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Bolet%C3%ADn-63-Julio-2016 Bolet%C3%ADn-63-Julio-2016
síntesis in situ de las auxinas en la región formadora de raíces adv enticias es minoritaria, sino que domina el transporte hasta esa zona, Aurelio Gómez-Cadenas (U Jaume I, Castellón) mostró que el transporte de ABA desde el tallo de cítricos también es esencial para que las raíces adapten su f isiología a las condiciones de sequía que parecen ser percibidas de forma preponderante por los órganos de la parte aérea [9]. De todas formas, por lov isto en la sesión dedicada a la germinación de semillas, el éxito en la comprensión de la acción hormonal probablemente v endrá de la mano de combinar la inf ormación generada en distintas especies vegetales. Por ejemplo, Mª Carmen Rodríguez-Gacio (U. de Santiago de Compostela) mostró cómo la disponibilidad de nitrato af ecta a la expresión de genes del metabolismo y señalización de ABA y giberelinas en semillas de Sysimbrium officinale [10], mientras que Luis Oñate-Sánchez (CBGP, Madrid) explicó su trabajo sobre redes transcripcionales que regulan la germinación de semillas de Arabidopsis actuando de f orma específ ica en el endospermo o en el embrión, a trav és de la activ idad diferencial de las proteínas DELLA en cada tejido [11]. El Grupo de Fitohormonas seguirá siendo lo que es. En la última sesión de la Reunión dedicamos un momento a recordar los inicios, no y a del Grupo de Fitohormonas ni de nuestros simposios, sino de la inv estigación contemporánea en Fitorhormonas en nuestro país. Como se ha recordado en otras ocasiones, todo comenzó en 1980 con la publicación de dos artículos pioneros en la rev ista Planta, por parte de José Luis García Martínez y Juan Carbonell, entonces investigadores del Instituto de Agroquímicay Tecnología de Alimentos del CSIC en Valencia, en los que abordaban la participación de las hormonas (¡clásicas!) en la f ructif icación del guisante [12, 13]. Esta aportación constituía la primera aproximación sistemática y seria en España al papel de las hormonas en un proceso de desarrollo, y a que, tal y como ellos mismos razonaban en la discusión del artículo “These experiments [la inducción de la fructif icación por giberelinas en ausencia de polinización] provide a preliminary indication of the type of plant-growth substances which can regulate the natural process of fruit development in peas.” [13]. Esta primera aportación de ambos no quedó en absoluto en una anécdota. Por una parte, José Luis consagró sus esfuerzos a entender cómo se regulan los niv eles endógenos de las giberelinas, habiendo encontrado y estudiando la regulación por luz y temperatura de los genes que codifican las enzimas del metabolismo de giberelinas en v arias especies v egetales [14-20], y por otra parte Juan persiguió entender los condicionantes del destino del ov ario que lo ponen ante el dilema de un proceso de senescencia –que es el programa establecido por def ecto– y de un rápido crecimiento como f ruto, que es su objetivo fisiológico. Durante el camino contribuy ó a mantener la moda de las poliaminas en el Grupo de Fitohormonas [21-25], hasta encontrar el mecanismo molecular por el que la termoespermina regula la dif erenciación del xilema [26, 27]. Así como el Grupo de Fitohormonas se creó prácticamente de la nada, y se ha mantenido por la v oluntad de pioneros como Juan, José Luis, y Manuel Acosta (que aprovechó unos minutos de la Reunión para despedirse formalmente por su próxima jubilación), la continuación fiel al espíritu de los f undadores depende y a de una nuev a generación f ormada precisamente en sus laboratorios y los de sus contemporáneos, y la gran baza que se pretende jugar es la de ampliar los horizontes a nuev os abordajes, planteamientos renov ados, y a la incorporación de investigadores prov enientes de otras áreas que no han podido esquiv ar la presencia ubicua de las Fitohormonas en toda la v ida de las plantas. En otras palabras, la dinámica que surge del diálogo entre la permanencia y el cambio. Desde aquí estáis todos inv itados a comprobarlo en el XV Simposio de Fitohormonas que organizará Ana Caño (CRAG, Barcelona) en 2018. Miguel A. Blázquez Instituto de Biología Molecular y Celular de Plantas (CSIC – Universidad Politécnica de Valencia) Ref erencias 1. Moubay idin, L. and L. Ostergaard, Dynamic control of auxin distribution imposes a bilateral-to-radial symmetry switch during gynoecium development. Curr Biol, 2014. 24(22): p. 2743-8. 2. Martinez-Fernandez, I., et al., The effect of NGATHA altered activity on auxin signaling pathways within the Arabidopsis gynoecium. Front Plant Sci, 2014. 5: p. 210. 3. Castillo, M.C., et al., Inactivation of PYR/PYL/RCAR ABA receptors by tyrosine nitration may enable rapid inhibition of ABA signaling by nitric oxide in plants. Sci Signal, 2015. 8(392): p. ra89. 4. Albertos, P., et al., S-nitrosylation triggers ABI5 degradation to promote seed germination and seedling growth. Nat Commun, 2015. 6: p. 8669. 80
5. Irigoy en, M.L., et al., Targeted degradation of abscisic acid receptors is mediated by the ubiquitin ligase substrate adaptor DDA1 in Arabidopsis. Plant Cell, 2014. 26(2): p. 712-28. 6. Campos, L., et al., Transgenic tomato plants overexpressing tyramine N- hydroxycinnamoyltransferase exhibit elevated hydroxycinnamic acid amide levels and enhanced resistance to Pseudomonas syringae. Mol Plant Microbe Interact, 2014. 27(10): p. 1159-69. 7. Campos, L., et al., Salicylic acid and gentisic acid induce RNA silencing-related genes and plant resistance to RNA pathogens. Plant Physiol Biochem, 2014. 77: p. 35-43. 8. Villacorta-Martin, C., et al., Gene expression profiling during adventitious root formation in carnation stem cuttings. BMC Genomics, 2015. 16: p. 789. 9. Manzi, M., et al., Root ABA Accumulation in Long-Term Water-Stressed Plants is Sustained by Hormone Transport from Aerial Organs. Plant Cell Physiol, 2015. 56(12): p. 2457-66. 10. Carrillo-Barral, N., et al., Nitrate affects sensu-stricto germination of after-ripened Sisymbrium officinale seeds by modifying expression of SoNCED5, SoCYP707A2 and SoGA3ox2 genes. Plant Sci, 2014. 217- 218: p. 99-108. 11. Rombola-Caldentey, B., et al., Arabidopsis DELLA and two HD-ZIP transcription factors regulate GA signaling in the epidermis through the L1 box cis-element. Plant Cell, 2014. 26(7): p. 2905-19. 12. Carbonell, J. and J.L. Garcia-Martinez, Fruit-set of unpollinated ovaries of Pisum sativum L. : Influence of vegetative parts. Planta, 1980. 147(5): p. 444-50. 13. Garcia-Martinez, J.L. and J. Carbonell, Fruit-set of unpollinated ovaries of Pisum sativum L. : Influence of plant-growth regulators. Planta, 1980. 147(5): p. 451-6. 14. Fagoaga, C., et al., Engineering of gibberellin levels in citrus by sense and antisense overexpression of a GA 20- oxidase gene modifies plant architecture. J Exp Bot, 2007. 58(6): p. 1407-20. 15. Garcia-Martinez, J.L. and J. Gil, Light Regulation of Gibberellin Biosynthesis and Mode of Action. J Plant Growth Regul, 2001. 20(4): p. 354-368. 16. Garcia-Martinez, J.L., et al., Phytochrome Regulation of the Response to Exogenous Gibberellins by Epicotyls of Vigna sinensis. Plant Physiol, 1987. 85(1): p. 212-6. 17. Garcia-Martinez, J.L., et al., Isolation and transcript analysis of gibberellin 20-oxidase genes in pea and bean in relation to fruit development. Plant Mol Biol, 1997. 33(6): p. 1073-84. 18. Gil, J. and J.L. García-Martínez, Light regulation of gibberellin A1 content and expression of genes coding for GA 20- oxidase and GA 3b-hydroxylase in etiolated pea seedlings. Physiol. Plant, 2000. 108: p. 223-229. 19. Martínez-García, J.F., C.M. Santes, and J.L. García-Martínez, The end-of.day farred irradiation increases gibberellin A1 content in cowpea (Vigna sinensis) epicotyls by reducing its inactivation. Physiol Plant, 2000. 108: p. 426-434. 20. Stav ang, J.A., et al., Hormonal regulation of temperature-induced growth in Arabidopsis. Plant J, 2009. 60(4): p. 589-601. 21. Carbonell, J. and J.L. Navarro, Correlation of spermine levels with ovary senescence and with fruit set and development in Pisum sativum L. Planta, 1989. 178: p. 482-487. 22. Perez-Amador, M.A. and J. Carbonell, Arginine Decarboxylase and Putrescine Oxidase in Ovaries of Pisum sativum L. (Changes during Ovary Senescence and Early Stages of Fruit Development). Plant Physiol, 1995. 107(3): p. 865-872. 23. Alabadi, D., et al., Arginase, Arginine Decarboxylase, Ornithine Decarboxylase, and Polyamines in Tomato Ovaries (Changes in Unpollinated Ovaries and Parthenocarpic Fruits Induced by Auxin or Gibberellin). Plant Phy siol, 1996. 112(3): p. 1237-1244. 24. Panicot, M., et al., A polyamine metabolon involving aminopropyl transferase complexes in Arabidopsis. Plant Cell, 2002. 14(10): p. 2539-51. 25. Carbonell, J. and M.A. Blázquez, Regulatory mechanis ms of polyamine biosynthesis in plants. Genes Genomics, 2009. 31: p. 107-118. 26. Muñiz, L., et al., ACAULIS5 controls Arabidopsis xylem specification through the prevention of premature cell death. Dev elopment, 2008. 135(15): p. 2573-82. 27. Vera-Sirera, F., et al., A bHLH-Based Feedback Loop Restricts Vascular Cell Proliferation in Plants. Dev Cell, 2015. 35(4): p. 432-43. 81
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5. Irigoy en, M.L., et al., Targeted degradation<br />
of abscisic acid receptors is mediated by<br />
the ubiquitin ligase substrate adaptor DDA1<br />
in Arabidopsis. Plant Cell, 2014. 26(2): p.<br />
712-28.<br />
6. Campos, L., et al., Transgenic tomato<br />
plants overexpressing tyramine N-<br />
hydroxycinnamoyltransferase exhibit<br />
elevated hydroxycinnamic acid amide levels<br />
and enhanced resistance to Pseudomonas<br />
syringae. Mol Plant Microbe Interact, 2014.<br />
27(10): p. 1159-69.<br />
7. Campos, L., et al., Salicylic acid and<br />
gentisic acid induce RNA silencing-related<br />
genes and plant resistance to RNA<br />
pathogens. Plant Physiol Biochem, 2014.<br />
77: p. 35-43.<br />
8. Villacorta-Martin, C., et al., Gene<br />
expression profiling during adventitious root<br />
formation in carnation stem cuttings. BMC<br />
Genomics, 2015. 16: p. 789.<br />
9. Manzi, M., et al., Root ABA Accumulation in<br />
Long-Term Water-Stressed Plants is<br />
Sustained by Hormone Transport from<br />
Aerial Organs. Plant Cell Physiol, 2015.<br />
56(12): p. 2457-66.<br />
10. Carrillo-Barral, N., et al., Nitrate affects<br />
sensu-stricto germination of after-ripened<br />
Sisymbrium officinale seeds by modifying<br />
expression of SoNCED5, SoCYP707A2 and<br />
SoGA3ox2 genes. Plant Sci, 2014. 217-<br />
218: p. 99-108.<br />
11. Rombola-Caldentey, B., et al., Arabidopsis<br />
DELLA and two HD-ZIP transcription<br />
factors regulate GA signaling in the<br />
epidermis through the L1 box cis-element.<br />
Plant Cell, 2014. 26(7): p. 2905-19.<br />
12. Carbonell, J. and J.L. Garcia-Martinez,<br />
Fruit-set of unpollinated ovaries of Pisum<br />
sativum L. : Influence of vegetative parts.<br />
Planta, 1980. 147(5): p. 444-50.<br />
13. Garcia-Martinez, J.L. and J. Carbonell,<br />
Fruit-set of unpollinated ovaries of Pisum<br />
sativum L. : Influence of plant-growth<br />
regulators. Planta, 1980. 147(5): p. 451-6.<br />
14. Fagoaga, C., et al., Engineering of<br />
gibberellin levels in citrus by sense and<br />
antisense overexpression of a GA 20-<br />
oxidase gene modifies plant architecture. J<br />
Exp Bot, 2007. 58(6): p. 1407-20.<br />
15. Garcia-Martinez, J.L. and J. Gil, Light<br />
Regulation of Gibberellin Biosynthesis and<br />
Mode of Action. J Plant Growth Regul,<br />
2001. 20(4): p. 354-368.<br />
16. Garcia-Martinez, J.L., et al., Phytochrome<br />
Regulation of the Response to Exogenous<br />
Gibberellins by Epicotyls of Vigna sinensis.<br />
Plant Physiol, 1987. 85(1): p. 212-6.<br />
17. Garcia-Martinez, J.L., et al., Isolation and<br />
transcript analysis of gibberellin 20-oxidase<br />
genes in pea and bean in relation to fruit<br />
development. Plant Mol Biol, 1997. 33(6): p.<br />
1073-84.<br />
18. Gil, J. and J.L. García-Martínez, Light<br />
regulation of gibberellin A1 content and<br />
expression of genes coding for GA 20-<br />
oxidase and GA 3b-hydroxylase in etiolated<br />
pea seedlings. Physiol. Plant, 2000. 108: p.<br />
223-229.<br />
19. Martínez-García, J.F., C.M. Santes, and<br />
J.L. García-Martínez, The end-of.day farred<br />
irradiation increases gibberellin A1<br />
content in cowpea (Vigna sinensis)<br />
epicotyls by reducing its inactivation.<br />
Physiol Plant, 2000. 108: p. 426-434.<br />
20. Stav ang, J.A., et al., Hormonal regulation of<br />
temperature-induced growth in Arabidopsis.<br />
Plant J, 2009. 60(4): p. 589-601.<br />
21. Carbonell, J. and J.L. Navarro, Correlation<br />
of spermine levels with ovary senescence<br />
and with fruit set and development in Pisum<br />
sativum L. Planta, 1989. 178: p. 482-487.<br />
22. Perez-Amador, M.A. and J. Carbonell,<br />
Arginine Decarboxylase and Putrescine<br />
Oxidase in Ovaries of Pisum sativum L.<br />
(Changes during Ovary Senescence and<br />
Early Stages of Fruit Development). Plant<br />
Physiol, 1995. 107(3): p. 865-872.<br />
23. Alabadi, D., et al., Arginase, Arginine<br />
Decarboxylase, Ornithine Decarboxylase,<br />
and Polyamines in Tomato Ovaries<br />
(Changes in Unpollinated Ovaries and<br />
Parthenocarpic Fruits Induced by Auxin or<br />
Gibberellin). Plant Phy siol, 1996. 112(3): p.<br />
1237-1244.<br />
24. Panicot, M., et al., A polyamine metabolon<br />
involving aminopropyl transferase<br />
complexes in Arabidopsis. Plant Cell, 2002.<br />
14(10): p. 2539-51.<br />
25. Carbonell, J. and M.A. Blázquez,<br />
Regulatory mechanis ms of polyamine<br />
biosynthesis in plants. Genes Genomics,<br />
2009. 31: p. 107-118.<br />
26. Muñiz, L., et al., ACAULIS5 controls<br />
Arabidopsis xylem specification through the<br />
prevention of premature cell death.<br />
Dev elopment, 2008. 135(15): p. 2573-82.<br />
27. Vera-Sirera, F., et al., A bHLH-Based<br />
Feedback Loop Restricts Vascular Cell<br />
Proliferation in Plants. Dev Cell, 2015.<br />
35(4): p. 432-43.<br />
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