Contenido - Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal

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Elósegui y otrosentomopatógenos en el suelo está determinado tantopor las propiedades físicas y químicas de cada suelocomo por las de la cepa fúngica en cuestión [Rhodes ySmith, 1992]. También existe la posibilidad de que losmicroorganismos competidores con su producción demetabolitos activos afecten la viabilidad de estospropágulos fúngicos deseados [Jenkins y Grzywacz,2000]. Por ello, el trampeo puede fallar si no existe unaconcentración alta de esporas viables del microorganismode interés en el sueloFigura 1. Larva momificada de Galleria mellonella en cámara húmeda infectado con el aislado Ma-30 deMetarhizium anisopliae a partir de muestra de suelo. Nótese la emersión temprana del micelio en blanco.Figura 2. Colonia de Beauveria bassiana aislado Bb-105 obtenido de Hypothenemus hampei.Sun (2002) logró 6,7% de éxito para Metarhizium y10% de éxito para Beauveria en trampeos con el termiteCoptotermes formosanus, a partir de 90 muestras originalesde suelo, porcentajes superiores de éxito con respectoal procesamiento de termites muertos sospechososde micosis; sin embargo, Zimmermann (1986) [citadopor Sun, 2002] se refiere al método de trampeo conGalleria como uno de los más exitosos para detectarentomopatógenos en termites.Por otro lado, Dhoj et al. (2006) recomiendan tambiénel método de trampeo con Galleria en contacto conmuestras de suelo, porque fundamentalmente es el quelleva poca especializacion y el tiempo del ensayo es cortocon un porcentaje de éxito alrededor de 75% para270/fitosanidad

Aislamiento, identificación y caracterización...aislar Beavuveria y Metarhizium. Estos mismos autoresusaron 15 g de suelo aproximadamente por cadaindividuo de Galleria y pusieron en contacto con el sueloal insecto trampeador hasta 18 días; sin embargo, eneste trabajo se obtuvo una sola muestra de suelo útilpor trampeo con Galleria, lo que representó 7% de éxito.Este comportamiento puede deberse a que la cantidadde suelo por individuo fue de 6-10 g, y el tiempo encontacto con este solo fue de nueve días, además de quela cantidad de propágulos del hongo de interés presenteen el suelo es muy variable y depende de condicionesespecíficas de cada ecosistema (Tabla 1 y Fig. 1).Un método más efectivo para obtener nuevos aisladosde hongos es el aislamiento de colonias fúngicas únicas(ufc) a partir de muestras de suelo por dilucionesseriadas, según procedimiento detallado por Lecuona(1996). No obstante, es ampliamente aceptado que estemétodo es muy caro y se prefiere usar en el aislamientoy selección de especies bacterianas, como por ejemploBacillus thuringiensis [Johnson y Bishop, 1996], de ahíque se decidiera no emplearlo para enriquecer el númerode aislados de la Colección de Hongos Entomopatógenosdel INISAV.El porcentaje de éxito obtenido en este trabajo paralas muestras de insectos sospechosos de micosis o conuna evidente fue de 42%. Jackson et al. (2000) planteanque aunque este método de aislamiento directoconlleva mucho tiempo de muestreo en campo y experiencia,la realidad es que entre los más exitosos agentesde control con microorganismos se encuentranaquellos aislados obtenidos directamente de los insectoshospederos, y no de las colecciones de cultivos o demétodos indirectos a través de medios de cultivo selectivos.La frecuencia alta de aparición de Beauveria bassianase debió al amplio rango de hospedantes de este patógeno,además de que la mayoría de los aislamientos sehicieron a partir de Hypothenemus hampei (broca delcafé), y se conoce que esta especie fúngica regularmentese ha encontrado que atacan las poblaciones del insectode forma natural en los cafetales. De hecho, esesta la razón de que sea uno de los entomopatógenosmás estudiados para el control de esta plaga [Bustilloet al., 1999].Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. así como Metarhiziumanisopliae (Metsch.) Sorok. y Metarhizium flavovirideGams and Rozsypal están entre los hongos entomopatógenosmás usualmente encontrados en la naturaleza.Por ello, colecciones de cultivo internacionalmentereconocidas cuentan con varios cientos de aislados deestas tres especies como la Colección de HongosEntomopatógenos para Investigaciones Agrícolas delDepartamento de Agricultura de Estados Unidos(ARCEF), la ATCC (American Type Culture Collection)y la Colección del IMI (International MycologicalInstitute) en el Reino Unido [Humber, 1992; Batemanet al., 1996]. En Cuba más del 85% de la Colección deHongos Entomopatógenos del INISAV está representadapor aislados de Beauveria y Metarhizium.En relación con el aislamiento de Paecilomyces lilacinusobtenido de Hypothenemus hampei se sabe que estehongo se encuentra comúnmente en las crías de brocaen laboratorio, donde es posible que las condiciones dehacinamiento, la alta humedad relativa y la falta dedesinfección de las cerezas favorezcan la invasión de estaespecie para atacar a la broca, si bien en la planta decafé en el campo no se ha encontrado [Posada et al.,1998]. También es cierto que P. lilacinus está catalogadocomo hongo entomopatógeno oportunista y se hausado exitosamente en el control de nematodosfitopatógenos [López, 1995]. Por esta razón se decidióincorporarlo a la Colección de Hongos Entomopatógenosdel INISAV para futuras investigaciones.Los productos exitosos a base de hongos desarrolladosen el mercado han surgido a partir de un monitoreo deaislados obtenidos de las regiones geográficas yagroecosistemas, donde está el organismo plaga porcontrolar, así como de las colecciones de cultivos.Bateman et al. (1996) reportaron la selección de unasola cepa de M. anisopliae, después de haber ensayado159 aislados de Beauveria y Metarhizium contraSchistocerca gregaria (langosta del desierto). Esto confirmala necesidad de contar con abundante cantidadde aislados de los más diversos orígenes cuando se precisaobtener agentes microbianos efectivos comobiocontroladores de plagas [Bateman et al., 1996;Jenkins y Grzywacz, 2003].Como se puede apreciar, de acuerdo con las característicasmacro y microculturales, para los aislados deBeauveria existió una alta similitud, por lo que unaseparación entre estos por los métodos tradicionalesmorfométricos no es factible (Tabla 1). Para lograr ladistinción entre aislados hay que recurrir a métodos debiología molecular como RFLP y PCR-RAPDS [Bridgeet al., 1993; Bridge y Arora, 1998; Bielikova et al.,2002]. Estos métodos moleculares también se usan comouna forma altamente reproducible de reconocer cadafitosanidad/271

Aislamiento, i<strong>de</strong>ntificación y caracterización...aislar Beavuveria y Metarhizium. Estos mismos autoresusaron 15 g <strong>de</strong> suelo aproximadamente por cadaindividuo <strong>de</strong> Galleria y pusieron en contacto con el sueloal insecto trampeador hasta 18 días; sin embargo, eneste trabajo se obtuvo una sola muestra <strong>de</strong> suelo útilpor trampeo con Galleria, lo que representó 7% <strong>de</strong> éxito.Este comportamiento pue<strong>de</strong> <strong>de</strong>berse a que la cantidad<strong>de</strong> suelo por individuo fue <strong>de</strong> 6-10 g, y el tiempo encontacto con este solo fue <strong>de</strong> nueve días, a<strong>de</strong>más <strong>de</strong> quela cantidad <strong>de</strong> propágulos <strong>de</strong>l hongo <strong>de</strong> interés presenteen el suelo es muy variable y <strong>de</strong>pen<strong>de</strong> <strong>de</strong> condicionesespecíficas <strong>de</strong> cada ecosistema (Tabla 1 y Fig. 1).Un método más efectivo para obtener nuevos aislados<strong>de</strong> hongos es el aislamiento <strong>de</strong> colonias fúngicas únicas(ufc) a partir <strong>de</strong> muestras <strong>de</strong> suelo por dilucionesseriadas, según procedimiento <strong>de</strong>tallado por Lecuona(1996). No obstante, es ampliamente aceptado que estemétodo es muy caro y se prefiere usar en el aislamientoy selección <strong>de</strong> especies bacterianas, como por ejemploBacillus thuringiensis [Johnson y Bishop, 1996], <strong>de</strong> ahíque se <strong>de</strong>cidiera no emplearlo para enriquecer el número<strong>de</strong> aislados <strong>de</strong> la Colección <strong>de</strong> Hongos Entomopatógenos<strong>de</strong>l INISAV.El porcentaje <strong>de</strong> éxito obtenido en este trabajo paralas muestras <strong>de</strong> insectos sospechosos <strong>de</strong> micosis o conuna evi<strong>de</strong>nte fue <strong>de</strong> 42%. Jackson et al. (2000) planteanque aunque este método <strong>de</strong> aislamiento directoconlleva mucho tiempo <strong>de</strong> muestreo en campo y experiencia,la realidad es que entre los más exitosos agentes<strong>de</strong> control con microorganismos se encuentranaquellos aislados obtenidos directamente <strong>de</strong> los insectoshospe<strong>de</strong>ros, y no <strong>de</strong> las colecciones <strong>de</strong> cultivos o <strong>de</strong>métodos indirectos a través <strong>de</strong> medios <strong>de</strong> cultivo selectivos.La frecuencia alta <strong>de</strong> aparición <strong>de</strong> Beauveria bassianase <strong>de</strong>bió al amplio rango <strong>de</strong> hospedantes <strong>de</strong> este patógeno,a<strong>de</strong>más <strong>de</strong> que la mayoría <strong>de</strong> los aislamientos sehicieron a partir <strong>de</strong> Hypothenemus hampei (broca <strong>de</strong>lcafé), y se conoce que esta especie fúngica regularmentese ha encontrado que atacan las poblaciones <strong>de</strong>l insecto<strong>de</strong> forma natural en los cafetales. De hecho, esesta la razón <strong>de</strong> que sea uno <strong>de</strong> los entomopatógenosmás estudiados para el control <strong>de</strong> esta plaga [Bustilloet al., 1999].Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. así como Metarhiziumanisopliae (Metsch.) Sorok. y Metarhizium flavoviri<strong>de</strong>Gams and Rozsypal están entre los hongos entomopatógenosmás usualmente encontrados en la naturaleza.Por ello, colecciones <strong>de</strong> cultivo internacionalmentereconocidas cuentan con varios cientos <strong>de</strong> aislados <strong>de</strong>estas tres especies como la Colección <strong>de</strong> HongosEntomopatógenos para <strong>Investigaciones</strong> Agrícolas <strong>de</strong>lDepartamento <strong>de</strong> Agricultura <strong>de</strong> Estados Unidos(ARCEF), la ATCC (American Type Culture Collection)y la Colección <strong>de</strong>l IMI (International MycologicalInstitute) en el Reino Unido [Humber, 1992; Batemanet al., 1996]. En Cuba más <strong>de</strong>l 85% <strong>de</strong> la Colección <strong>de</strong>Hongos Entomopatógenos <strong>de</strong>l INISAV está representadapor aislados <strong>de</strong> Beauveria y Metarhizium.En relación con el aislamiento <strong>de</strong> Paecilomyces lilacinusobtenido <strong>de</strong> Hypothenemus hampei se sabe que estehongo se encuentra comúnmente en las crías <strong>de</strong> brocaen laboratorio, don<strong>de</strong> es posible que las condiciones <strong>de</strong>hacinamiento, la alta humedad relativa y la falta <strong>de</strong><strong>de</strong>sinfección <strong>de</strong> las cerezas favorezcan la invasión <strong>de</strong> estaespecie para atacar a la broca, si bien en la planta <strong>de</strong>café en el campo no se ha encontrado [Posada et al.,1998]. También es cierto que P. lilacinus está catalogadocomo hongo entomopatógeno oportunista y se hausado exitosamente en el control <strong>de</strong> nematodosfitopatógenos [López, 1995]. Por esta razón se <strong>de</strong>cidióincorporarlo a la Colección <strong>de</strong> Hongos Entomopatógenos<strong>de</strong>l INISAV para futuras investigaciones.Los productos exitosos a base <strong>de</strong> hongos <strong>de</strong>sarrolladosen el mercado han surgido a partir <strong>de</strong> un monitoreo <strong>de</strong>aislados obtenidos <strong>de</strong> las regiones geográficas yagroecosistemas, don<strong>de</strong> está el organismo plaga porcontrolar, así como <strong>de</strong> las colecciones <strong>de</strong> cultivos.Bateman et al. (1996) reportaron la selección <strong>de</strong> unasola cepa <strong>de</strong> M. anisopliae, <strong>de</strong>spués <strong>de</strong> haber ensayado159 aislados <strong>de</strong> Beauveria y Metarhizium contraSchistocerca gregaria (langosta <strong>de</strong>l <strong>de</strong>sierto). Esto confirmala necesidad <strong>de</strong> contar con abundante cantidad<strong>de</strong> aislados <strong>de</strong> los más diversos orígenes cuando se precisaobtener agentes microbianos efectivos comobiocontroladores <strong>de</strong> plagas [Bateman et al., 1996;Jenkins y Grzywacz, 2003].Como se pue<strong>de</strong> apreciar, <strong>de</strong> acuerdo con las característicasmacro y microculturales, para los aislados <strong>de</strong>Beauveria existió una alta similitud, por lo que unaseparación entre estos por los métodos tradicionalesmorfométricos no es factible (Tabla 1). Para lograr ladistinción entre aislados hay que recurrir a métodos <strong>de</strong>biología molecular como RFLP y PCR-RAPDS [Bridgeet al., 1993; Bridge y Arora, 1998; Bielikova et al.,2002]. Estos métodos moleculares también se usan comouna forma altamente reproducible <strong>de</strong> reconocer cadafitosanidad/271

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