(Eh) y metanólico (Em) de Pera distichophylla sobre un aislado de ...
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alteraciones histopatológicas a nivel <strong>de</strong> corazón y<br />
músculo esquelético en ratones jóvenes <strong>de</strong> 2 meses<br />
<strong>de</strong> edad y ratones mayores, <strong>de</strong> 8 meses <strong>de</strong> edad,<br />
experimentalmente infectados con T. cruzi.<br />
MATERIALES Y MÉTODOS<br />
Parásitos. La infección experimental se realizó<br />
utilizando tripomastigotes sanguíneos <strong>de</strong>l clon<br />
Dm28c <strong>de</strong> T. cruzi (Contreras et al., 1988). Esta cepa<br />
<strong>de</strong> parásito es mantenida in vivo en el bioterio <strong>de</strong> la<br />
Unidad <strong>de</strong> Inm<strong>un</strong>ología <strong>de</strong> la Facultad <strong>de</strong> Ciencias<br />
Veterinarias y Pecuarias <strong>de</strong> la Universidad <strong>de</strong> Chile,<br />
mediante el traspaso semanal <strong>de</strong> tripomastigotes en<br />
ratones Balb/c.<br />
Ratones. Se utilizaron cuatro grupos <strong>de</strong> 10 ratones<br />
machos, <strong>de</strong> la cepa Balb/c. Los dos primeros<br />
grupos correspon<strong>de</strong>n a ratones jóvenes <strong>de</strong> dos meses<br />
<strong>de</strong> edad y los dos grupos restantes correspon<strong>de</strong>n<br />
a ratones mayores, <strong>de</strong> ocho meses <strong>de</strong> edad. Esta<br />
cepa <strong>de</strong> ratones Balb/c proviene originalmente <strong>de</strong>l<br />
Jackson Laboratory, Bar Arbor, Maine, U.S.A.<br />
Mo<strong>de</strong>lo <strong>de</strong> infección experimental. Para la obtención<br />
<strong>de</strong> parásitos, se extrajo 0,6 mL <strong>de</strong> sangre<br />
mediante p<strong>un</strong>ción cardiaca <strong>de</strong> <strong>un</strong> ratón Balb/c infectado<br />
con el clon Dm28c <strong>de</strong> T. cruzi, y sacrificado<br />
cumpliendo con las normas bioéticas establecidas<br />
en el Manual <strong>de</strong> Normas <strong>de</strong> Biseguridad <strong>de</strong> la Comisión<br />
Nacional <strong>de</strong> Investigación Científica y Tecnológica<br />
(CONICYT), Chile. La sangre así extraída<br />
se colocó en <strong>un</strong> tubo estéril conteniendo 0,1 mL<br />
<strong>de</strong> citrato <strong>de</strong> sodio, como anticoagulante. Luego se<br />
realizó <strong>un</strong>a dilución <strong>de</strong> 10 uL. <strong>de</strong> sangre infectada<br />
en 490 uL <strong>de</strong> suero fisiológico estéril y se hizo <strong>un</strong><br />
recuento <strong>de</strong> parásitos en cámara <strong>de</strong> Neubauer. Este<br />
procedimiento permitió <strong>de</strong>terminar la cantidad total<br />
<strong>de</strong> parásitos totales en los 0,6 mL <strong>de</strong> sangre extraídos<br />
<strong>de</strong>l ratón experimentalmente infectado. Posteriormente<br />
se realizaron las diluciones requeridas<br />
para obtener 2.000 parásitos en 0,2 mL que fue la<br />
cantidad inoculada por vía intraperitoneal en a cada<br />
<strong>un</strong>o <strong>de</strong> los ratones <strong>de</strong> los grupos experimentalmente<br />
infectados. Los 2 grupos control <strong>de</strong> dos y ocho<br />
meses <strong>de</strong> edad se inocularon con 0,2 mL <strong>de</strong> sangre<br />
<strong>de</strong> ratones Balb/c no infectados y diluida <strong>de</strong> manera<br />
similar a los grupos infectados.<br />
Estudio <strong>de</strong> Parasitemia. Los ratones experimentalmente<br />
infectados se sangraron cada dos días,<br />
a partir <strong>de</strong>l tercer día postinfección (p.i) y los nive-<br />
Rev. Ibero-Latinoam. Parasitol. (2012); 71 (1): 23-33<br />
EDAD DEL HOSPEDERO EN LA INFECCIÓN CON TRYPANOSOMA CRUZI<br />
les <strong>de</strong> parasitemia se analizaron hasta la muerte <strong>de</strong><br />
los ratones o hasta la negatividad en los niveles <strong>de</strong><br />
parasitemia. La sangre fue obtenida <strong>de</strong> la vena caudal,<br />
en tubos <strong>de</strong> micro hematocrito heparinizados.<br />
Luego cada muestra fue centrifugada a 700 g por 5<br />
minutos, <strong>de</strong>jando reposar por 30 minutos en estufa<br />
a 37ºC para luego medir el volumen <strong>de</strong> sangre en<br />
cada tubo. Finalmente cada muestra se colocó en <strong>un</strong><br />
portaobjeto para <strong>de</strong>terminar el número <strong>de</strong> parásitos<br />
en 50 campos elegidos al azar y utilizando <strong>un</strong> aumento<br />
<strong>de</strong> 400x. Los resultados se expresaron como<br />
el promedio <strong>de</strong> parasitemia <strong>de</strong>l grupo y la <strong>de</strong>sviación<br />
estándar correspondiente, <strong>de</strong> acuerdo al método<br />
<strong>de</strong>scrito por Arias y Ferro (1988).<br />
Estudio histopatológico. Se sacrificó <strong>un</strong> ratón<br />
<strong>de</strong> cada grupo los días 13, 23 y 33 p.i. y se tomaron<br />
muestras <strong>de</strong> tejido cardiaco y músculo esquelético<br />
para su estudio histopatológico. Los tejidos se<br />
fijaron en Bouin-formalina y se incluyeron en parafina<br />
para finalmente realizar cortes <strong>de</strong> 5 μm que<br />
se tiñeron con hematoxilina-eosina. La severidad<br />
<strong>de</strong>l daño tisular y la presencia <strong>de</strong> pseudoquistes<br />
se realizó utilizando <strong>un</strong> aumento <strong>de</strong> 100x y se representó<br />
como negativo (-) al tejido preservado y<br />
sin signos aparentes <strong>de</strong> daño tisular. La intensidad<br />
<strong>de</strong> las lesiones fue evaluada en conformidad a la<br />
severidad <strong>de</strong> la infiltración inflamatoria, uytilizando<br />
el siguiente criterio: (+) Lesiones inflamatorias<br />
mínimas con discreto infiltrado leucocitario; (++)<br />
Lesiones mo<strong>de</strong>radas, con infiltrado leucocitario,<br />
hiperemia y e<strong>de</strong>ma; (+++) Lesiones severas, infiltrado<br />
leucocitario, hiperemia, e<strong>de</strong>ma y necrosis. El<br />
tropismo tisular y número <strong>de</strong> parásitos intracelulares<br />
se evaluó en 10 campos microscópicos <strong>de</strong> cada<br />
corte <strong>de</strong> tejido, examinados con aumento <strong>de</strong> 600x y<br />
se representó <strong>de</strong> la siguiente manera: (-) Negativo,<br />
ausencia <strong>de</strong> células parasitadas (pseudoquistes);<br />
(+) Leve, presencia <strong>de</strong> 1-5 células infectadas; (++)<br />
Mo<strong>de</strong>rado, presencia <strong>de</strong> 6-10 pseudoquistes; (+++)<br />
Severo, presencia <strong>de</strong> 11 o más pseudoquistes.<br />
Análisis Estadístico. Los resultados <strong>de</strong> los niveles<br />
máximos <strong>de</strong> parasitemia se analizaron mediante<br />
<strong>un</strong>a prueba <strong>de</strong> t. El análisis <strong>de</strong> supervivencia<br />
se realizó <strong>de</strong> acuerdo al método <strong>de</strong> Kaplan y Meier<br />
(1958).<br />
RESULTADOS Y DISCUSIóN<br />
En la Figura 1 se muestra la evolución <strong>de</strong> los<br />
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