Bov. Leche Mayo2012

Mastitis bovina

MASTITIS
Es la inflamación de la glándula mamaria
causada por:
o
o
o
Traumatismos o lesiones en las ubres
Irritaciones químicas.
Infecciones microbianas

Mastitis: factores de riesgo

Estructura suspensoria de la ubre

Estructura anatómica y secretora de la ubre de vaca.(Fuente: PLM, 1998)

Estructura de la ubre

Anatomía de la ubre

Secreción de leche
Nutrientes básicos para síntesis de leche:
• Glucosa (MG – L)
• Aminoácidos (P)
• AG cadena larga (MG)
• Ácidos acético y β-hidroxibutírico (MG)
• Vitaminas, minerales

Secreción
Leche de alvéolo
+
Peq. conductos galactóforos
Leche alveolar
Presión - Producción
Leche de conductos >
+
Leche cisternas
Leche cisternal
Vaciado de mama
Prolactina

Eyección
Proceso por el cual la contracción de las células
mioepiteliales hace fluir la leche de la glándula
(bajada de la leche).
HORMONA OXITOCINA
vaca excitada o sometida a estrés:
HORMONA ADRENALINA
Vasoconstricción: impide la llegada de la
sangre y de la oxitocina a los alveolos,
inhibiendo la eyección.

Factores anatómicos de la vaca
predisponentes a Mastitis
Posicionamiento de la
ubre y conformación
de pezones
Estado de la punta y de
piel de los
pezones

Primer línea de defensa contra las infecciones
microbianas

Principales cambios del tejido
mamario afectado por mastitis

• Clínica
Grados de inflamación
– Alteración de la leche
– Alteración de la GM
• Subclínica
– Preclínica
– Largo tiempo
– Difícil diagnóstico
– Disminuye la producción y calidad de la leche
– Reservorio de infección
• Crónica
– Desarrollo progresivo del tejido cicatrizal
– Cambio de tamaño y forma del cuarto afectado
– Disminución de componentes específicos
– Pérdida o disminución de la producción
– Problemas tecnológicos

Importancia de las Mastitis
Subclínicas
• Alta incidencia sin notarlo
• Causantes de > pérdidas económicas
• El 80% de MC causaron semanas o meses
MSC
• Solo se detectan por métodos indirectos,
pruebas de laboratorio o campo
“Fábrica oculta de microorganismos” que
hacen perpetuar la infección de los rodeos

Casos de mastitis en un rodeo

Importancia económica de las mastitis
Pérdidas por:
‣ Altos RCS
‣ Mastitis clínica
‣ Calidad y composición de la leche
‣ Recuento bacteriano
‣ Enfermedades transmitidas por leche
‣ Durabilidad
‣ Derivados de la leche
‣ Composición de la leche

PRODUCE:
MASTITIS SUBCLÍNICAS
• AUMENTO DE LOS COMPONENTES
INDESEABLES EN LA LECHE
• DISMINUCIÓN DE LOS DESEABLES PARA
PRODUCIR LECHE DE CALIDAD

MASTITIS:
Cambios en la composición de la leche
MATERIA SECA Y COMPONENTES
MAYORES:
• Disminuyen los sólidos ( 15 %)
• A > RCS < % Materia Seca.

MASTITIS:
Cambios en la composición de la leche
MATERIA GRASA:
• Disminuye :
» 10 %
» fosfolípidos.
» Nº y tamaño glóbulos grasos
• Aumenta:
» AGL
» Ácidos grasos insaturados.
» Actividad lipolítica

MASTITIS:
Cambios en la composición de la leche
PROTEÍNAS: variaciones a > 1.000.000 RCS
• Disminuye :
» % caseína
» 70 % A lactoalbúmina y B lactoglobulina.
• Aumenta:
» Proteínas séricas
» K caseína y dism. A y B caseína (proteólisis)
» Proteínas suero sangre
» Ig y seroalbúmina.
» Lactoferrina, a macroglobulina, enzimas, etc.
» Proteínas y componentes nitrogenados menores.

MASTITIS:
Cambios en la composición de la leche
LACTOSA:
• Disminuye :
• Aumenta:
»10 %.
» Na y Cl (equilibrio osmótico)

MASTITIS:
Cambios en la composición de la leche
MINERALES:
• Disminuye :
• Aumenta:
VITAMINAS:
» Ca, P, Mg, K.
» Na, Cl , Fe, Cu
• Más afectadas las hidrosolubles.

ENZIMAS Y ACTIVIDAD BIOQUÍMICA
Aumenta la actividad
– Problemas de fermentación
– Problemas de calidad
– Enzimas oxidativas, lipolíticas, proteolíticas
– Aumenta lisozima
– Aumenta NAGasa

MASTITIS:
Cambios en la composición de la leche
PROPIEDADES FÍSICAS:
• Aumenta:
• el pH > 7
• Conductividad eléctrica
• Viscosidad
• Punto congelación
Disminuye:
– Densidad

OBJETIVOS
PREVENCIÓN DE LAS INFECCCIONES
Medio ambiente
Inmediato a la vaca
Minimizar la contaminación
en el ordeño
Piel de pezones
y ubre

TRANSMISIÓN DE LA
INFECCIÓN
La infección pasa de un cuarto enfermo a otro sano
o a otra vaca por:
‣Pezoneras
‣Fallas en la rutina de ordeño
‣Fallas en máquina de ordeñar
‣Cualquier elemento contaminante que
contacte con pezones.

Mecanismos de defensa contra la mastitis
• Defensa estructural del pezón
• Células somáticas
• Anticuerpos.
• Suplementación en la dieta para reducir la
incidencia de mastitis (Vit. E y selenio)
• Factores solubles no específicos
– Sistema lactoperoxidasa-tiocianato-peróxido de hidrógeno.
– Lisozima
– Complemento de la leche
– Lactoferrina

Infección en la vaca
• RECIÉN PARIDA (1º semana lactancia):
– 20 - 30 % nuevas infecciones
• PRIMEROS DÍAS DEL SECADO: 38-40%

Período de vaca seca
• Involución activa:
– Gran volumen de leche acumulado
– Falta de remoción de leche
– Escasa concentración de sistema defensivo.
• Involución pasiva:
– Epitelio inactivo.
– Desaparecen casi completamente alvéolos
– Escaso volumen de secreción.
– Aumenta la concentración de lactoferrina e inmunoglobulinas.
• Neolactogénesis:
– Período de transición.
– Acumulación de secreciones.
– Falta de remoción de leche.
– Posible escurrido a través del canal del pezón.

MASTITIS
HOSPEDADOR
AMBIENTE
PATOGENO
VACA
TAMBO
Ambientales
Contagiosos
Oportunistas
Otros

Mastitis
• Contagiosas:
– MO que viven y se multiplican en la glándula
mamaria.
– Se transmiten durante el ordeño.
• Ambientales:
– MO causantes viven donde vive el animal.

1- PATOGENOS CONTAGIOSOS
o Transmisión durante el ordeño
o
o
Tambero intermediario (descarte 1º chorros)
Pasan de vaca enferma/infectada a vaca sana.
PRINCIPALES MO:
• Staphylococcus aureus
• Streptococcus agalactiae
• Corynebacterium bovis.
– Streptococcus dysgalactiae (comportamiento)
CONTROL:
HIGIENE
Manos
Pezoneras
Fosa de ordeño.

2- PATOGENOS AMBIENTALES
Fuentes:
• Agua estancada fuera del tambo
• Materia fecal
PRINCIPALES MO:
• Estreptococos ambientales:
– Streptococcus úberis
– Streptococcus dysgalactiae.
• Coliformes:
– Escherichia coli / Klebsiella / Enterobacter /Serratia.
• Staphylococcus coagulasa (-)
• Corynebacterium bovis
• Pseudomona aeruginosa.
MSC
MC

3- PATÓGENOS OPORTUNISTAS
• Los de mayor prevalencia
• Causan las mastitis más leves.
Mycoplasma, levaduras, nocardia, prototecas,
virus, etc.

MO contagiosos
• Streptococcus agalactiae
• Staphylococcus aureus
• Corynebacterium bovis
– Mycoplasma (intermedio)
En general causan:
Infecciones subclínicas de larga duración (crónicas)
Presencia de abundantes MO en leche

Streptococcus agalactiae
Reservorio: leche del cuarto infectado.
Contagio entre terneras alimentadas en
grupo con leche/calostro c/ Str.agal.
El cuarto infectado elimina gran cantidad de
bacterias.
La infección se produce principalmente
durante el ordeño.

• Transmisión:
Streptococcus agalactiae
– Insuficiente higiene de ubres
– Ordeño incompleto de cuartos infectados
• Cuartos con alto RCS
• Signos clínicos: Cambio de color de la leche
• Sensible a la penicilina.
• Fallas en los tratamientos atb.: Infecciones subclínicas
pasan a crónicas.
– Cuartos no funcionales o ciegos.

Corynebacterium bovis
(Actinomyces pyógenes – Archanocabterium)
• Generalmente producen infecciones leves.
• Ligero aumento RCS
• Se observan en rodeos que:
– No realizan terapia de secado.
– No utilizan sellador de pezones.

Bacteria contagiosa
MASTITIS CONTAGIOSA
Staphylococcus aureus
Colonizan y crecen muy bien en la queratina del canal del
pezón.
Los pezones cuarteados favorecen su colonización.
Contagio:
• A través de manos del tambero.
• Restos de leche en la pezonera.
• Retroimpactos al final del ordeño (caída de pezoneras).

Fuentes de infección:
Staphylococcus aureus
• INTRAMAMARIAS:
– vacas infectadas del rodeo.
• Vaquillonas infectadas.
Detección vaq. con mastitis:
‣ Cuartos ciegos
‣ Infección clínica previa al parto, 1º días posparto.
PREVENCION: buen sellado de pezones.

Staphylococcus aureus
• Generan una inflamación crónica.
• Precedidas por episodios de IIM subclínicas con
irrupciones periódicas de síntomas clínicos
(hinchazón moderada y grumos al despunte)
• Infecciones crónicas son extremadamente difíciles de
erradicar con atb. por el tejido cicatrizal formado.
• Cuadros clínicos agudos:
– cuartos calientes, hinchados. Temp. del animal 39,4 a 41,1ºC.
• Algunas infecciones se vuelven gangrenosas.

Mycoplasma
PATOGENO CONTAGIOSO
Tamaño intermedio entre virus y bacteria. Sin pared celular.
Se contagia durante el ordeño.
Dan resultados negativos a repetidos cultivos microbiológicos estándar
realizados a muestras de leche proveniente de vacas con síntomas
clínicos.

Mycoplasma
DIAGNÓSTICO:
‣ Nula o escasa respuesta a antibióticos.
‣ Aparece como un brote
‣ Afecta más de un cuarto al mismo tiempo.
‣ Altos RCS
CONTROL:
• Intensificar higiene en ordeño.
• Cumplir con la rutina de ordeño.
• Segregar / eliminar.
• Evitar contagio.

Mastitis ambientales
Es responsabilidad del productor y del tambero.
• Prevención:
– HIGIENE:
• Establecimiento / tambo.
• Lugar donde vive el animal durante el día
– Camas
– Piquetes
– Llevar registros para tomar mejores decisiones:
• Casos de MC
• RCS (control lechero)
• Datos patógenos en leche de tanque.

Mastitis ambientales
Los microorganismos más comunes son:
• Streptococcus úberis
• Coliformes
Provienen del medio ambiente en que vive la vaca.
Ingresan a la ubre entre ordeños (barro, estiércol).

MO ambientales
• Streptococos ambientales:
– Streptococcus úberis
– Streptococcus dysgalactiae
• Coliformes:
– Escherichia coli
– Klebsiella pneumoniae
– Enterobacter aerógenes
• Enterococos:
– Enterococcus faecalis
– Enterococcus faecium

Estreptococos ambientales
• Proliferan en el entorno de la vaca.
• Infecciones muy comunes en el período de seca.
• Aumenta la prevalencia de infección en :
– Ordeño húmedo.
– Calor
– Humedad
– Vacas más viejas.
• RCS entre 300.000 a 2.000.000/ml.
• Str. dysgalactiae: se clasifica como ambiental, pero
se comporta como contagioso.
• De fácil control: sellado y tratamiento al secado.

MASTITIS POR COLIFORMES
> nº VO en < espacio
contacto con materia fecal
> Prevalencia de mastitis por coliformes

MASTITIS POR COLIFORMES
Ocurrencia:
• En cualquier momento de la lactancia.
• Generalmente similar sintomatología cocos Gran (+)
• Más complicadas en preparto y posparto temprano.
Características:
• Mastitis tóxicas (puede causar la muerte: shock endotóxico)
• Gangrenosas.
• Suelen curarse espontáneamente
• Infecciones más cortas.

MASTITIS POR COLIFORMES
Control
Manejo adecuado del ambiente
• Condiciones higiénicas (verano, lluvias)
• Higiene pre-ordeño
• Vacunas
– NO evita infección por coliformes.
– Disminuye severidad en casos clínicos.

MO oportunistas
• Son los patógenos prevalentes.
• Sólo causan una leve inflamación en tejidos de ubre.
• Prosperan en la superficie de la ubre y de pezones.
• Son una fuente constante de infección intramamaria.
• Generalmente cura espontánea.
• Prevalencia decrece a medida que avanza la lactancia.
• Alta curación espontánea al secado, aprox. 90%.

Otros MO
• Pseudomonas sp
• Arcanobacterium pyógenes
• Nocardia sp
• Mycobacterium sp
• Bacilos
• Levaduras
• Mohos
• Algas
Generalmente las infecciones se deben a procedimientos
poco higiénicos en la aplicación de atb.
Baja prevalencia.

AISLAMIENTO DEL PATÓGENO
• Toma de muestra
• Envío al laboratorio.
• Identificación del patógeno.
• Decidir antibiótico.

Diagnóstico de las mastitis
• En sala de ordeño:
– Examen físico
– Despunte.
– California Mastitis Test (CMT)
– Conductividad eléctrica.
• Recuento electrónico de células somáticas.
• Cultivo de muestras de leche.
• Análisis de leche de tanque.

DIAGNÓSTICO DE MASTITIS
• Cuantificación de los agentes agresores
(bacterias)
• Cuantificación del daño
• Cuantificación de la respuesta del animal

CUANTIFICACIÓN DE AGENTES
AGRESORES (bacterias)
MASTITIS ESPECÍFICAS
• CONTAMINACIÓN DEL PEZÓN
• MUESTRA CONTAMINADA

CUANTIFICACIÓN DEL DAÑO
– Conductividad eléctrica
– Sodio/Potasio
– Nagasa: Nacetil-B-D-glucosaminidasa
– Seroalbúmina bovina
– Antitripsina
– DNA filtrado
– Lactosa

CUANTIFICACIÓN DE LA RESPUESTA
DEL ANIMAL
RECUENTO DE CÉLULAS SOMÁTICAS

Células somáticas
Destruyen los MO infectantes
Reparación de tejido secretor
• Macrófagos (60%)
• Linfocitos (24%)
• Neutrófilos ó leucocitos PMN (15%)
• Células epiteliales (1%)
• El RCS permite evaluar el estado inflamatorio de
la GM.

Se puede medir en:
– Cuartos individuales
– Vacas individuales
– Rodeo completo
– Grupos de vacas
Células somáticas
Las mastitis subclínicas producen el > aporte de células
somáticas a leche de tanque.
• El RCS varía todos los días y semanas.

Información del RCS
• Controlar la prevalencia de MSC del rodeo.
• Evaluar la severidad y duración de IIM.
• Evaluar las medidas de manejo aplicadas para
el control de mastitis.
• Es el mejor indicador del tipo de infecciones del
rodeo.
• Evaluar el manejo preparto y posparto de las
mastitis.
• Informa sobre calidad de leche producida.

Información del RCS
• La interpretación de los RCS deben
basarse en varios resultados:
– Estación del año
– Momento de la lactancia
– Nivel de producción

Utilidad del RCS en vacas individuales
Cultivos bacteriológicos
Tratamientos durante la lactancia
Eliminación de vacas
Orden del ordeño
Secado temprano
Descarte de leche por altos RCS
Selección de vacas de reposición.

Métodos de medición de RCS
Prueba Fundamento Limitaciones y desventajas
Recuento microscópico directo de
células somáticas
Las células son contadas en un
portaobjeto bajo el microscopio.
No es aplicable para un gran número de
muestras.
Filtro de ADN en membrana
Contador Coulter
Las células son atrapadas en un filtro
de membrana y el contenido de ADN se
mide por una reacción de ADN se mide
por una reacción
Utiliza un contador electrónico que
puede ser calibrado para reconocer y
contar las células.
No es aplicable para el control de
grandes cantidades de muestras
Es el método más ampliamente
aplicado
Prueba de Mastitis de Wisconsin
(WMT)
Cuando la leche se mezcla con
detergente, el ADN se "desenrosca" y
se vuelve viscoso.
Cuando más células encuentran
presentes, existe más ADN y la leche se
vuelve viscosa. La velocidad con que
drena por un pequeño agujero se
enllentece y la cantidad de leche que
queda en el tubo se mide como el
conteo de células.
Es un método indirecto
Prueba de Mastitis de California (CMT)
Este es una adaptación de la Prueba de
Mastitis de Wisconsin, en el que el
detergente se mezcla con una paleta
(cuatro platos planos, uno por cada
cuarto) y al grado de formación de gel
se le otorga un puntaje por medio de
estimación visual.
Solamente da una gruesa estimación
pero tiene la ventaja de ser aplicable al
lado de la vaca.

Relación Índice – Calificación de las pruebas
de mastitis, RCS y producción de leche
perdida
CMT WMT RCS/miles Pérdida Producción
(mm)
Lechera
0 3 – 6 140 – 225 3%
Trazas 7 – 10 260 – 380 5%
1 11 – 24 420 – 1200 8 – 12%
2 25 – 35 1280 – 2280 16 – 20%
3 >3000 25 – 45%

RCS DE TANQUE
RCS tanque 1/4 infect. pérd.prod.
200.000 6 % 0 %
500.000 16 % 6 %
1.000.000 32 % 18 %
1.500.000 48 % 29 %

LECHE DE TANQUE
Toma de muestra
MUESTRA DE CALIDAD
• Debe ser representativa
– 5 mín. tanque chico (1000 litros)
– Toam muestra parte superior tanque. NUNCA DEL GRIFO.
• Mantenerla refrigerada hasta 24 hs.
• No congelar
• Recipiente estéril (bacteriología).
• Nº muestras: ideal seriado (SA)
homogénea

ANÁLISIS DE LECHE DE
TANQUE
ANÁLISIS
VALOR DE REF.
RCS
UFC
200.00/ml
< 10.000/ml
Rto. Pasteuriz. Lab.(RPL) 200 a 300 UFC/ml
Rto. Bact. Coliformes
< 100 UFC/ml

Indicadores análisis de Leche de tanque
1- Recuento mesófilos viables/ml (UFC):
• Bacterias que se multiplican a temp. ambiente
30ºC.
• Indican nivel de higiene en:
• Pezoneras.
• Limpieza establecimiento.
Valor óptimo:

Indicadores análisis de Leche de tanque
2- Recuento de coliformes (E. coli)
Presencia de materia fecal.
Contamina pezones por caída pezoneras
Niveles altos indican problema de higiene.

Indicadores análisis de Leche de tanque
3- Recuento de bacterias termodúricas
(RPL):
Indican:
Desarrollan a temp. de 60-65ºC.
• Problemas de higiene en máquina de ordeñar:
• Pezoneras: mucho uso, mal lavadas.
• Higiene del equipo: NO óptima.

Niveles UFC/ml en leche de tanque
para bacterias de mastitis
Tipo de bacteria
Streptococcus
agalactiae
Staphylococcus
aureus
Streptococcus
no-agalactiae
Coliformes
Nivel Bajo* Moderado* Alto* Muy Alto*
0 a 1 1 a 200 200 a 400 >a 400
a 250
500 a 700 700 a 1200 1200 a 2000 >a 2000
a 700
Staphylococcus
no-aureus
a 750
*Laboratorio de Salud Animal de Wisconsin