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Tabelle 1 Im BBL Crystal ANR-ID-System gespeicherte Taxa Gramnegative Bakterien Gallentolerant Gallenempfindlich, Nicht pigmentiert, Bacteroides fragilis Gruppe nicht pigmentiert dellenbildend B. caccae Prevotella Bacteroides B. distasonis Gruppe10 P. bivia B. ureolyticus B. eggerthii P. buccae Campylobacter B. fragilis P. buccalis C. gracilis B. ovatus P. disiens Fusobacterium B. stercoris P. oralis F. gonidiaformans1,11 B. thetaiotaomicron P. oris F. mortiferum B. uniformis P. veroralis11 F. necrophorum B. vulgatus Nicht pigmentiert, F. nucleatum Andere: nicht dellenbildend F. russii B. splanchnicus Bacteroides F. varium Porphyromonas levii11 B. capillosus Leptotrichia Gallenempfindlich, pigmentiert Tissierella L. buccalis Capnocytophaga Spezies T. praeacuta Prevotella Gallentolerant, P. corporis nicht pigmentiert P. denticola Bilophila P. intermedia B. wadsworthia P. loescheii Desulfomonas P. melaninogenica D. pigra Porphyromonas Desulfovibrio Spezies P. asaccharolytica Campylobacter P. endodontalis P. gingivalis C. curvus/rectus Schlüssel: 1 = Taxon nur in BBL Crystal, BBL Schaedler-Datenbank. 2 = Taxon nur in BBL Crystal, BBL Schaedler- und BBL Crystal alternativen Blutagar-Datenbanken. 3 = Einschließlich B. distasonis und B. merdae. 4 = Diese Taxa haben < 10 einzigartige BBL Crystal Profile in der aktuellen Datenbank. Clostridia Nicht sporenbildende Grampositive Kokken grampositive Bakterien Clostridium Actinomyces Gemella C. baratii A. bovis G. morbillorum C. beijerinckii A. israelii Peptostreptococcus C. bifermentans A. meyeri P. anaerobius C. botulinum A. naeslundii P. asaccharolyticus C. butyricum A. odontolyticus P. indolicus C. cadaveris A. pyogenes P. magnus C. clostridioforme A. viscosus P. micros C. difficile Atopobium P. prevotii C. glycolicum A. minutum P. tetradius C. hastiforme Bifidobacterium Ruminococcus C. histolyticum B. adolescentis R. productus11 C. innocuum B. dentium Staphylococcus C. limosum B. Spezies S. saccharolyticus C. novyi A Eubacterium Streptococcus C. paraputrificum11 E. aerofaciens S. constellatus C. perfringens E. lentum S. intermedius C. putrificum1 E. limosum Gramnegative Kokken C. ramosum Mobiluncus Veillonella Spezies C. septicum M. curtisii C. sordellii M. mulieris C. sphenoides M. Spezies2,11 C. sporogenes Propionibacterium C. subterminale P. acnes C. tertium P. avidum C. tetani4 P. granulosum4 P. propionicum Lactobacillus L. acidophilus L. casei L. catenaforme L. fermentum L. jensenii L. johnsonii L. rhamnosus 21
Tabelle 2 Im BBL Crystal ANR-ID-System angewandte Verfahrensprinzipien Panel- Prinzip Position Testsubstrat Code (Literaturnachweis) 4A Fluoreszierende negative Kontrolle FCT Kontrolle zur Standardisierung der fluoreszierenden Substratresultate. 2A L-Arginin-AMC FAR Enzymatische Hydrolyse der Amid- oder Glykosidbindung setzt fluoreszierende Cumarinderivate frei.19-21 1A L-Histidin-AMC FHI 4B 4MU-α-D-Mannosid FAM 2B L-Serin-AMC FSE 1B L-Isoleucin-AMC FIS 4C 4MU-β-D-Mannosid FBM 2C Glycin-AMC FGL 1C L-Alanin-AMC FAL 4D 4MU-N-Azetyl-β-D-Galaktosaminid FGA 2D L-Pyroglutaminsäure-AMC FPY 1D L-Lysin-AMC FLY 4E L-Methionin-AMC FME 2E 4MU-β-D-Cellobiopyranosid FCE 1E 4MU-β-D-Xylosid FXY 4F L-Phenylalanin-AMC FPH 2F L-Leucin-AMC FLE 1F Äskosyl FSC Hydrolyse der Glykosidbindung setzt nicht fluoreszierendes Äskuletin frei.22 4G Disaccharid DIS Die Verwendung von Kohlenhydrat resultiert in niedrigerem pH-Wert und einem Indikatorumschlag (Phenolrot).1,2,11,12 2G Furanose FUR 1G Pyranose PYO 4H p-n-p-α-D-Galaktosid AGA Enzymatische Hydrolyse des farblosen arylsubstituierten Glykosids setzt gelbes p-Nitrophenol frei.15-19 2H p-n-p-β-D-Galaktosid NPG 1H p-n-p-Phosphat PHO 4I p-n-p-α-D-Glukosid AGL 2I p-n-p-N-Azetyl-Glukosaminid NAG 1I L-Prolin-p-Nitroanilid PRO Enzymatische Hydrolyse des farblosen Amidsubstrats setzt gelbes p-Nitroanilin frei.15-19 4J p-n-p-α-L-Fukosid AFU Enzymatische Hydrolyse des farblosen arylsubstituierten Glykosids setzt gelbes p-Nitrophenol frei.15-19 2J p-n-p-β-D-Glukosid BGL 1J L-Alanyl-L-Alanin-p-Nitroanilid ALA Enzymatische Hydrolyse des farblosen Amidsubstrats setzt gelbes p-Nitroanilin frei.15-19 22
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Tabelle 2<br />
Im BBL Crystal ANR-ID-System angewandte Verfahrensprinzipien<br />
Panel- Prinzip<br />
Position Testsubstrat Code (Literaturnachweis)<br />
4A Fluoreszierende negative Kontrolle FCT Kontrolle zur Standardisierung der fluoreszierenden<br />
Substratresultate.<br />
2A L-Arginin-AMC FAR Enzymatische Hydrolyse der Amid- oder Glykosidbindung setzt<br />
fluoreszierende Cumarinderivate frei.19-21<br />
1A L-Histidin-AMC FHI<br />
4B 4MU-α-D-Mannosid FAM<br />
2B L-Serin-AMC FSE<br />
1B L-Isoleucin-AMC FIS<br />
4C 4MU-β-D-Mannosid FBM<br />
2C Glycin-AMC FGL<br />
1C L-Alanin-AMC FAL<br />
4D 4MU-N-Azetyl-β-D-Galaktosaminid FGA<br />
2D L-Pyroglutaminsäure-AMC FPY<br />
1D L-Lysin-AMC FLY<br />
4E L-Methionin-AMC FME<br />
2E 4MU-β-D-Cellobiopyranosid FCE<br />
1E 4MU-β-D-Xylosid FXY<br />
4F L-Phenylalanin-AMC FPH<br />
2F L-Leucin-AMC FLE<br />
1F Äskosyl FSC Hydrolyse der Glykosidbindung setzt nicht fluoreszierendes<br />
Äskuletin frei.22<br />
4G Disaccharid DIS Die Verwendung von Kohlenhydrat resultiert in niedrigerem<br />
pH-Wert und einem Indikatorumschlag (Phenolrot).1,2,11,12<br />
2G Furanose FUR<br />
1G Pyranose PYO<br />
4H p-n-p-α-D-Galaktosid AGA Enzymatische Hydrolyse des farblosen arylsubstituierten<br />
Glykosids setzt gelbes p-Nitrophenol frei.15-19<br />
2H p-n-p-β-D-Galaktosid NPG<br />
1H p-n-p-Phosphat PHO<br />
4I p-n-p-α-D-Glukosid AGL<br />
2I p-n-p-N-Azetyl-Glukosaminid NAG<br />
1I L-Prolin-p-Nitroanilid PRO Enzymatische Hydrolyse des farblosen Amidsubstrats setzt<br />
gelbes p-Nitroanilin frei.15-19<br />
4J p-n-p-α-L-Fukosid AFU Enzymatische Hydrolyse des farblosen arylsubstituierten<br />
Glykosids setzt gelbes p-Nitrophenol frei.15-19<br />
2J p-n-p-β-D-Glukosid BGL<br />
1J L-Alanyl-L-Alanin-p-Nitroanilid ALA Enzymatische Hydrolyse des farblosen Amidsubstrats setzt<br />
gelbes p-Nitroanilin frei.15-19<br />
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