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49 Subregional A1 Marasmiellus cocophilus 2. 3. Frison E. A., Putter C.A.J., Diekmann M., 1991. Safe Movement of Coconut Germoplasma. Technical Guidelines. http://wwwx.ecoport.org/REFS/IPGRI/coconut.pdf. Indonesia. KIRK P M, CANNON P F y DAVID J C, 2001. Ainsworth and Bisby's Dictionary of the Fungi,. Utrecht. Países Bajos. 624 pp pp. Vol Novena edición. miércoles, 19 de enero de 2005 Página 3 de 3
50 Subregional A1 Botryotinia porri PERFIL PARA LA CARACTERIZACION <strong>DE</strong> <strong>PLAGAS</strong> 1. Organismo Causal. 1.1. Nombre de la plaga. - Nombre científico Botryotinia porri (H.J.F. BEYMA) WHETZEL 1945 - Sinonímia y otros nombres Botrytis porri N.F. BUCHW. 1949 Sclerotinia porri J.F.H. BEYMA 1927 - Nombres comunes Francés Ingles 1.2 Nomenclatura taxonómica Fungi Ascomicota Ascomicetes Helotiales Sclerotiniaceae Botryotinia porri CODIGO BAYER: BOTRBY Notas adicionales (CABI, 2002; KIRK et al., 2001). 2 Biología, ecología y enemigos naturales - Biología y ecología El hongo sobrevive principalmente en el suelo como esclerote (posiblemente sobre desechos de sus hospederos). La formación de apotecia es una etapa normal del desarrollo, el esclerotia puede también originar conidias directamente. Este patógeno es favorecido por condiciones húmedas y frías, las cuales permiten la dispersión de la conidia. La enfermedad no progresa cuando las condiciones climáticas son cálidas o secas. El inadecuado riego favorece la infección. Los daños post - cosecha se originan a partir de lesiones formadas en el campo (CABI, 2001). 3 Reyno: Phyllum: Clase: Orden: Familia: Género: Especie: pourriture seche du maïs seedling damping-off of onion, neck rot of onion Sintomatología y daños Este patógeno causa una putrefacción en el cuello del poro y ajo, la cual puede causar la muerte de partes de la planta. La conidia se forma en el cuello de los bulbos, seguidos por la esclerote. En el ajo, la putrefacción puede afectar a todo el bulbo. Las plantas de poro, pueden descomponerse en los almacenes (CABI, 2001). 4 5 Los síntomas característicos de Botritis porri en poro son el color marrón pálido, lesiones empapadas de agua en la superficie de las hojas, usualmente en las áreas blancas y el pseudotallo (CABI, 2002). Medios de diseminación - Dispersion natural(biótica no biótica) Las ascosporas y conidias se diseminan por el viento o lluvias. Existen reportes no confirmados que este hongo puede permanecer en semillas botánicas o vegetativas (bulbos de ajo, plántulas de poro). Sin embargo, debido a su pobre calidad es improbable que el material enfermo se destine al comercio internacional (CABI, 2001). - Dispersión no natural Puede diseminarse mediante el movimiento o comercio de bulbos, tuberculos, cormos o rizomas infectados de sus hospedantes (CABI, 2002). Situación fitosanitaria en la Sub Región Andina Subregional A1 6 Distribución geográfica AMÉRICA Canadá: restringido ASIA Estados Unidos: restringido miércoles, 19 de enero de 2005 Página 1 de 3
Page 1 and 2: SG/CEPS.022.2002 22 de junio de 200
Page 3 and 4: 2 45. Phytophthora cryptogea PETHYB
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Page 7 and 8: 6 Subregional A1 Cronartium ribicol
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Page 13 and 14: 12 Subregional A1 Plasmopara halste
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Page 17 and 18: 16 Subregional A2 Ditylenchus destr
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Page 21 and 22: 20 Subregional A2 Cladosporium cucu
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Page 33 and 34: 32 Subregional A1 Phialophora grega
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Page 39 and 40: 38 Subregional A1 Diaporthe vaccini
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Page 49: 48 Subregional A1 Marasmiellus coco
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Page 55 and 56: 54 Subregional A1 Elsinoë batatas
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Page 93 and 94: 92 Subregional A1 Pseudocercosporel
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100 Subregional A1 Aphelenchoides f
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106 Subregional A1 Claviceps gigant
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108 Subregional A1 Cryphonectria pa
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110 Subregional A1 Cryphonectria pa
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112 Subregional A1 Anguina agrostis
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114 Subregional A1 Anguina agrostis
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116 Subregional A2 Sphaceloma arach
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118 Subregional A1 Heterobasidion a
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120 Subregional A1 Heterobasidion a
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122 Subregional A1 Hemileia coffeic
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124 Subregional A1 Peronosclerospor
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126 Subregional A1 Phyllostica soli
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128 Subregional A1 Phyllostica soli
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130 Subregional A2 Phytophthora fra
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132 Subregional A1 Aphanomyces eute
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134 Subregional A1 Aphanomyces eute
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136 Subregional A1 Alternaria gaise
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138 Subregional A1 Anguina tritici
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140 Subregional A1 Anguina tritici
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142 Subregional A2 Aphelenchoides b
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148 Subregional A1 Belonolaimus lon
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150 Subregional A1 Belonolaimus lon
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152 Subregional A2 Guignardia bidwe
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154 Subregional A2 Guignardia bidwe
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156 Subregional A1 Guignardia citri
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158 Subregional A1 Guignardia citri
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160 Subregional A1 Gymnosporangium
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162 Subregional A1 Leptosphaeria ma
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168 Subregional A1 Meloidogyne chit
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170 Subregional A1 Meloidogyne chit
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172 Subregional A1 Microdochium pan
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174 Subregional A1 Nectria galligen
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180 Subregional A1 Oncobasidium the
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182 Subregional A1 Oncobasidium the
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184 Subregional A1 Peronosclerospor
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186 Subregional A2 Phymatotrichopsi
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188 Subregional A2 Phymatotrichopsi
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190 Subregional A1 Phytophthora cry
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196 Subregional A1 Phytophthora por
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198 Subregional A1 Phytophthora soj
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200 Subregional A1 Phytophthora soj
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202 Subregional A1 Polyscytalum pus
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204 Subregional A1 Puccinia allii P
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206 Subregional A1 Puccinia allii 7
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208 Subregional A2 Sporisorium crue
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210 Subregional A2 Sporisorium crue
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212 Subregional A2 Stenocarpella ma
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214 Subregional A2 Stenocarpella ma
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216 Subregional A1 Tilletia controv
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218 Subregional A1 Tilletia controv
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220 Subregional A1 Tilletia indica
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222 Subregional A1 Tilletia indica
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224 Nacional A1 Urocystis agropyri
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228 Subregional A1 Uromyces transve
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230 Subregional A2 Xanthomonas axon
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