Activated Immunobead® Matrix - Irvine Scientific
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Falls mehr als 1 ml dialysiertes Antikörper nötig ist, um die<br />
notwendigen 8 mg Protein zu ergeben, die Suspension zentrifugieren<br />
und dekantieren, vor der Hinzufügung des Antikörpers. Nach der<br />
Hinzufügung des dialysierten Antikörpers das Volumen mit dem<br />
Kupplungspuffer zu einem Endvolumen von 20 ml bringen. Die Perlen<br />
wieder suspendieren und bis zu einem von 6,3 bringen, falls nötig.<br />
3. Für 1 Stunde bei 4ºC bebrüten.<br />
4. 40,0 mg EDAC (1-ethyl-3 [3-dimethylaminopropyl] carbodiimide-HCl)<br />
zur Reaktionsmischung hinzufügen. Vollständig und energisch<br />
mischen.<br />
5. Für mindestens 3 Stunden bei 4ºC lagern. Die Reaktionsmischung<br />
kann an diesem Punkt über Nacht gelagert werden, aber falls Ihr<br />
Protein nicht stabil ist, das Protein zentrifugieren und mindestens<br />
einmal mit PBS waschen.<br />
6. Das Waschverfahren (Abteilung D) fortühren.<br />
C. Vorbereitung des Immunobead-Reagenzes mit<br />
Whole Antisera (ganzen Heilsera)<br />
Hinweis: Dieses Verfahren ergibt eine niedrigere spezifische Aktivität<br />
als das Globulinverfahren.<br />
1. 200 µL Heilsera bei 5.000 x g zentrifugieren, um unlöslichen Stoff<br />
wegzunehmen.<br />
2. Die Immunobead-Suspension zentrifugieren und den Überstand<br />
wegwerfen.<br />
3. 100 µL Heilsera und 6,5 ml Kupplungspuffer zum Immunobead-<br />
Niederschlag von Schritt 2 hinzufügen. Wieder suspendieren und<br />
gründlich mischen.<br />
Deutsch 3/7