Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
OBS ! Provfördelning kan kontrolleras visuellt i detta hanteringssteg. Efter tillsats av prov ändrar spädningsvätskan<br />
färg från grönt till blått för att visa att provet eller kontrollen är tillsatt i brunnen. När innehållet i varje brunn<br />
blandas väl är färgen enhetlig. Cellodlingsprover uppvisar eventuellt inte någon färgförändring beroende på det<br />
cellodlingsmedium som används. (Se punkt 12 angående automatisk verifiering - SPEKTROFOTOMETRISK<br />
VERIFIERING AV PROV- OCH REAGENSPIPETTERING)<br />
5. Täck om möjligt mikroplattan med självhäftande film. Tryck fast den ordentligt över plattan så att det blir tätt.<br />
6. Inkubera plattan i 60 ± 5 minuter vid 37 ± 1°C eller 40 ± 1°C i en statisk inkubator med torr värme.<br />
7. Ta bort den självhäftande filmen. Aspirera innehållet i alla brunnar till en behållare för smittförande avfall<br />
(innehållande natriumhypoklorit). Fördela minst 0,370 ml tvättlösning till varje brunn. Vänta under en blötningstid<br />
på 20 till 60 sekunder. Sug upp igen. Upprepa detta 4 gånger (dvs. totalt minst 5 tvättar). Den återstående<br />
volymen måste vara mindre än 10 µL. (Om det behövs kan du torka mikroplattan genom att vända den upp och<br />
ned på ett absorberande papper).<br />
Om automatisk tvättare används ska samma förfarande följas.<br />
8. Fördela snabbt 100 µL av konjugatarbetslösning 1 till alla brunnar.<br />
Konjugatet måste skakas varsamt innan användning.<br />
OBS ! Tillsats av konjugatarbetslösning 1 som är färgad gul kan kontrolleras visuellt vid detta steg av analysen.<br />
9. Täck om möjligt mikroplattan med självhäftande folie. Inkubera plattan i 30 ± 5 minuter vid 37 ± 1°C eller<br />
40 ±1°C i en statisk inkubator med torr värme.<br />
10. Ta bort den självhäftande filmen. Aspirera innehållet i alla brunnar i en behållare för smittförande avfall<br />
(innehållande natriumhypoklorit). Fördela minst 0,370 ml tvättlösning till varje brunn. Vänta under en blötningstid<br />
på 20 till 60 sekunder. Sug upp igen. Upprepa detta 4 gånger (dvs. totalt minst 5 tvättar). Den återstående<br />
volymen måste vara mindre än 10 µl. (Om det behövs kan du torka mikroplattan genom att vända den upp och<br />
ned på ett absorberande papper.)<br />
11. Fördela snabbt 100 µL av konjugatarbetslösning 2 till alla brunnar.<br />
Konjugatet måste skakas varsamt innan användning.<br />
Observera : Tillsats av konjugatarbetslösning 2 som är grönfärgad kan kontrolleras visuellt vid detta steg av analysen.<br />
12. Täck om möjligt mikroplattan med självhäftande film. Inkubera plattan i 30 ± 5 minuter vid 37 ± 1°C eller<br />
40 ± 1°C i en statisk inkubator med torr värme.<br />
13. Ta bort den självhäftande filmen, töm alla brunnar genom att suga upp vätskan och tvätta minst 5 gånger enligt<br />
ovanstående beskrivning. Den återstående volymen måste vara mindre än 10 µl. (Om det behövs kan du torka<br />
remsorna genom att vända dem upp och ned på ett absorberande papper.)<br />
14. Fördela snabbt i varje brunn 100 µl av framkallningslösningen (R8+R9) som beretts strax före användningen. Låt<br />
reaktionen fortgå i mörker i 30 ± 5 minuter vid rumstemperatur (18–30°C). Använd ingen självhäftande folie<br />
under denna inkubering.<br />
Obs ! Fördelningen av framkallningslösningen, som är rosafärgad, kan kontrolleras visuellt i denna fas av<br />
hanteringen. Det finns en klar färgskillnad mellan tomma brunnar och brunnar med den rosafärgade substratlösningen.<br />
(Se avsnitt 12 om automatisk verifiering : SPEKTROFOTOMETRISK PROV- OCH REAGENSPIPETTERING)<br />
15. Tillsätt 100 µl av stopplösningen (R10). Använd samma ordningsföljd och fördelningshastighet som för<br />
substratlösningen. Homogenisera reaktionsblandningen.<br />
OBS ! Fördelningen av stopplösningen, som är färglös, kan kontrolleras visuellt i denna fas av hanteringen. Efter<br />
tillsats av stopplösningen försvinner substratets rosa färg (för negativa prover) eller ändrar färg från blått till gult<br />
(för positiva prover).<br />
16. Torka noggrant av mikroplattans botten. Vänta minst 4 minuter efter tillsatsen av stopplösningen innan avläsning<br />
görs. Avläs den optiska densiteten vid 450/620-700 nm med hjälp av mikroplattans avläsare inom 30 minuter<br />
efter att reaktionen har avbrutits.<br />
17. Kontrollera alla resultat med avseende på överensstämmelse mellan avläsning och provtillsats- och identifieringsprotokoll<br />
för plattan.<br />
11 - BERÄKNING OCH UTVÄRDERING AV RESULTAT<br />
1) Validering av resultat<br />
En analysomgång är giltig om följande kriterier uppfylls :<br />
• Absorbansvärdet för varje negativ kontroll (NC) (eller cellodlingskontroll, om tillämpligt) är större än 0,000 AU och<br />
mindre än eller lika med 0,100 AU. Ett värde för den negativa kontrollen kan kasseras om det faller utanför<br />
gränsvärdet. NC-medelvärdet kan beräknas från de två återstående absorbansvärdena. Om två eller fler negativa<br />
kontroller ligger utanför gränsen, är plattan ogiltig och testet måste upprepas.<br />
• Medelvärdet för de positiva kontrollerna (PCX) måste vara större än eller lika med 0,500 AU och de enskilda<br />
absorbansvärdena måste ligga inom intervallet för reproducerbarheten på 0,65 till 1,35 gånger PCX. Inget värde<br />
för den positiva kontrollen får uteslutas.<br />
82