Las micorrizas arbusculares y las bacterias rizosféricas como ...
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Materiales y Métodospara un total de 15 combinaciones como muestra la Tabla 6. Se utilizaron además 3tratamientos sin inocular (0-0-0, 30-0-0 y 30-25-50 kg N-P205-K20/ha).Los tratamientos se distribuyeron en un diseño de bloques al azar con tres réplicas enparcelas de 1.40 m2 con 6 hileras sobre el cantero para una densidad aproximada de 350plántulas/parcela.Tabla 6.- Descripción de los tratamientos utilizados.Micorrizas RizobacteriasG. mosseae P. (B) cepacíaG. manihoti P. fluorescens0. fasciculatum A. lipoferum (UAP-159)A. brasilense (Sp7)Az chroococcum (MB-23)G.: GlomusP. (B) : P. (Burkolderia)P.: PseudomonasA.: AzospirillumAz : AzotobacterCombinacionesG. mosseae + P.(B.) copadaG. mosseae + P. fluorescensG. mosseae + A. lipoferumG. mosseae + A brasiienseG. mosseae + Az chroococcumG. manihoti + P.(B.) cepaciaG. manihoti + P. fluorescensG. manihoti + A. tipoferumG. mánihoti + A brasilenseG. manihoti + Az. chroococcumG. fasciculatum. + P.(B.) cepaciaG. fasciculatum. + P. fluorescensG. fasciculatum. + A. tipoferumG. fasciculatum. + A brasilenseG. fasciculatum. + Az. chroococcumLos biopreparados fueron suministrados por el Instituto Nacional de Ciencias Agricolas(I NCA) (rizobacterias y HFMA) y el Instituto Nacional de Investigaciones Fundamentalesen Agricultura Tropical "Alejandro de Humboir' (INIFAT) (Azotobacterchroococcum).Los inoculantes a partir de HFMA presentaron una pureza de 80 % de la cepacorrespondiente y un 75 % de infección de la planta , hospedera utilizada para lareproducción del hongo . Las concentraciones microbianas de los inóculos bacterianos,determinada por conteo de viables en los medios diferenciales correspondientes a cadaespecie aparecen en la Tabla 7.28
Materiales y MétodosTabla 7.- Concentración de las rizobactenas utilizadas en las investigaciones.RizobacteriasConcentración (UFC3mqPseudomonas (Burkholderia) cepacia 2.1 x 108 - 2 x 109Pseudomonas fluorescens 1.9 x 108 -1 x 1010Azospirillum lipoferum 1 x 109 - 1.4 x 109Azospirillum brasilense 1.3 x 108 - 1.5 x 109Azotobacter chroococcum 1 x 1010- 1.1 x 109Las rizobacterias pertenecientes a los géneros Pseudomonas y Azospirillum seinocularon en el momento de la siembra mediante la metodología de recubrimiento desemilla propuesta por Gómez et al, (1995) a razón de 100 g de inóculante por kg de semilla(10 % del peso de la semilla) y para Azotobacter chroococcum se utilizó una dosis de 20L/ha aplicada al suelo inmediatamente después de la siembra en solución final de 400 LH20/ha (1:20).Para las especies micon-ízicas se empleo el método tradicional de inoculación al suelo queconsiste en aplicar 1 kg de inoculo/m2 en el fondo del surco. El producto proveniente decanteros multiplicadores consistió en una mezcla de suelo seco con esporas de la cepacorrespondiente y raíces colonizadas de la planta hospedera.La fertilización se realizó de forma localizada, al lado de las hileras, una vez germinadas lassemillas. Se emplearon como portadores urea (46 % de N), superfosfato sencillo (20 % deP2O5 ) y cloruro de potasio (60 % de K2O). Las variantes inoculadas recibieron el 75 % delfertilizante nitrogenado.Las evaluaciones se efectuaron a los 25 días de sembrado el semillero. Para ello se tomóuna muestra al azar de 10 plántulas por parcela para determinar las siguientes variables:o Altura de las plántulas (cm) con regla graduada desde el cuello de la raíz hasta el ápiceqqqqde la planta.Número de hojas por plántula.Diámetro del tallo (cm) con Pie de Rey a 113 de la distancia entre el cuello de la raíz ylas primeras hojas verdaderas.Longitud radical (cm) con regla graduada desde el cuello hasta el final de la raízprincipal.Masa fresca foliar y radical (g) en balanza técnica.29
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Materiales y Métodospara un total de 15 combinaciones <strong>como</strong> muestra la Tabla 6. Se utilizaron además 3tratamientos sin inocular (0-0-0, 30-0-0 y 30-25-50 kg N-P205-K20/ha).Los tratamientos se distribuyeron en un diseño de bloques al azar con tres réplicas enparce<strong>las</strong> de 1.40 m2 con 6 hileras sobre el cantero para una densidad aproximada de 350plántu<strong>las</strong>/parcela.Tabla 6.- Descripción de los tratamientos utilizados.Micorrizas Rizo<strong>bacterias</strong>G. mosseae P. (B) cepacíaG. manihoti P. fluorescens0. fasciculatum A. lipoferum (UAP-159)A. brasilense (Sp7)Az chroococcum (MB-23)G.: GlomusP. (B) : P. (Burkolderia)P.: PseudomonasA.: AzospirillumAz : AzotobacterCombinacionesG. mosseae + P.(B.) copadaG. mosseae + P. fluorescensG. mosseae + A. lipoferumG. mosseae + A brasiienseG. mosseae + Az chroococcumG. manihoti + P.(B.) cepaciaG. manihoti + P. fluorescensG. manihoti + A. tipoferumG. mánihoti + A brasilenseG. manihoti + Az. chroococcumG. fasciculatum. + P.(B.) cepaciaG. fasciculatum. + P. fluorescensG. fasciculatum. + A. tipoferumG. fasciculatum. + A brasilenseG. fasciculatum. + Az. chroococcumLos biopreparados fueron suministrados por el Instituto Nacional de Ciencias Agrico<strong>las</strong>(I NCA) (rizo<strong>bacterias</strong> y HFMA) y el Instituto Nacional de Investigaciones Fundamentalesen Agricultura Tropical "Alejandro de Humboir' (INIFAT) (Azotobacterchroococcum).Los inoculantes a partir de HFMA presentaron una pureza de 80 % de la cepacorrespondiente y un 75 % de infección de la planta , hospedera utilizada para lareproducción del hongo . <strong>Las</strong> concentraciones microbianas de los inóculos bacterianos,determinada por conteo de viables en los medios diferenciales correspondientes a cadaespecie aparecen en la Tabla 7.28
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