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Manual sobre Técnicas Moleculares - Centro Jardín Botánico de ...

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ul <strong>de</strong> tampón 0,1 x TE. Agitar cada 2 min hasta disolver el 'pellet' y transferir la solución <strong>de</strong> ADN a un<br />

tubo Eppendorf <strong>de</strong> 0,5 ml.<br />

14- Guardar la solución <strong>de</strong> ADN a – 20 ºC.<br />

15- cuantificar la concentración <strong>de</strong> ADN, bien sea con fluorómetro/espectrofotómetro, o por comparación con<br />

un marcador <strong>de</strong> concentración conocida.<br />

TAMPÓN CTAB DE EXTRACCIÓN DE ADN (500 ml):<br />

10 x CTAB………………………………...100,00ml<br />

1 M Tris -HCl pH 8,0………………………50,00ml<br />

0,25 M EDTA……………………………….40,00ml<br />

NaCl………………………………………….43,50g<br />

ddH2O……………………………………...310,00ml<br />

Solución <strong>de</strong> lavado <strong>de</strong> ADN: 76% Etanol , 10mM Acetato amónico.<br />

PREPARACIÓN DE GEL DE AGAROSA:<br />

La concentración a la que se hace el gel <strong>de</strong>pen<strong>de</strong> <strong>de</strong>l uso que se le vaya a dar al mismo. Mientras más<br />

concentrado esté el gel, menores serán sus poros y ofrecerá una mayor selectividad a la migración <strong>de</strong><br />

fragmentos <strong>de</strong> distinto peso molecular. Para revisar simplemente la presencia o no <strong>de</strong> ADN (total,<br />

amplificados, etc) bastará un gel <strong>de</strong> 1% o incluso 0,8 %; para RAPDs pue<strong>de</strong> ser necesario un gel <strong>de</strong> 1,5 o 2 %.<br />

Protocolo para gel <strong>de</strong> 1%:<br />

- Añada 1 gr. <strong>de</strong> agarosa a 100 ml <strong>de</strong> tampón 0,5 x TBE (= 1% <strong>de</strong> agarosa), dispuestos en matraz<br />

Erlenmeyer <strong>de</strong> 500 m<br />

- Añada 7 ul <strong>de</strong> Bromuro <strong>de</strong> etidio por cada 100 ml <strong>de</strong> gel.<br />

PRECAUCIÓN: EL BROMURO DE ETIDIO ES CANCERÍGENO !! UTILIZAR SIEMPRE<br />

GUANTES<br />

- Caliente en el horno microondas hasta que la agarosa se disuelva totalmente y el gel sea líquido (¡tener<br />

cuidado <strong>de</strong> que, si hierve, la solución no se <strong>de</strong>sparrame por el microondas! ).<br />

Nota: los geles con bromuro <strong>de</strong> etidio no se reciclan; se <strong>de</strong>sechan en un contenedor propio.<br />

MONTAJE DEL GEL Y DESARROLLO DE LA ELECTROFORESIS.<br />

1- Tape con doble tira <strong>de</strong> tirro los laterales abiertos <strong>de</strong> la ban<strong>de</strong>ja <strong>de</strong>l gel, cuidando <strong>de</strong> que que<strong>de</strong> totalmente<br />

sellado, y colocar los peines correspondientes.<br />

2- Vierta el gel <strong>de</strong> agarosa líquido en la ban<strong>de</strong>ja, en una superficie plana, y <strong>de</strong>jar que se solidifique al aire o<br />

en la nevera (¡ en ese caso taparlo con plástico para evitar contaminaciones!!!). El gel <strong>de</strong>be tener un<br />

grosor mínimo <strong>de</strong> 3 mm).<br />

3- Llene la cubeta <strong>de</strong> electroforesis con tampón 0,5 TBE.<br />

4- Una vez solidificado el gel, quite el tirro <strong>de</strong> la ban<strong>de</strong>ja y los peines, y colocar la ban<strong>de</strong>ja en la cubeta <strong>de</strong><br />

electroforesis <strong>de</strong> tal forma que el gel que<strong>de</strong> cubierto por el tampón, <strong>sobre</strong>pasándolo unos 2 mm.<br />

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