AC 2005 Vol-1.pdf - Cecmed - Infomed

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34 Métodos para la evaluación... Según la Farmacopea Europea [31], el empleo de ratones B6D2F1 de 8 semanas, es adecuado para el desarrollo del ensayo en ratones normocitémicos con una dosis única. Igualmente señala el uso de la citometría de flujo para el recuento de reticulocitos. Otros reportes [36, 37] plantean con buenos resultados, el uso de ratones hembras CF1 y BALB/c de 8 semanas con múltiples inyecciones, así como distintas variantes para el conteo no automatizado de reticulocitos. Métodos para el conteo de reticulocitos El número de reticulocitos en circulación es un indicador temprano del estatus funcional de la eritropoyesis. El contenido de RNA de los hematíes es directamente proporcional a la edad celular, siendo mayor en las células más jóvenes y ausente en la forma madura. Heilmeyer y Wethauser (1932) [38], clasificaron los reticulocitos en 4 estados (I, II, III y IV), reflejando el incremento de la madurez eritroide basado en el patrón de precipitación de RNA teñido con azul de metileno. Los reticulocitos son eritrocitos inmaduros que han perdido el núcleo, pero que contienen organelos residuales (es decir, ribosomas y mitocondrias), los cuales contienen ácido ribonucleico (RNA) y ácido desoxirribonucleico (DNA), aspecto que los hace fácilmente reconocibles por microscopía. [25, 33]. El conteo del número de reticulocitos resulta de gran valor en la clínica en el diagnóstico de la anemia. Métodos manuales y automatizados han sido aplicados para la medición de reticulocitos en ratones tratados con rhEPO. El conteo visual usando tinciones supravitales tales como azul brillante de cresil (BSB), se ha reportado que puede tener amplia variabilidad intra-observador, que es de larga duración y frecuentemente no confiable [39, 40]. No obstante, otros autores plantean que esta variación, puede minimizarce al realizar la lectura de tres láminas independientes del mismo animal. Este método es un aún ampliamente usado en laboratorios químicos clínicos. Por otro lado, se reporta la hemolisis selectiva y el conteo de reticulocitos en cámara de Neubauer los cuales han mostrado correlación y resultados equivalentes al método automatizado [30, 40, 41]. Aunque la hemolisis, se ha señalado, también constituye una técnica muy larga y trabajosa necesitándose dos o más ensayos independientes para alcanzar la precisión necesaria. El método automatizado se ha desarrollado en procedimientos basados en la fluorescencia o absorbancia de colorantes (naranja de tiazol y azul de metileno respectivamente) que interactúan con el RNA del reticulocito. La precisión y exactitud del conteo han sido marcadamente desarrolladas, adicionándose numerosos parámetros a la investigación [40,42]. En el método estándar para el recuento de reticulocitos que utiliza el colorante vital Nuevo Azul de Metileno, las muestras de sangre se tiñen con este reactivo, se prepara un extendido y luego las células teñidas se cuentan con un microscopio de luz [43]. Sin embargo, este método es muy laborioso y está limitado por el error de muestreo estadístico inherente a un recuento de mil células. Cuando se emplean modificaciones del mismo, se ha reportado disminución aún más de la reproducibilidad [44]. La variabilidad que se reporta en general en el conteo manual de reticulocitos entre observadores y el reducido valor de células contadas, ha sido atribuido a inconsistencia en la clasificación de la mayor parte de los reticulocitos maduros

Métodos para la evaluación... 35 (Heilmeyer, IV estado), los cuales pueden contener solo un gránulo simple de reticulina [45]. La interpretación del conteo absoluto de reticulocitos se dificulta además, ya que el conteo total refleja no solo la proporción de producción de hematíes, sino también el cambio entre los diferentes estados del reticulocito. En el individuo normal (no anémico), el reticulocito madura tres días en la médula ósea y se encuentra en la circulación periférica durante el cuarto día. El aumento de la eritropoyesis tiende a acelerar la maduración en la médula y alargar la duración de la maduración en la sangre. Los reticulocitos que tienen entre uno y tres días (reticulocitos de "transición"), pueden encontrarse en la sangre periférica y se cuentan como si fueran reticulocitos de cuatro días. Para hacer una estimación exacta de la eritropoyesis, hay que corregir el recuento por los reticulocitos de "transición" [46]. En años recientes, la citometría de flujo ha surgido como un método muy eficaz para el análisis y el conteo de células poblacionales individuales a través del tamaño, contenido y marcadores de superficie celulares. Ciertos colorantes fluorecentes unidos a RNA/DNA permiten la distinción de células como los reticulocitos [47]. Numerosos fluorocromos han sido empleados incluyendo pyronin [48] , naranja de acridina [49] y thioflavin T [50], pero con limitaciones para su empleo clínico. Con la introducción del naranja de thiazole en 1986 [51], surgió un fluorocromo importante para el conteo de rutina de reticulocitos. El empleo del kit Retic-Count TM para el conteo de reticulocitos en sangre periférica humana ha sido reportado. Retic-Count es el nombre comercial del 4- metilbecensulfonato de 1-metil-4[(3-metil- 2 (3H)-benzotiazolidin) metil quinolinio (Naranja de Tiazol), que es sintetizado por Becton Dickinson Inmunocitometry Systems (BDIS) [52], el cual permite determinar los reticulocitos como un porcentaje de los eritrocitos totales en sangre periférica humana. El reactivo se une al RNA y el DNA, formando un complejo fluorescente de núcleotidoreactivo que muestra una banda de absorción a 475 nm (luz azul) y una banda de emisión fluorescente a 530 nm (luz verde), propiedad que permite su uso en los citómetros de flujo equipados con un láser a 488 nm, como es el caso de los citómetros de flujo FACS-Calibur, FACSort, FACScan y FACStrak. El uso de Retic-COUNT, se plantea que ofrece ventajas importantes, como es el conteo de diez veces más células, mejorando así la exactitud de la muestra estadística [53]. Un recuento típico requiere menos de un minuto al operador y las células que se cuentan están en suspensión, de manera que se eliminan los errores de distribución creados en las preparaciones de extendidos de sangre. Además, si se encuentra disponible en el equipo el uso del software Retic-Count, se ofrecen ventajas adicionales, ya que posibilita la reducción de la variabilidad debido al operador durante el análisis, al colocar marcadores automáticos, los resultados se calculan y se imprimen automáticamente y no se requiere del tubo de control incoloro. Estudios realizados por nuestro laboratorio (aún sin concluir), han evidenciado la posibilidad de aplicación de dicho kit en el conteo de reticulocitos en ratones tratados con rhEPO. Métodos Alternativos Métodos alternativos para la evaluación de potencia de preparaciones de rhEPO son reportados en investigaciones recientes.

Métodos para la evaluación... 35<br />

(Heilmeyer, IV estado), los cuales pueden<br />

contener solo un gránulo simple de<br />

reticulina [45]. La interpretación del<br />

conteo absoluto de reticulocitos se<br />

dificulta además, ya que el conteo total<br />

refleja no solo la proporción de producción<br />

de hematíes, sino también el cambio entre<br />

los diferentes estados del reticulocito.<br />

En el individuo normal (no anémico), el<br />

reticulocito madura tres días en la médula<br />

ósea y se encuentra en la circulación<br />

periférica durante el cuarto día. El<br />

aumento de la eritropoyesis tiende a<br />

acelerar la maduración en la médula y<br />

alargar la duración de la maduración en la<br />

sangre. Los reticulocitos que tienen entre<br />

uno y tres días (reticulocitos de<br />

"transición"), pueden encontrarse en la<br />

sangre periférica y se cuentan como si<br />

fueran reticulocitos de cuatro días. Para<br />

hacer una estimación exacta de la<br />

eritropoyesis, hay que corregir el recuento<br />

por los reticulocitos de "transición" [46].<br />

En años recientes, la citometría de flujo ha<br />

surgido como un método muy eficaz para<br />

el análisis y el conteo de células<br />

poblacionales individuales a través del<br />

tamaño, contenido y marcadores de<br />

superficie celulares. Ciertos colorantes<br />

fluorecentes unidos a RNA/DNA permiten<br />

la distinción de células como los<br />

reticulocitos [47]. Numerosos<br />

fluorocromos han sido empleados<br />

incluyendo pyronin [48] , naranja de<br />

acridina [49] y thioflavin T [50], pero con<br />

limitaciones para su empleo clínico. Con<br />

la introducción del naranja de thiazole en<br />

1986 [51], surgió un fluorocromo<br />

importante para el conteo de rutina de<br />

reticulocitos.<br />

El empleo del kit Retic-Count TM para el<br />

conteo de reticulocitos en sangre periférica<br />

humana ha sido reportado. Retic-Count es<br />

el nombre comercial del 4-<br />

metilbecensulfonato de 1-metil-4[(3-metil-<br />

2 (3H)-benzotiazolidin) metil quinolinio<br />

(Naranja de Tiazol), que es sintetizado por<br />

Becton Dickinson Inmunocitometry<br />

Systems (BDIS) [52], el cual permite<br />

determinar los reticulocitos como un<br />

porcentaje de los eritrocitos totales en<br />

sangre periférica humana. El reactivo se<br />

une al RNA y el DNA, formando un<br />

complejo fluorescente de núcleotidoreactivo<br />

que muestra una banda de<br />

absorción a 475 nm (luz azul) y una banda<br />

de emisión fluorescente a 530 nm (luz<br />

verde), propiedad que permite su uso en<br />

los citómetros de flujo equipados con un<br />

láser a 488 nm, como es el caso de los<br />

citómetros de flujo F<strong>AC</strong>S-Calibur,<br />

F<strong>AC</strong>Sort, F<strong>AC</strong>Scan y F<strong>AC</strong>Strak. El uso<br />

de Retic-COUNT, se plantea que ofrece<br />

ventajas importantes, como es el conteo de<br />

diez veces más células, mejorando así la<br />

exactitud de la muestra estadística [53]. Un<br />

recuento típico requiere menos de un<br />

minuto al operador y las células que se<br />

cuentan están en suspensión, de manera<br />

que se eliminan los errores de distribución<br />

creados en las preparaciones de extendidos<br />

de sangre. Además, si se encuentra<br />

disponible en el equipo el uso del software<br />

Retic-Count, se ofrecen ventajas<br />

adicionales, ya que posibilita la reducción<br />

de la variabilidad debido al operador<br />

durante el análisis, al colocar marcadores<br />

automáticos, los resultados se calculan y<br />

se imprimen automáticamente y no se<br />

requiere del tubo de control incoloro.<br />

Estudios realizados por nuestro laboratorio<br />

(aún sin concluir), han evidenciado la<br />

posibilidad de aplicación de dicho kit en el<br />

conteo de reticulocitos en ratones tratados<br />

con rhEPO.<br />

Métodos Alternativos<br />

Métodos alternativos para la evaluación de<br />

potencia de preparaciones de rhEPO son<br />

reportados en investigaciones recientes.

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