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GENETIC SYSTEMS™ HIV-1 Ag EIA

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8. Distribuir rapidamente 100 µl da solução de trabalho conjugado 1 por todos os poços. O conjugado deve ser<br />

agitado, antes da utilização.<br />

Nota: a distribuição da solução de trabalho do conjugado 1, de cor amarela, pode ser verificada visualmente<br />

nesta fase da manipulação.<br />

9. Se possível, cobrir a microplaca com uma película nova. Incubar 30 ± 5 minutos a 37 ± 1°C ou a 40 ± 1°C<br />

numa incubadora estática de calor seco.<br />

10. Retirar a película adesiva. Aspirar o conteúdo de todos os poços para um contentor de resíduos contaminados<br />

(contendo hipocloreto de sódio) e adicionar imediatamente, em cada um deles, um mínimo de 0,370 ml de<br />

solução de lavagem. Respeitar um tempo de imersão (tempo de espera) de 20 a 60 segundos. Aspirar de novo.<br />

Repetir a lavagem 4 vezes (num mínimo de 5 lavagens). O volume residual deve ser inferior a 10 µl (se<br />

necessário, secar a placa por inversão sobre uma folha de papel absorvente).<br />

11. Distribuir rapidamente 100 µl da solução de trabalho conjugado 2 em todos os poços. O conjugado deve ser<br />

agitado antes da utilização.<br />

Nota: a distribuição da solução de trabalho do conjugado 2, de cor verde, pode ser verificada visualmente nesta<br />

fase da manipulação.<br />

12. Se possível, cobrir a microplaca com uma película nova. Incubar durante 30 ± 5 minutos a 37 ± 1°C ou a 40<br />

± 1°C, numa incubadora estática de calor seco.<br />

13. Retirar a película adesiva, esvaziar todos os poços por aspiração e lavar, pelo menos, 5 vezes como<br />

anteriormente. O volume residual deve ser inferior a 10 µl (se necessário, secar as tiras por inversão sobre uma<br />

folha de papel absorvente).<br />

14. Distribuir rapidamente por todos os poços 100 µl da solução de revelação da actividade enzimática (R8 + R9),<br />

anteriormente preparada. Deixar que a reacção se desenvolva no escuro durante 30 ± 5 minutos à temperatura<br />

ambiente (18 a 30°C). Nesta incubação não utilizar película adesiva.<br />

Nota: A distribuição da solução de revelação, de cor rosa, pode ser controlada visualmente nesta fase da<br />

manipulação : observa-se uma diferença de coloração significativa entre um poço vazio e um poço contendo a<br />

solução de revelação rosa (consultar o parágrafo 12 para a verificação automática, VERIFICAÇÃO<br />

ESPECTROFOTOMÉTRICA DO DEPÓSITO DAS AMOSTRAS E DOS REAGENTES).<br />

15. Adicionar 100 µl da solução de paragem (R10), adoptando a mesma sequência e o mesmo ritmo de distribuição<br />

que para a solução de revelação. Homogeneizar a mistura reaccional.<br />

Nota : A distribuição da solução de paragem, que é incolor, pode ser controlada visualmente nesta fase da<br />

manipulação. A coloração do substracto, rosa (para as amostras negativas) ou azul (para as amostras positivas)<br />

desaparece dos poços, que assim se tornam incolores (para as amostras negativas), ou amarelos (para as<br />

amostras positivas), após adição da solução de paragem.<br />

16. Secar cuidadosamente a superfície inferior das placas. Pelo menos 4 minutos após a distribuição da solução de<br />

paragem e nos 30 minutos que se seguem à paragem da reacção, proceder à leitura da densidade óptica a<br />

450/620-700 nm por meio de um leitor de placas.<br />

17. Antes da passar à transcrição dos resultados, garantir a concordância entre a leitura e o plano de distribuição<br />

e de identificação das placas e das amostras.<br />

11 - CÁLCULO E INTERPRETAÇÃO DOS RESULTADOS<br />

1 - Validação do teste<br />

Um teste é válido se forem verificados os critérios seguintes :<br />

• Os valores de absorvência individuais dos controlos negativos (ou dos controlos de meio de cultura de células,<br />

se for o caso), devem ser superiores a 0,000 UA e inferior ou iguais a 0,100 UA. Um dos valores de absorvência<br />

de um poço do controlo negativo pode ser eliminado, se se situar fora destes padrões. A média dos controlos<br />

negativos pode, neste caso, ser calculada a partir dos dois valores de absorvência restantes. Se dois ou mais<br />

controlos negativos não respeitarem estes critérios, a quantificação deve ser efectuada de novo.<br />

• As absorvências médias dos controlos positivos devem ser superiores ou iguais a 0,500 UA e o valor de<br />

absorvência de cada controlo positivo deve situar-se dentro do domínio de reprodutibilidade de 0,65 a 1,35<br />

vezes a média dos controlos positivos. Todos os valores de absorvência dos controlos positivos devem ser tidos<br />

em conta.<br />

2 - Cálculo da média das absorvências<br />

A partir dos controlos validados, determinar as absorvências médias dos controlos negativos e positivos, dividindo<br />

a soma dos seus valores de absorvência pelo número de controlos utilizados.<br />

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