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Activated Immunobead® Matrix - Irvine Scientific

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Falls mehr als 1 ml dialysiertes Antikörper nötig ist, um die<br />

notwendigen 8 mg Protein zu ergeben, die Suspension zentrifugieren<br />

und dekantieren, vor der Hinzufügung des Antikörpers. Nach der<br />

Hinzufügung des dialysierten Antikörpers das Volumen mit dem<br />

Kupplungspuffer zu einem Endvolumen von 20 ml bringen. Die Perlen<br />

wieder suspendieren und bis zu einem von 6,3 bringen, falls nötig.<br />

3. Für 1 Stunde bei 4ºC bebrüten.<br />

4. 40,0 mg EDAC (1-ethyl-3 [3-dimethylaminopropyl] carbodiimide-HCl)<br />

zur Reaktionsmischung hinzufügen. Vollständig und energisch<br />

mischen.<br />

5. Für mindestens 3 Stunden bei 4ºC lagern. Die Reaktionsmischung<br />

kann an diesem Punkt über Nacht gelagert werden, aber falls Ihr<br />

Protein nicht stabil ist, das Protein zentrifugieren und mindestens<br />

einmal mit PBS waschen.<br />

6. Das Waschverfahren (Abteilung D) fortühren.<br />

C. Vorbereitung des Immunobead-Reagenzes mit<br />

Whole Antisera (ganzen Heilsera)<br />

Hinweis: Dieses Verfahren ergibt eine niedrigere spezifische Aktivität<br />

als das Globulinverfahren.<br />

1. 200 µL Heilsera bei 5.000 x g zentrifugieren, um unlöslichen Stoff<br />

wegzunehmen.<br />

2. Die Immunobead-Suspension zentrifugieren und den Überstand<br />

wegwerfen.<br />

3. 100 µL Heilsera und 6,5 ml Kupplungspuffer zum Immunobead-<br />

Niederschlag von Schritt 2 hinzufügen. Wieder suspendieren und<br />

gründlich mischen.<br />

Deutsch 3/7

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