Chagas congénito - Prenatal

CHAGAS CONGENITO- Observar minuciosamente esta región con el objetivo 40 X, haciendo rotarel tubo en un ángulo de 45°, hasta observar la totalidad de lacircunferencia del tubo capilar (fig.10).- Proceder a la lectura de los tubos capilares restante con la metodologíaindicada.2.5 Interpretación de los Resultados.-Se diagnostica como POSITIVO cuando se detectan una o más formas detrypomastigotes móviles activos que se disponen en la región divisoria de lacapa lechosa (paquete globular o Buffy coat) y el plasma sanguíneo en uno o másde los cuatro tubos capilares." Los trypomastigotes de Trypanosoma cruzi son detectados por su movimientocaracterístico y no así por su morfología".Fig 10. La lectura de los tubos capilares se realiza enfocando la región de lalínea divisoria entre la capa lechosa (capa de glóbulos blancos GB o buffycoat) y el plasma sanguíneo (PL). La observación se realiza con el objetivo de40X y haciendo rotar el tubo capilar.2.6 Cuantificación de la parasitemia.-La estimación de la parasitemia en la técnica del tubo capilar se realiza sólo conel fin de conocer la parasitemia de los casos de chagas congénito y su relacióncon la sintomatología y no así con fines de diagnóstico por que la presencia deun solo parásito en uno de los tubos capilares confirma el diagnóstico de ChagasCongénito. Para la estimación de la parasitemia utilizamos la tabla siguiente:Parásitos/tubo capilar Concentración de Parásitos en cruces1 - 5 6 - 10 11 - 30 > 30 + ++ +++++++ Tab. 1 Tabla de estimación de la parasitemia en la técnica del tubo capilar2.7 Conservación de las Muestras.-CHAGAS CONGENITOIMPORTANTE: Es recomendable realizar la lectura de las muestrasinmediatamente después su obtención.Si las muestras no pueden ser leídas inmediatamente, por cualquier razón, esrecomendable conservar las muestras teniendo en cuenta las siguientesconsideraciones:•las muestras no deben ser expuestas a la luz solar o a los UV (salas de partos,•quirófanos).las muestras deben ser conservadas a 4 º C ( parte baja del refrigerador) al•abrigo de la luz y en posición vertical hasta el momento de la lectura.Es recomendable no sobrepasar el tiempo de 12h desde la toma de muestra•hasta la lectura de los capilares.En las muestras conservadas a 4º C al abrigo de la luz por 12 horas se observauna disminución de la motilidad de los parásitos, por lo que puede dar lugara falsos negativos sobre todo si las parasitemias son bajas.2.8 Causas de error.-Las plaquetas constituyen la causa más frecuente de error produciendo falsospositivos, ya que se disponen a nivel de la línea divisoria del Buffy coat (paqueteglobular) y el plasma al igual que los parásitos. Las plaquetas presentan unmovimiento vibratorio característico (movimiento "browniano") y no un movimientode traslación.3. RECOMENDACIONES.-•Se debe utilizar Heparina como anticoagulante (no usar citrato ni EDTA), porque según experiencias realizadas este anticoagulante mantiene vivos y enmovimiento a los parásitos durante más tiempo que otros anticoagulantes. Se•recomienda utilizar los tubos capilares ya heparinizados.Para la toma de muestra en sangre de cordón, el laboratorio deberá preparartubos heparinizados; dos gotas (100 μl aproximadamente) de heparina son•suficientes para anticoagular 5 ml de sangre.Los tubos heparinizados pueden ser autoclavados sin que se alteren laspropiedades anticoagulantes de la heparina•Se debe utilizar capilares heparinizados de buena calidad, caso contrario sepueden romper al centrifugarlos.48 49