Manual sobre Técnicas Moleculares - Centro Jardín Botánico de ...
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5- Cargue las muestras (verificación <strong>de</strong> obtención <strong>de</strong> ADN, RAPD, PCR, etc) en los pocillos <strong>de</strong>l gel (a cada<br />
muestra a correr en el gel se le <strong>de</strong>be añadir 2 ul <strong>de</strong> solución <strong>de</strong> azul <strong>de</strong> bromofenol, mezclando bien los<br />
dos componentes). Las muestras se preparan con antelación y se cargan lo más rápidamente en el gel para<br />
evitar que difundan en él.<br />
6- Asegúrese <strong>de</strong> que la orientación <strong>de</strong>l gel y las muestras es la apropiada para la dirección <strong>de</strong> la<br />
electroforesis (las muestras <strong>de</strong>ben <strong>de</strong>splazarse <strong>de</strong>s<strong>de</strong> el cátodo – polo negativo – hacia el ánodo – polo<br />
positivo – ya que el ADN tiene carga negativa), colocar los cables en los polos a<strong>de</strong>cuados, y enchufar la<br />
corriente eléctrica al voltaje a<strong>de</strong>cuado (éste está en función <strong>de</strong> lo que se esté haciendo, 100 volts. si se<br />
quiere una migración rápida simplemente para revisar si existe ADN luego <strong>de</strong> una extracción o<br />
comprobar la ocurrencia <strong>de</strong> amplificación en una PCR; 25-45 volts. si lo que se están corriendo son<br />
muestras RAPD, aunque aquí el voltaje se correlaciona con el tiempo que se esté dispuesto a <strong>de</strong>jar<br />
corriendo la electroforesis y el número <strong>de</strong> bandas que normalmente se expresen en el material <strong>de</strong> estudio,<br />
ya que en RAPD la clave está en lograr una a<strong>de</strong>cuada separación en el patrón <strong>de</strong> bandas).<br />
7- Espere el tiempo correspondiente (va <strong>de</strong>s<strong>de</strong> 30 min o menos en un gel pequeño a 100 volts para revisar<br />
presencia <strong>de</strong> ADN o amplificación <strong>de</strong> PCR, hasta 8 horas en un RAPD a 25-30 volts. en muestras con<br />
numerosas bandas muy cercanas entre si).<br />
8- Una vez transcurrida la electroforesis examine los resultados en un transiluminador <strong>de</strong> rayos ultravioleta<br />
o en un analizador <strong>de</strong> imágenes.<br />
NOTA: Se usan siempre guantes en todo el procedimiento, pero hay que quitárselos para manipular el<br />
teclado, pantalla, etc. <strong>de</strong>l or<strong>de</strong>nador y los CDs. ¡Evitar las contaminaciones!.<br />
Anexo IV: REACCIONES DE PCR<br />
1- La Reacción en ca<strong>de</strong>na <strong>de</strong> la Polimerasa se emplea como base <strong>de</strong> distintas técnicas moleculares, bien<br />
sean los RAPD , la secuenciación , etc. En todo caso lo que varía es la fórmula específica <strong>de</strong>l conjunto <strong>de</strong><br />
reactivos y los programas <strong>de</strong> amplificación empleados.<br />
2- Por lo sensible <strong>de</strong> la reacción es necesario tomar todas las precauciones para evitar contaminaciones y por<br />
supuesto emplear guantes en todo momento.<br />
3- Debido a que la enzima se activa con el calor, es necesario realizar todo el trabajo en frío para evitar que<br />
la enzima comience a actuar antes <strong>de</strong> colocar los tubos con la mezcla <strong>de</strong> reacción completa en el<br />
termociclador. Una forma <strong>de</strong> hacerlo es colocar los tubos en una lámina <strong>de</strong> anime <strong>de</strong>lgada colocada a su<br />
vez <strong>sobre</strong> hielo.<br />
4- Es recomendable agregar en primer lugar el agua doble <strong>de</strong>stilada, a fin <strong>de</strong> que en la medida que se<br />
agreguen el resto <strong>de</strong> componentes <strong>de</strong> la fórmula mantengan la concentración a<strong>de</strong>cuada.<br />
5- Es necesario garantizar una buena mezcla <strong>de</strong> todos los componentes <strong>de</strong> la reacción, especialmente en el<br />
caso <strong>de</strong> la enzima Taq polimerasa, ya que ésta es pesada y se va al fondo <strong>de</strong>l tubo.<br />
6- Las fórmulas que se dan más abajo hacen referencia a las cantida<strong>de</strong>s necesarias para una sola reacción en<br />
tubo <strong>de</strong> PCR <strong>de</strong> 0,2 ml. Lo que se hace es preparar la cantidad necesaria para el número total <strong>de</strong> muestras<br />
a amplificar en un tubo <strong>de</strong> 0,5 o 1,5 , agitar bien y luego repartir las alícuotas establecidas para cada tubo<br />
<strong>de</strong> PCR (un tubo por muestra a amplificar). Finalmente se agrega la cantidad establecida <strong>de</strong>l ADN <strong>de</strong><br />
cada muestra en su tubo <strong>de</strong> 0,2 correspondiente.<br />
7- Si el termociclador no tiene tapa térmica, añadir a cada tubo una gota <strong>de</strong> aceite mineral (10 ul); tapar bien<br />
los tubos (<strong>de</strong>ben estar herméticamente cerrados), y colocarlos en el termociclador.<br />
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