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Modelado para la predicción de enfermedades en cultivos de alto valor comercial patogenicidad de Fusarium solani fue evaluada en plantines “Sharp Blue” y “Georgia Gem” con resultados positivos. Phytophthora sp, se aisló de raíces de plantas con amarillamiento de hojas, necrosis de raíces y escaso crecimiento, provenientes de Mercedes, Pilar y Concordia. Atizonamiento de tallos, dieback y decoloración de la médula, fue asociada a Phomopsis vaccinii, en muestras de Mercedes, Tandil, Gualeguaychú y Federación. Colletotrichum gloeosporioides, fue aislado de San Pedro y Zárate, Curvularia sp de San Antonio de Areco, Pythium sp de Pilar, Phoma sp de Capilla del Monte, Rhizoctonia sp de Pilar y Arroyo de la Cruz y Stemphyllium sp de San Antonio de Areco y Capilla del Monte. En Arrecifes y Mercedes se aisló un Ascomycete, aún no identificado, de puntuaciones negras en hojas y tallos. También fueron aislados Humicola grisea y Sclerotium bataticola, no citados en la bibliografía internacional [Farr et al., 1989; Caruso y Ramsdell, 1995]. El primero asociado a dieback y manchas grises con halo metaplásico rojo en tallos. El segundo en tallo inferior interno. Ambos hongos fueron aislados de Mercedes, La Plata, Baradero y San Pedro [Wright et al., 2005]. Sclerotinia sclerotiorum fue obtenido de plantas con podredumbre de la base del tallo. Trichoderma sp fue aislado de raíces y suelo; es un hongo benéfico utilizado para control biológico de patógenos del suelo y aéreos [Wright, 2004]. En La Plata, La Punilla y Gualeguaychú se aisló Botrytis cinerea de tallos y flores. Las ramas se tornaron marrones y luego gris-tostado con presencia de esclerocios negros [Caruso y Ramsdell, 1995]. Las pruebas de patogenicidad fueron positivas. 2.3.2.2. Bacteriosis Aislamientos bacterianos se obtuvieron de tumores en raíces y base de tallos procedentes de Buenos Aires (Arrecifes, La Plata, General Belgrano, Pilar, Tandil) y Entre Ríos (Concordia, Gualeguaychú). Las variedades “O’ Neal” y “Reveille” fueron las más afectadas, además de las variedades “Blue Crisp”, “Elliot” y “Ozark Blue”. Los síntomas son compatibles con los causados por Agrobacterium tumefaciens. La presencia de agallas de corona en plantaciones jóvenes de arándano, sugiere la necesidad de implementar prácticas para reducir la incidencia de la enfermedad [Wright et al., 2005]. 54

Modelado para la predicción de enfermedades en cultivos de alto valor comercial 2.3.3. Enfermedades en localidades de Buenos Aires y Entre Ríos. Distribución e incremento de patógenos. Período 2007/08 Durante el período 2007/08, se muestrearon (en 2 a 5 oportunidades) viveros y fincas comerciales de arándano en Buenos Aires (Bragado, Chascomús, Colonia Urquiza, Exaltación de la Cruz, Lima, Mercedes, San Pedro) y Entre Ríos (Concordia, Gualeguaychú). El material vegetal y/o suelo fue conservado a 5ºC hasta su procesamiento en laboratorio. La incubación en placas con agar papa glucosado 2%, agar zanahoria 5%, etc, de porciones de tejido enfermo, de más de 556 muestras, previamente desinfectado, fue efectuada a 20ºC y 12 horas de luz. Los cultivos fungales fueron estudiados con lupa y microscopio óptico utilizando la bibliografía disponible. Uredosporas del hongo causante de roya fueron colectadas de pústulas presentes en hojas infectadas de cultivares susceptibles (a campo e invernáculo) utilizando una bomba de vacío. La severidad de la roya a campo (planta adulta) fue registrada utilizando una escala de 0 a 100% y respuesta según tipo de pústula: resistente (R), moderadamente resistente (MR), moderadamente susceptible (MS) y susceptible (S), obteniéndose una lectura combinada (ej. 50 MS = 50% de severidad con respuesta moderadamente susceptible). Para plantines jóvenes de invernáculo se utilizó una escala de 0 a 4 considerando tipo de reacción (R, MR, MS, S). Las esporas de roya, como de otros hongos, se conservaron a 5ºC y a -20ºC en glicerol 20% en la Colección de Microorganismos (FAUBA e IMYZA). La prueba de patogenicidad se realizó en plantas proporcionadas por el Laboratorio de Macropropagación Vegetativa de FAUBA, siguiendo los protocolos descriptos para cada microorganismo [Wright et al., 2008]. Pústulas del hongo causal de roya (Pucciniastrum vaccinii) fueron observadas en plantas adultas a campo en todas las localidades (38 muestras) alcanzando el pico de severidad en diciembre. En San Pedro, la enfermedad se manifestó (diciembre de 2007) como manchas oscuras en la cara superior de las hojas en correspondencia a pústulas amarillas en la cara inferior, con abundante esporulación en cultivares “Sharp Blue” (40 MS-S, 40% de severidad con respuesta moderadamente susceptible a susceptible). En Bragado, para la misma época, la enfermedad se manifestó en los cultivares “Blue Crisp”, “O´ Neal”, “Misty”, “Blue Cuinex” y “Star”, con variable severidad y respuesta. En monitoreos posteriores (febrero-abril de 2008), la roya no fue evidente en plantas adultas a campo. Sin embargo, un severo ataque fue observado (marzo-abril de 2008) en plantines de vivero. El tipo de infección varió con el 55

<strong>Modelado</strong> para la predicción de <strong>enfermedades</strong> en <strong>cultivos</strong> de alto valor comercial<br />

2.3.3. Enfermedades en localidades de Buenos Aires y Entre Ríos.<br />

Distribución e incremento de patógenos. Período 2007/08<br />

Durante el período 2007/08, se muestrearon (en 2 a 5 oportunidades) viveros y<br />

fincas comerciales de arándano en Buenos Aires (Bragado, Chascomús,<br />

Colonia Urquiza, Exaltación de la Cruz, Lima, Mercedes, San Pedro) y Entre<br />

Ríos (Concordia, Gualeguaychú). El material vegetal y/o suelo fue conservado<br />

a 5ºC hasta su procesamiento en laboratorio. La incubación en placas con agar<br />

papa glucosado 2%, agar zanahoria 5%, etc, de porciones de tejido enfermo,<br />

de más de 556 muestras, previamente desinfectado, fue efectuada a 20ºC y 12<br />

horas de luz. Los <strong>cultivos</strong> fungales fueron estudiados con lupa y microscopio<br />

óptico utilizando la bibliografía disponible. Uredosporas del hongo causante de<br />

roya fueron colectadas de pústulas presentes en hojas infectadas de cultivares<br />

susceptibles (a campo e invernáculo) utilizando una bomba de vacío. La<br />

severidad de la roya a campo (planta adulta) fue registrada utilizando una<br />

escala de 0 a 100% y respuesta según tipo de pústula: resistente (R),<br />

moderadamente resistente (MR), moderadamente susceptible (MS) y<br />

susceptible (S), obteniéndose una lectura combinada (ej. 50 MS = 50% de<br />

severidad con respuesta moderadamente susceptible). Para plantines jóvenes<br />

de invernáculo se utilizó una escala de 0 a 4 considerando tipo de reacción (R,<br />

MR, MS, S). Las esporas de roya, como de otros hongos, se conservaron a 5ºC<br />

y a -20ºC en glicerol 20% en la Colección de Microorganismos (FAUBA e<br />

IMYZA). La prueba de patogenicidad se realizó en plantas proporcionadas por<br />

el Laboratorio de Macropropagación Vegetativa de FAUBA, siguiendo los<br />

protocolos descriptos para cada microorganismo [Wright et al., 2008].<br />

Pústulas del hongo causal de roya (Pucciniastrum vaccinii) fueron observadas<br />

en plantas adultas a campo en todas las localidades (38 muestras) alcanzando<br />

el pico de severidad en diciembre. En San Pedro, la enfermedad se manifestó<br />

(diciembre de 2007) como manchas oscuras en la cara superior de las hojas en<br />

correspondencia a pústulas amarillas en la cara inferior, con abundante<br />

esporulación en cultivares “Sharp Blue” (40 MS-S, 40% de severidad con<br />

respuesta moderadamente susceptible a susceptible). En Bragado, para la<br />

misma época, la enfermedad se manifestó en los cultivares “Blue Crisp”, “O´<br />

Neal”, “Misty”, “Blue Cuinex” y “Star”, con variable severidad y respuesta. En<br />

monitoreos posteriores (febrero-abril de 2008), la roya no fue evidente en<br />

plantas adultas a campo. Sin embargo, un severo ataque fue observado<br />

(marzo-abril de 2008) en plantines de vivero. El tipo de infección varió con el<br />

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