένως βιολογικά επικίνδυνα υλικά. Ακολουθήστε τις Γενικές<br />
Προφυλάξεις, όταν χειρίζεστε περιεχόμενα αυτού του κιτ και δείγματα ασθενών.<br />
3. Απαλλαχθείτε από τα δοχεία και τα μη χρησιμοποιημένα περιεχόμενά τους σύμφωνα με τις ομοσπονδιακές, κρατικές και τοπικές<br />
ρυθμιστικές απαιτήσεις.<br />
4. Χρησιμοποιήστε τα παρεχόμενα αντιδραστήρια ως ολοκληρωμένη μονάδα πριν από την ημερομηνία λήξης, που αναγράφεται<br />
στην ετικέτα της συσκευασίας.<br />
5. Φυλάξετε τα αντιδραστήρια ανάλυσης όπως ορίζεται.<br />
6. Μη χρησιμοποιείτε τα Coated Strips, αν ο σάκος είναι διάτρητος.<br />
7. Ελέγξτε κάθε δείγμα διπλά.<br />
8. Το NaOH 0,5N θεωρείται διαβρωτικό και μπορεί να προκαλέσει σοβαρά εγκαύματα. Αποφύγετε την κατάποση. Αποφύγετε την<br />
επαφή με το δέρμα, τα μάτια ή τα ρούχα. Αν υπάρξει επαφή, πλύνετε με νερό. Αν ληφθεί από το στόμα, καλέστε γιατρό.<br />
9. Το αζίδιο του νατρίου χρησιμοποιείται ως συντηρητικό. Η τυχαία επαφή ή κατάποση ρυθμιστικών διαλυμάτων που περιέχουν<br />
αζίδιο του νατρίου ενδέχεται να προκαλέσει ερεθισμό στο δέρμα, στα μάτια ή στο στόμα. Χρησιμοποιείτε ρυθμιστικά διαλύματα<br />
για τους συγκεκριμένους μόνο σκοπούς και αποφύγετε την επαφή με οξέα. Το αζίδιο του νατρίου ενδεχομένως αντιδρά με<br />
υδραυλικές σωληνώσεις από μόλυβδο ή χαλκό και πιθανόν να σχηματίσει ιδιαίτερα εκρηκτικά αζίδια μετάλλων. Κατά την<br />
απόρριψη ξεπλύνετε με άφθονο νερό για να παρεμποδιστεί η δημιουργία αζιδίων.<br />
10. Το ρυθμιστικό διάλυμα υποστρώματος περιέχει 2-αμινο-2-μεθυλ-1-προπανόλη και ενδέχεται να προκαλεί ερεθισμό στα<br />
μάτια ή/και στο δέρμα μετά από παρατεταμένη επαφή. Φοράτε κατάλληλο προστατευτικό ιματισμό, γάντια και προστασία<br />
ματιών/προσώπου. Οι περιοχές που έχουν προσβληθεί πρέπει να πλένονται αμέσως με σαπούνι και νερό.<br />
11. Συνιστάται η χρήση πολυκαναλικών ή επαναληπτικών πιπεττών για την εξασφάλιση έγκαιρης χορήγησης αντιδραστηρίων.<br />
12. Για την ακριβή μέτρηση δειγμάτων προσθέστε με ακρίβεια δείγματα και πρότυπα. Λάβετε με πιπέττα χρησιμοποιώντας μόνο<br />
βαθμονομημένα όργανα.<br />
82
13. Αραιώστε δείγματα με συγκέντρωση μεγαλύτερη από 140 U/L σε Assay Buffer και επαναλάβετε τον έλεγχο. Συμπεριλάβετε το<br />
συντελεστή αραίωσης στον τελικό υπολογισμό.<br />
14. Η ανάλυση αυτή μπορεί να διεξαχθεί με οποιαδήποτε αξιόπιστη μέθοδο πλύσης.<br />
ΠΑΡΑΣΚΕΥΗ ΑΝΤΙΔΡΑΣΤΗΡΙΩΝ<br />
Πριν τη χρήση τα αντιδραστήρια και τα υλικά για την ανάλυση πρέπει να έλθουν σε θερμοκρασία 20–28°C.<br />
Μετά την αφαίρεση των απαιτούμενων αντιδραστηρίων και υλικών, επιστρέψτε τα μη χρησιμοποιημένα<br />
αντικείμενα σε θερμοκρασία 2–8°C.<br />
Coated Strips<br />
Αφαιρέστε το Stripwell Frame και τον απαιτούμενο αριθμό Coated Strips από το σάκο (βλ. πίνακα στην ενότητα ∆ΙΑ∆ΙΚΑΣΙΑ ΑΝΑΛΥΣΗΣ).<br />
Βεβαιωθείτε ότι ο σάκος που περιέχει όλες τις μη χρησιμοποιημένες ταινίες σφραγίστηκε ξανά.<br />
Wash Buffer<br />
Παρασκευάστε την απαιτούμενη ποσότητα 1X Wash Buffer (βλ. πίνακα) αραιώνοντας πυκνό Wash Buffer 10X με απιονισμένο νερό σε<br />
αναλογία 1:10. Φυλάξτε στους 20–28°C. Χρησιμοποιήστε το Wash Buffer 1X μέσα σε 21 μέρες από την παρασκευή.<br />
∆ιάλυμα υποστρώματος εργασίας<br />
Παρασκευάστε το Working Substrate Solution μία ώρα πριν τη χρήση. Τοποθετήστε ένα δισκίο υποστρώματος σε κάθε απαιτούμενη<br />
φιάλη Substrate Buffer θερμοκρασίας δωματίου (βλ. πίνακα). Αφήστε 30-60 λεπτά για να διαλυθεί το δισκίο (ή τα δισκία).<br />
Ανακινήστε τη φιάλη έντονα για να αναμειχθεί καλά το περιεχόμενο. Μετά τη χρήση απαλλαγείτε από το υπολειπόμενο Working<br />
Substrate Solution.<br />
ΦΥΛΑΞΗ<br />
Φυλάξτε το κιτ στους 2–8°C. Μην καταψύχετε. Φυλάξτε τα μη χρησιμοποιημένα αντιδραστήρια στους 2–8°C. Πριν τη χρήση<br />
εξισορροπήστε τα αντιδραστήρια στους 20–28°C. Φυλάξτε το Wash Buffer 1X (αραιωμένο 10X) στους 20–28°C.<br />
ΣΥΛΛΟΓΗ ΚΑΙ ΦΥΛΑΞΗ ΔΕΙΓΜΑΤΩΝ<br />
Συλλέξτε ορό χρησιμοποιώντας την τυπική τεχνική φλεβοπαρακέντησης. Τα δείγματα πρέπει να συλλέγονται χωρίς αντιθρομβωτικά<br />
και με τρόπο ώστε να αποφεύγεται η αιμόλυση. Αφήστε το αίμα να πήξει και διαχωρίστε τον ορό με φυγοκέντρηση. Ο ορός μπορεί να<br />
αποθηκευτεί για 5 μέρες στους 2–8°C, για 12 μήνες στους ≤ -40°C ή για 36 μήνες στους ≤ -80°C. Μην υποβάλλετε τα δείγματα σε<br />
περισσότερους από 3 κύκλους ψύξης/τήξης.<br />
Ο ορός “Off the clot”, ο διαχωριστής ορού, το πλάσμα ηπαρίνης Na και ηπαρίνης Li παρέχουν ουσιαστικά ισοδύναμα αποτελέσματα.<br />
Συνιστάται τα δείγματα πλάσματος να μην παρασκευάζονται με χρήση χηλικών παραγόντων όπως το EDTA ή άλατα κιτρικού οξέος.<br />
ΔΙΑΔΙΚΑΣΙΑ ΑΝΑΛΥΣΗΣ<br />
Πριν ξεκινήσετε την ανάλυση διαβάστε ολόκληρο το ένθετο του προϊόντος.<br />
Πριν προχωρήσετε βλ. το τμήμα ΠΑΡΑΣΚΕΥΗ ΑΝΤΙ∆ΡΑΣΤΗΡΙΩΝ.<br />
Προσδιορίστε την ποσότητα κάθε αντιδραστηρίου που απαιτείται για τον αριθμό ταινιών που θα<br />
χρησιμοποιηθούν.<br />
Αριθμός ταινιών 4 6 8 12<br />
Αριθμός δειγμάτων 8 16 24 40<br />
(ελέγχονται εις διπλούν)<br />
Υπόστρωμα (φιάλη) 1 1 2* 2*<br />
Wash Buffer 1X (mL) 100 150 200 300<br />
*Αν χρησιμοποιηθεί πάνω από μία φιάλη ή φιαλίδιο, προσθέστε τα περιεχόμενα και αναμίξτε πριν τη χρήση.<br />
Επώαση δείγματος<br />
1. Πριν τη χρήση αφαιρέστε το Stripwell Frame και τον απαιτούμενο αριθμό Coated Strips από το σάκο (βλ. τον πίνακα).<br />
Βεβαιωθείτε ότι ο σάκος που περιέχει όλες τις μη χρησιμοποιημένες ταινίες σφραγίστηκε ξανά πλήρως.<br />
2. Τοποθετήστε τον επιθυμητό αριθμό Coated Strips στο Stripwell Frame. Σημειώστε τις ταινίες με ετικέτα για να αποφύγετε τη<br />
σύγχυση σε περίπτωση απομάκρυνσης από το Stripwell Frame.<br />
3. Προσθέστε 125 µL Assay Buffer σε κάθε πηγαδάκι.<br />
4. Προσθέστε 20 µL Standard, Control ή δείγμα σε κάθε πηγαδάκι. Μην αναμίξετε με Assay Buffer με επαναλαμβανόμενη<br />
μεταφορά με πιπέττα. Το βήμα αυτό πρέπει να ολοκληρωθεί μέσα σε 30 λεπτά. Στροβιλίστε τις ταινίες ελαφρά για να<br />
βεβαιωθείτε ότι το δείγμα και το ρυθμιστικό διάλυμα αναμείχθηκαν.<br />
5. Επωάστε για 3 ώρες (± 10 λεπτά) στους 20–28°C.<br />
6. Παρασκευάστε το Working Substrate Solution μία ώρα πριν τη χρήση. Τοποθετήστε ένα δισκίο υποστρώματος σε κάθε<br />
απαιτούμενη φιάλη Substrate Buffer θερμοκρασίας δωματίου (βλ. τον πίνακα). Αφήστε 30–60 λεπτά για να διαλυθεί το δισκίο<br />
(ή τα δισκία). Ανακινήστε τη φιάλη έντονα για να αναμειχθεί καλά το περιεχόμενο.<br />
Βήμα πλύσης<br />
7. Παρασκευάστε την απαιτούμενη ποσότητα 1X Wash Buffer (βλ. τον πίνακα) αραιώνοντας Wash Buffer 10X με απιονισμένο<br />
νερό σε αναλογία 1:10. Φυλάξτε στους 20–28°C. Χρησιμοποιήστε το Wash Buffer 1X μέσα σε 21 μέρες από την παρασκευή.<br />
8. Αντιστρέψτε/αδειάστε τις ταινίες χειροκίνητα. Προσθέστε τουλάχιστον 250 µL 1X Wash Buffer σε κάθε πηγαδάκι και<br />
αντιστρέψτε/αδειάστε τις ταινίες χειροκίνητα. Επαναλάβετε άλλες τρεις φορές, δηλ. συνολικά τέσσερις πλύσεις. Μετά την<br />
τελευταία πλύση στεγνώστε τις ταινίες καλά σε χάρτινες πετσέτες.<br />
83
Επώαση υποστρώματος<br />
9. Προσθέστε 150 µL Working Substrate Solution σε κάθε πηγαδάκι. Μετά τη χρήση απαλλαγείτε από το υπολειπόμενο Working<br />
Substrate Solution.<br />
10. Επωάστε για 30 λεπτά (± 5 λεπτά) στους 20–28°C.<br />
Παύση/ανάγνωση<br />
11. Προσθέστε 100 µL Stop Solution σε κάθε πηγαδάκι. Προσθέστε το Stop Solution με τον ίδιο τρόπο και στα ίδια χρονικά<br />
διαστήματα που προσθέσατε το Substrate Solution.<br />
12. ∆ιαβάστε την οπτική πυκνότητα στα 405 nm. Βεβαιωθείτε ότι δεν υπάρχουν μεγάλες φυσαλίδες στα πηγαδάκια και ότι το κάτω<br />
μέρος των ταινιών είναι καθαρό. Οι ταινίες πρέπει να διαβαστούν μέσα σε 15 λεπτά από την προσθήκη του Stop Solution.<br />
13. Το λογισμικό ποσοτικής εκτίμησης με εξίσωση καμπύλης βαθμονόμησης δευτέρου βαθμού πρέπει να χρησιμοποιηθεί για την<br />
ανάλυση των αποτελεσμάτων ανάλυσης Metra BAP.<br />
Εξίσωση: y = A + Bx + Cx 2<br />
ΕΛΕΓΧΟΣ ΠΟΙΟΤΗΤΑΣ<br />
Το πιστοποιητικό ανάλυσης που υπάρχει στο κιτ αφορά τη συγκεκριμένη παρτίδα και χρησιμοποιείται για να επιβεβαιωθεί ότι τα<br />
αποτελέσματα που αποκτήθηκαν από το εργαστήριό σας είναι ίδια με αυτά που αποκτήθηκαν από την Quidel. Οι τιμές οπτικής<br />
πυκνότητας παρέχονται και χρησιμοποιούνται μόνο ως κατευθυντήρια οδηγία. Τα αποτελέσματα που λαμβάνονται από το εργαστήριό<br />
σας μπορεί να διαφέρουν.<br />
Παρέχεται το εύρος ποιοτικού ελέγχου. Οι τιμές ελέγχου προορίζονται για να επιβεβαιωθεί η εγκυρότητα της καμπύλης και τα<br />
αποτελέσματα του δείγματος. Κάθε εργαστήριο πρέπει να καθιερώνει τις δικές του παραμέτρους για αποδεκτά όρια ανάλυσης.<br />
Αν οι τιμές ελέγχου ∆ΕΝ κυμαίνονται εντός των ορίων αποδοχής του εργαστηρίου σας, τα αποτελέσματα της ανάλυσης πρέπει να<br />
θεωρηθούν αμφισβητήσιμα και τα δείγματα πρέπει να επαναληφθούν.<br />
Αν η οπτική πυκνότητα του Προτύπου F Metra BAP είναι μικρότερη από 1,0, τα αποτελέσματα πρέπει να θεωρηθούν αμφισβητήσιμα<br />
και τα δείγματα πρέπει να επαναληφθούν.<br />
ΕΡΜΗΝΕΙΑ ΑΠΟΤΕΛΕΣΜΑΤΩΝ<br />
Τα αποτελέσματα των δειγμάτων εκφράζονται ως U/L και δεν χρειάζονται διόρθωση για την αραίωση (εκτός αν το δείγμα αραιώθηκε<br />
πριν τη δοκιμασία).<br />
Στην ανάλυση Metra BAP, η 1 μονάδα αντιπροσωπεύει 1 µmol pNPP υδρολυόμενο ανά λεπτό στους 25°C σε ρυθμιστικό διάλυμα<br />
2-αμινο-2-μεθυλ-1-προπανόλης.<br />
Αντιπροσωπευτική τυπική καμπύλη<br />
Τυπικά επίπεδα BAP: 0, 2, 20, 50, 80, 140 U/L<br />
ΠΕΡΙΟΡΙΣΜΟΙ ΤΗΣ ΔΙΑΔΙΚΑΣΙΑΣ<br />
Παρεμβολή HAMA<br />
Ορισμένα άτομα έχουν αντισώματα στα αντισώματα ποντικιού (HAMA), η οποία μπορεί να προκαλέσει παρεμβολές στον<br />
ανοσοπροσδιορισμό που αφορά αντισώματα, τα οποία προέρχονται από ποντίκια. Συγκεκριμένα, έχει αναφερθεί ότι δείγματα ορού<br />
από ασθενείς που έχουν υποστεί θεραπεία ή διαγνωστικές διαδικασίες που συμπεριλαμβάνουν ένεση μονοκλωνικού αντισώματος<br />
ποντικιού μπορεί να προκαλέσουν εσφαλμένα αποτελέσματα. Τα αποτελέσματα της Metra BAP για τέτοιους ασθενείς πρέπει για<br />
το λόγο αυτό να χρησιμοποιούνται μόνο σε συνδυασμό με αποτελέσματα από κάποιες άλλες διαγνωστικές διαδικασίες και με<br />
πληροφορίες που είναι διαθέσιμες από την κλινική αξιολόγηση του ασθενούς.<br />
∆είγματα με σημαντικά αυξημένη ενεργότητα της αλκαλικής φωσφατάσης του ήπατος μπορεί να προκαλέσουν παρεκκλίνοντα υψηλά<br />
αποτελέσματα στην ανάλυση Metra BAP.<br />
Ασθενείς, που πάσχουν από τη νόσο <strong>Page</strong>t και έχουν χαμηλά επίπεδα ασθένειας, μπορεί να εμφανίζουν επίπεδα ειδικής για τα οστά<br />
αλκαλικής φωσφατάσης, που να κυμαίνονται εντός του εύρους αναφοράς της Metra BAP.<br />
84<br />
3,0<br />
2,0<br />
1,0<br />
0,0<br />
0 25 50 75 100 125 150<br />
BAP (U/L)
ΤΙΜΈΣ ΔΕΙΓΜΆΤΩΝ<br />
Έχουν οριστεί διαστήματα αναφοράς BAP για υγιείς άνδρες ηλικίας 25 ετών (n = 126), για υγιείς προεμμηνοπαυσικές γυναίκες μεταξύ<br />
25 και 44 ετών (n = 178) και για υγιείς γυναίκες μετά την εμμηνόπαυση (n = 107). Για λόγους ορισμού διαστημάτων αναφοράς, ως<br />
φυσιολογικά άτομα ορίστηκαν:<br />
� Τυπικώς υγιή, χωρίς παθήσεις των οστών, ενδοκρινικές ή χρόνιες παθήσεις<br />
� Ομαλό έμμηνο κύκλο (σε προεμμηνοπαυσικές γυναίκες)<br />
� Όχι έγκυες ή θηλάζουσες (γυναίκες)<br />
� Χωρίς να λαμβάνουν επί του παρόντος φάρμακα που είναι γνωστό ότι επηρεάζουν το μεταβολισμό των οστών.<br />
Οι τιμές μπορεί να επηρεάζονται από παράγοντες όπως χαμηλή παραγωγή οιστρογόνων, χαμηλή πρόσληψη ασβεστίου ή χαμηλή<br />
σωματική δραστηριότητα. 8 Η ανεπάρκεια οιστρογόνων σε γυναίκες μετά την εμμηνόπαυση μπορεί να έχει ως αποτέλεσμα την<br />
αυξημένη ανακύκλωση οστών. 3,4 Κάθε εργαστήριο θα πρέπει να καθορίσει το δικό του διάστημα τιμών αναφοράς. Το εύρος<br />
εκφράζεται ως μη παραμετρικά διαστήματα αναφοράς (διαστήματα εμπιστοσύνης 90%).<br />
Ηλικία (Έτη) Εύρος (U/L) Μέσος<br />
Γυναίκες 25 – 44 Προεμμηνοπαυσικές 11,6 – 29,6 18,3<br />
Γυναίκες ≥ 45 Μετεμμηνοπαυσικές 14,2 – 42,7 25,0<br />
Aντρες ≥ 25 15,0 – 41,3 23,2<br />
ΧΑΡΑΚΤΗΡΙΣΤΙΚΑ ΑΠΟΔΟΣΗΣ<br />
Προδιαγραφές αντισώματος<br />
Το αντίσωμα της ειδικής για τα οστά αλκαλικής φωσφατάσης παρουσιάζει επιλεκτική, υψηλή συγγένεια προς την ισομορφή που είναι<br />
ειδική για τα οστά, χαμηλή διαντιδραστικότητα με την ηπατική μορφή αλκαλικής φωσφατάσης και αμελητέα πρόσδεση με εντερικά<br />
και ισοένζυμα του πλακούντα.<br />
Ισοένζυμο AP % Αντιδραστικότητα<br />
Οστό 100<br />
Ήπαρ 3 – 8<br />
Πλακούντιο 0<br />
Εντερικό 0,4<br />
Ευαισθησία<br />
Το ελάχιστο όριο ανίχνευσης της ανάλυσης Metra BAP είναι 0,7 U/L, το οποίο καθορίζεται από το ανώτατο όριο 3 SD σε μελέτη<br />
ακριβείας μηδενικού προτύπου.<br />
Ανάκτηση – Ανάκτηση Spike<br />
Η ανάκτηση του spike (=επιπλέον ποσότητα που προστίθεται στην ήδη υπάρχουσα ποσότητα του δείγματος) καθορίζεται<br />
προσθέτοντας μία γνωστή ποσότητα καθαρισμένης BAP στα δείγματα ορού με διαφορετικά επίπεδα ενδογενούς BAP. Τα τυπικά<br />
αποτελέσματα προκύπτουν μετά την προσθήκη επιπλέον ποσότητας στην ήδη υπάρχουσα στα δείγματα ορού με χαμηλές, μέτριες<br />
και υψηλές συγκεντρώσεις BAP και αναλύοντας εις τριπλούν.<br />
Ενδογενής (U/L) Πρόσθετη (U/L) Παρατηρημένη (U/L) Ανάκτηση (%)<br />
13,4 15,7 29,1 99<br />
17,6 37,5 55,3 99<br />
27,2 57,2 88,1 106<br />
Ανάκτηση - Γραμμικότητα<br />
Η γραμμικότητα καθορίζεται με διαδοχική αραίωση δειγμάτων και σύγκριση ανάμεσα στις παρατηρούμενες και αναμενόμενες τιμές.<br />
Τα τυπικά αποτελέσματα δίνονται παρακάτω.<br />
∆είγμα Συντελεστής αραίωσης Παρατηρημένη (U/L) Αναμενόμενη (U/L) Ανάκτηση (%)<br />
1 neat 108,5 - -<br />
1:2 51,1 54,2 94<br />
1:4 25,8 27,1 99<br />
1:6 18,0 18,1 99<br />
2 neat 39,1 - -<br />
1:2 20,1 19,5 103<br />
1:4 10,3 9,8 105<br />
1:6 6,7 6,5 103<br />
3 neat 58,4 - -<br />
1:2 29,9 29,2 102<br />
1:4 15,7 14,6 108<br />
1:6 9,7 9,7 100<br />
85
Ακρίβεια<br />
Η ακρίβεια εντός του ιδίου κύκλου προσδιορίστηκε για ≥ 21 επαναλήψεις 3 δειγμάτων σε 3 πλάκες σε κάθε μία από 3 παρτίδες<br />
κιτ (συνολικά 9 πλάκες). Η ακρίβεια μεταξύ των κύκλων προσδιορίστηκε αναλύοντας 3 δείγματα σε 6 ξεχωριστές πλάκες σε κάθε<br />
μία από 3 παρτίδες κιτ (συνολικά 18 πλάκες). Τα τυπικά αποτελέσματα δίνονται παρακάτω.<br />
∆είγμα BAP (U/L BAP) Εντός του κύκλου 1 CV% Μεταξύ των κύκλων 2 CV%<br />
1 12 5,8 5,2<br />
2 35 3,9 7,6<br />
3 100 5,2 5,0<br />
1 n = 21 2 n = 6 κύκλοι<br />
Παρεμβαλλόμενα υποστρώματα<br />
Τα παρακάτω υποστρώματα δοκιμάστηκαν στις προσδιορισμένες συγκεντρώσεις και βρέθηκε ότι δεν παρεμβάλλονται στην ανάλυση.<br />
Υπόστρωμα Συγκέντρωση<br />
Αιμοσφαιρίνη 500 mg/dL<br />
Χολερυθρίνη 25 mg/dL<br />
Τριγλυκερίδια 1.420 mg/dL<br />
Συνολική πρωτεΐνη 6,0 g/dL †<br />
Συνολική πρωτεΐνη 15,6 g/dL †<br />
Συνολική πρωτεΐνη 6,0 g/dL ‡<br />
Συνολική πρωτεΐνη 15,6 g/dL ‡<br />
† Πρωτεΐνη με νερό<br />
‡ Πρωτεΐνη με BAP (συγκέντρωση BAP= 43,6 U/L)<br />
Παρεμβολές φαρμάκων<br />
Προστέθηκαν διαφορετικές συγκεντρώσεις φαρμάκων σε τρεις ξεχωριστές δεξαμενές ορού, που περιείχαν περίπου 35, 70,<br />
και 105 U/L BAP και αναλύθηκαν εις τριπλούν. Τα φάρμακα και οι υψηλότερες συγκεντρώσεις που ελέγχθηκαν ήταν:<br />
Ουσία Υψηλότερη συγκέντρωση<br />
Etidronate 350 µg/mL<br />
Οιστρογόνα 100 µg/mL<br />
Ibuprofen 150 µg/mL<br />
Acetominophen 350 µg/mL<br />
Ασπιρίνη 350 µg/mL<br />
Καλσιτονίνη- ανθρώπου 80 µg/mL<br />
Καλσιτονίνη- σολομού 80 µg/mL<br />
Ασβέστιο 500 µg/mL<br />
Μείγμα οιστραδιόλης norethindrone/ethynil 3 mg/mL<br />
(αντισυλληπτικό για λήψη από το στόμα)<br />
Βιταμίνη D 400 IU/mL<br />
Ακρίβεια<br />
Έγιναν συγκριτικές μελέτες για να εκτιμηθούν οι συσχετίσεις ανάμεσα στις μετρήσεις της ειδικής για τα οστά αλκαλικής φωσφατάσης<br />
στον ορό (BAP), που ελήφθησαν με χρήση της ανάλυσης Metra BAP, και στα αποτελέσματα, που ελήφθησαν με χρήση τριών μεθόδων<br />
μέτρησης της συνολικής αλκαλικής φωσφατάσης (TAP) ή της BAP που κυκλοφορούν στην αγορά Οι μελέτες έγιναν σε ανεξάρτητο<br />
κλινικό ερευνητικό περιβάλλον, χρησιμοποιώντας ορούς 114 ασθενών που πάσχουν από τη νόσο <strong>Page</strong>t και 464 υγιών ατόμων.<br />
Η πρώτη συγκριτική μέθοδος ήταν μία χρωματομετρική τεχνική για τη μέτρηση της TAP. Ο συντελεστής συσχέτισης (r) ανάμεσα στη<br />
χρωματομετρική μέθοδο και στην ανάλυση Metra BAP ήταν 0,99. Η δεύτερη συγκριτική μέθοδος ήταν μία μέθοδος ηλεκτροφόρησης<br />
για τον προσδιορισμό των επιπέδων του ισοενζύμου BAP (r = 0,99). Η τρίτη συγκριτική μέθοδος ήταν μία ανοσοραδιομετρική<br />
ανάλυση για τη μέτρηση της BAP (r = 0,99). Από τους 114 ασθενείς, στους οποίους έχει διαγνωστεί η νόσος <strong>Page</strong>t, οι 101<br />
παρουσίαζαν τιμές υψηλότερες από το ανώτατο όριο των διαστημάτων αναφοράς της ανάλυσης Metra BAP. ∆εκατρείς ασθενείς<br />
παρουσίαζαν τιμές χαμηλότερες από το ανώτατο όριο των διαστημάτων αναφοράς.<br />
ΚΛΙΝΙΚΕΣ ΜΕΛΕΤΕΣ<br />
Χρήση της Metra BAP για παρακολούθηση της αποτελεσματικότητας της αντιαπορροφητικής θεραπείας<br />
στην οστεοπόρωση<br />
Μία πολυκεντρική, τυχαιοποιημένη, ελεγχόμενη μελέτη διεξάχθηκε με επιτυχία για να εδραιωθεί η ασφάλεια και η<br />
αποτελεσματικότητα της ανάλυσης BAP στην παρακολούθηση μεταβολών των συγκεντρώσεων BAP στον ορό, που σχετίζονται με την<br />
αντιαπορροφητική θεραπεία αμινο-φωσφονικών αλενδρονικών). Τα άτομα, που επιλέχθηκαν από μία μεγαλύτερη μελέτη σχετικά<br />
με την αποτελεσματικότητα των αλενδρονικών στη θεραπεία της οστεοπόρωσης, 7 ήταν γυναίκες μετά την εμμηνόπαυση ηλικίας<br />
45 έως 84 ετών (μέσος όρος 64 ± 7 έτη), με διαγνωσμένη οστεοπόρωση (βασισμένη στην κλινική εικόνα ή με ποσότητα αναφοράς<br />
της πυκνότητας ανόργανων αλάτων του οσφυϊκού οστού [LSBMD] χαμηλότερη από 2,5 τυπικές αποκλίσεις κάτω από το μέσο όρο των<br />
ώριμων προεμμηνοπαυσικών γυναικών). Πριν την έναρξη της μελέτης, τα άτομα που πληρούσαν τις προϋποθέσεις τυχαιοποιήθηκαν<br />
ως προς τη λήψη είτε 10 mg αλενδρονικών και 500 mg ασβεστίου ημερησίως (ALN), είτε placebo και 500 mg ασβεστίου ημερησίως<br />
(CTL). Τα δείγματα ορού από όλα τα άτομα λήφθηκαν κατά την έναρξη, στους 3, 6 και 12 μήνες.<br />
86
Η μέση (± 1SD) συγκέντρωση BAP κατά την έναρξη (14,6 ± 5,4 έναντι 14,6 ± 4,6, p = 0,900) και της LSBMD (0,74 ± 0,10 έναντι<br />
0,75 ± 0,09, p = 0,751) παρουσίαζαν παρόμοιες τιμές για τις ομάδες ALN και CTL. Οι κατανομές των τιμών BAP κατά την έναρξη στις<br />
ομάδες ALN και CTL απεικονίζονται στο ακόλουθο διάγραμμα ανάλογα με τον πληθυσμό της μελέτης.<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
< 4,0<br />
4,0 – 5,9<br />
Κατανομή των επιπέδων BAP κατά την έναρξη<br />
6,0 – 7,9<br />
8,0 – 9,9<br />
10,0 – 11,9<br />
Η BAP ήταν σημαντικά χαμηλότερη στην ALN από ότι στην CTL στους 3 (9,6 ± 3,5 έναντι 13,4 ± 4,0, p
88<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
Κατανομή της εκατοστιαίας μεταβολής στα επίπεδα BAP μετά από<br />
θεραπεία 12 μηνών με αλενδρονικά (ALN) ή Ασβέστιο (CTL)<br />
< -70,0%<br />
-70,0 -60,1%<br />
-60,0 -50,1%<br />
-50,0 -40,1%<br />
-40,0 -30,1%<br />
Στους 12 μήνες, τα άτομα της ALN κέρδισαν LSBMD συγκριτικά με τα άτομα της CTL (p < 0,00001), όπως φαίνεται στον παρακάτω<br />
πίνακα.<br />
Μεταβολές στη LSBMD (Μέσος όρος ± Τυπική απόκλιση)<br />
n Ποσότητα κατά την έναρξη (g/cm 2 ) 12 μήνες (g/cm 2 ) ∆ (%)<br />
CTL 159 0,75 ± 0,09 0,74 ± 0,09 -0,6 ± 3,4<br />
ALN 121 0,74 ± 0,10 0,79 ± 0,10 5,5 ± 4,1<br />
Τα αποτελέσματα αυτά δείχνουν ότι η ανάλυση Metra BAP είναι ασφαλής και αποτελεσματική για την παρακολούθηση της<br />
αντιαπορροφητικής επίδρασης της θεραπείας αμινο-διφωσφινικών (αλενδρονικών) στα άτομα που έχει διαγνωστεί οστεοπόρωση.<br />
Χρήση της Metra BAP στην παρακολούθηση της ορμονικής αντιαπορροφητικής θεραπείας και στην<br />
πρόβλεψη της σκελετικής ανταπόκρισης (Bone Mineral Density- Πυκνότητα ανόργανων αλάτων των<br />
οστών) σε γυναίκες μετά την εμμηνόπαυση<br />
Παρακολούθηση θεραπείας:<br />
Μία πολυκεντρική, τυχαιοποιημένη ελεγχόμενη μελέτη διεξάχθηκε με επιτυχία για να εδραιωθεί η ασφάλεια και αποτελεσματικότητα<br />
της ανάλυσης Metra BAP στην παρακολούθηση μεταβολών της συγκέντρωσης BAP στον ορό, που σχετίζονται με την<br />
αντιαπορροφητική θεραπεία οιστρογόνου/προγεστίνης. Η αυξημένη ανακύκλωση οστών και η σημαντική απώλεια οστού συχνά<br />
σχετίζονται με τη μετεμμηνοπαυσική ανεπάρκεια οιστρογόνου. Η αντικατάσταση οιστρογόνου έχει καταδειχθεί ότι μειώνει<br />
αποτελεσματικά την ανακύκλωση των οστών και προστατεύει την υπάρχουσα οστική μάζα. 3,6 Τα άτομα ήταν γυναίκες μετά την<br />
εμμηνόπαυση ηλικίας 45 έως 64 ετών (Μ.Ο. 56 ± 4 έτη), που έχουν υποστεί φυσική ή χειρουργική εμμηνόπαυση στο διάστημα των<br />
10 τελευταίων ετών. Στη γραμμή αναφοράς, άτομα που πληρούν τις προϋποθέσεις, τυχαιοποιήθηκαν σε ομάδες ενεργής θεραπείας<br />
(HRT): Premarin® (0,625 mg ημερησίως) με placebo προγεστίνης, Premarin® (0,625 mg ημερησίως) και ενεργή προγεστίνη<br />
(Provera® 2,5 mg ανά ημέρα συνεχώς, Provera® 10 mg ανά ημέρα κυκλικά ή προγεστερόνη σε σκόνη 200 mg ανά ημέρα κυκλικά)<br />
ή στην ομάδα ελέγχου (CTL): placebo οιστρογόνου και προγεστίνης. ∆είγματα ορού ελήφθησαν από όλα τα άτομα κατά την έναρξη<br />
και στους 12 μήνες.<br />
Η μέση (± 1SD) συγκέντρωση BAP κατά την έναρξη (20,7 ± 7,6 έναντι 20,3 ± 6,8U/L, p = 0,704) και της LSBMD (0,97 ± 0,17<br />
έναντι 0,97 ± , 0,15 g/cm 2 , p = 0,970) ήταν ίδιες για CTL και HRT. Οι κατανομές των τιμών BAP κατά την έναρξη στις ομάδες HRT και<br />
CTL απεικονίζονται στο ακόλουθο διάγραμμα ανάλογα με τον πληθυσμό της μελέτης.<br />
-30,0 -20,1%<br />
-20,0 -10,1%<br />
-10,0 -0,1%<br />
0,0 9,9%<br />
10,0 19,9%<br />
≥ 20,0%
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
≤ 9,0<br />
9,1 – 11<br />
Κατανομή των επιπέδων BAP κατά την έναρξη<br />
11,1 – 13<br />
13,1 – 15<br />
15,1 – 17<br />
17,1 – 19<br />
Η BAP ήταν σημαντικά χαμηλότερη στην ομάδα HRT συγκριτικά με τη CTL στους 12 μήνες (13,3 ± 5,0 έναντι 21,9 ± 7,9 U/L,<br />
p < 0,00001). Οι κατανομές των τιμών BAP μετά από 12 μήνες στις ομάδες HRT και CTL απεικονίζονται στο παρακάτω διάγραμμα.<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
≤ 9,0<br />
Κατανομή των επιπέδων BAP μετά από θεραπεία 12 μηνών<br />
με οιστρογόνο/προγεστίνη (HRT) ή placebo (CTL)<br />
9,1 – 11<br />
11,1 – 13<br />
13,1 – 15<br />
15,1 – 17<br />
Η μέση (± 1SD) συγκέντρωση BAP στα άτομα της CTL αυξήθηκε ελαφρά από την τιμή κατά την έναρξη σε +9,8% (± 33,2%) στους<br />
12 μήνες (p = 0,08) ενώ οι συγκεντρώσεις BAP στα άτομα της HRT μειώθηκαν από την τιμή κατά την έναρξη σε –32,4 (± 21,5%)<br />
στους 12 μήνες (p < 0,00001). Τα άτομα της ομάδας HRT ήταν πιο πιθανό από τα άτομα της CTL να εμφανίσουν απώλειες BAP,<br />
που ξεπερνούν την ελάχιστη εκατοστιαία μεταβολή 12 , με 73,3% των ατόμων της HRT και 3,4% των ατόμων της CTL να εμφανίζουν<br />
απώλεια ≥ 25% στους 12 μήνες. Οι κατανομές της εκατοστιαίας μεταβολής από την τιμή κατά την έναρξη στις τιμές BAP μετά από<br />
12 μήνες στις ομάδες HRT και CTL απεικονίζονται στο παρακάτω διάγραμμα.<br />
19,1 – 21<br />
U/L BAP<br />
17,1 – 19<br />
19,1 – 21<br />
U/L BAP<br />
21,1 – 23<br />
21,1 – 23<br />
23,1 – 25<br />
23,1 – 25<br />
25,1 – 27<br />
25,1 – 27<br />
27,1 – 29<br />
27,1 – 29<br />
CTL<br />
HRT<br />
> 29<br />
CTL<br />
HRT<br />
> 29<br />
89
90<br />
30,0%<br />
25,0%<br />
20,0%<br />
15,0%<br />
10,0%<br />
Κατανομή της εκατοστιαίας μεταβολής στα επίπεδα BAP μετά από θεραπεία<br />
12 μηνών με οιστρογόνο/προγεστίνη (HRT) ή placebo (CTL)<br />
< -70,0%<br />
-70,0 -60,1%<br />
-60,0 -50,1%<br />
-50,0 -40,1%<br />
-40,0 -30,1%<br />
Στους 12 μήνες, τα άτομα της ομάδας HRT κέρδισαν LSBMD σε σχέση με τα άτομα της CTL (p
15,0%<br />
10,0%<br />
5,0%<br />
0,0%<br />
-5,0%<br />
-10,0%<br />
Μελέτη HRT- Γραμμική παλινδρόμηση της εκατοστιαίας μεταβολής<br />
των LSBMD και BAP από την ποσότητα αναφοράς στους 12 μήνες<br />
-15,0%<br />
-60,0% -40,0% -20,0%<br />
Η ανάλυση του πίνακα παράπλευρων επιπτώσεων (Contingency) έδειξε ότι μία μείωση της BAP κατά ≥ 25% στους 12 μήνες<br />
σχετίζεται σημαντικά (p < 0,0001) με τη θετική απόκριση του σκελετού στη HRT (αύξηση της BMD) στους 12 μήνες. Τα διωνυμικά<br />
(προσέγγιση δευτέρου βαθμού) διαστήματα εμπιστοσύνης 85% για την ευαισθησία και την εξειδίκευση χρησιμοποίησης μίας μείωσης<br />
25% της BAP για την πρόβλεψη της ανταπόκρισης στη HRT είναι:<br />
Ευαισθησία = 77% (95% CI 75%, 82%). Εξειδίκευση= 61% (95% CI 41%, 78%).<br />
Τα αποτελέσματα αυτά δείχνουν ότι η εκατοστιαία μεταβολή της συγκέντρωσης BAP μπορεί να χρησιμοποιηθεί στην πρόβλεψη του<br />
βαθμού ανταπόκρισης του σκελετού (BMD) στη θεραπεία HRT.<br />
ΒΟΗΘΕΙΑ<br />
Για παραγγελίες ή τεχνική υποστήριξη, επικοινωνήστε με τον αντιπρόσωπο Quidel στα τηλέφωνα +1 408-616-4301, ∆ευτέρα<br />
έως Παρασκευή από 8:00 π.μ. έως 5:00 μ.μ., ώρα ∆υτικής Ακτής Ηνωμένων Πολιτειών. Παραγγελίες γίνονται επίσης με fax στο<br />
+1 408-616-4310.<br />
Για υπηρεσίες εκτός των ΗΠΑ παρακαλώ επικοινωνήστε με τον τοπικό διανομέα.<br />
y = -0,060x + 0,011<br />
r = 0,51<br />
p < 0,001<br />
0,0% 20,0% 40,0% 60,0%<br />
91
REFERENCES<br />
LITERATURVERWE<strong>IS</strong>E<br />
BIBLIOGRAFIA<br />
RÉFÉRENCES<br />
REFERENCIAS<br />
BIBLIOGRAFIA<br />
REFERENCER<br />
REFERENSER<br />
ΒΙΒΛΙΟΓΡΑΦΙΑ<br />
1. Price CP. Multiple forms of human serum alkaline phosphatase: detection and quantitation. Ann.Clin.Biochem. 1993;30:<br />
355-372.<br />
2. Whyte MP. Hypophosphatasia and the role of alkaline phosphatase in skeletal mineralization. Endocr.Rev. 1994;15:439-461.<br />
3. Riggs BL. Overview of osteoporosis. West.J.Med. 1991;154:63-77.<br />
4. Garnero P, Delmas PD. Clinical usefulness of markers of bone remodeling in osteoporosis. In: Meunier PJ (ed.). Osteoporosis:<br />
Diagnosis and management. London: Martin Dunitz, 1998:79-101.<br />
5. Singer FR, Roodman GD. <strong>Page</strong>t’s disease of bone. In: Bilezikian JP, Raisz LG, Rodan GA (ed.). Principles of bone biology.<br />
San Diego: Academic Press, 1996:969-977.<br />
6. Consensus Development Statement. Who are candidates for prevention and treatment for osteoporosis? Osteoporos.Int.<br />
1997;7:1-6.<br />
7. Liberman UA, Weiss SR, Bröll J, et al. Effect of oral alendronate on bone mineral density and the incidence of fractures in<br />
postmenopausal osteoporosis. N.Engl.J.Med. 1995;333:1437-1443.<br />
8. Price CP, Thompson PW. The role of biochemical tests in the screening and monitoring of osteoporosis. Ann.Clin.Biochem.<br />
1995;32:244-260.<br />
9. Meunier PJ, Vignot E. Therapeutic strategy in <strong>Page</strong>t’s disease of bone. Bone 1995;17(Suppl.):489S-491S.<br />
10. Gomez B, Jr., Ardakani S, Ju J, et al. Monoclonal antibody assay for measuring bone-specific alkaline phosphatase activity<br />
in serum. Clin.Chem. 1995;41:1560-1566.<br />
11. Pedrazzoni M, Alfano FS, Girasole G, et al. Clinical observations with a new specific assay for bone alkaline phosphatase:<br />
A cross-sectional study in osteoporotic and pagetic subjects and a longitudinal evaluation of the response to ovariectomy,<br />
estrogens, and bisphosphonates. Calcif.Tissue Int. 1996;59:334-338.<br />
12. Garnero P, Shih WJ, Gineyts E, Karpf DB, Delmas PD. Comparison of new biochemical markers of bone turnover in late<br />
postmenopausal osteoporotic women in response to alendronate treatment. J.Clin.Endocrinol.Metab. 1994;79:1693-1700.<br />
13. Reid IR, Ames RW, Evans MC, Gamble GD, Sharpe SJ. Long-term effects of calcium supplementation on bone loss and fractures<br />
in postmenopausal women: A randomized controlled trial. Am.J.Med. 1995;98:331-335.<br />
14. Fraser CG. Data on biological variation: essential prerequisites for introducing new procedures? [Editorial] Clin.Chem.<br />
1994;40:1671-1673.<br />
15. Centers for Disease Control. Recommendations for prevention of HIV transmission in health-care settings. MMWR 1987;36<br />
(suppl no. 2S):001.<br />
92
���<br />
�� ���<br />
Manufactured by<br />
Hergestellt von<br />
Fabriqué par<br />
Fabbricato da<br />
Fabricado por<br />
Fabricado por<br />
Tillverkare<br />
Fremstillet a<br />
Κατασκευαστής<br />
��� ���� � ������ ��� ��� ���<br />
������ ����������� ����<br />
������� �������<br />
���������������������� ��<br />
������� � ���<br />
����� �������<br />
����������������<br />
������ �����������<br />
��������� ������������<br />
����� �������� �����<br />
��� ������ �� ����� ���<br />
Consult Instructions for Use<br />
Gebrauchsanweisung beachten<br />
Consultare le istruzioni per l’uso<br />
Consulter la notice d’emploi<br />
Consulte las instrucciones de uso<br />
Consulte as instruções de utilização<br />
Benyt brugsanvisninger<br />
Läs bruksanvisningen<br />
Συμβουλευθείτε τις οδηγίες χρήσης<br />
For In Vitro Diagnostic Use<br />
In Vitro Diagnosticum<br />
Usage In Vitro<br />
Per Uso Diagnostico In Vitro<br />
Para Uso Diagnóstico In Vitro<br />
Utilizar Apenas Em Diagnóstico In Vitro<br />
För in-vitro diagnostiskt bruk<br />
Til in Vitro diagnosticering<br />
In vitro διαγνωστική ιατρική συσκευή<br />
�<br />
�� ���<br />
���<br />
Authorized Representative<br />
Bevollmächtigter<br />
Représentant agréé<br />
Rappresentante autorizzato<br />
Representante autorizado<br />
Representante autorizado<br />
Auktoriserad representant<br />
Autoriseret repræsentan<br />
Εξουσιοδοτημένος αντιπρόσωπος<br />
στην Ευρωπαϊκή Κοινότητα<br />
Temperature Limit<br />
Temperaturlimit<br />
Limite de température<br />
Limite di temperatura<br />
Límite de temperatura<br />
Limite de temperatura<br />
Temperaturgränser<br />
Temperaturgrænse<br />
Όριο θερμοκρασίας<br />
���<br />
����� ���������